Media

Cria uma rampa DJ entre dois BPM preservando o tom.

Media

Transpõe uma música por tom ou semitons sem mudar duração nem velocidade.

Education

Calcula a taxa específica de crescimento na fase exponencial: µ = ln2 ÷ t_d, ou a partir de duas contagens µ = ln(Nₜ/N₀) ÷ t (N em OD₆₀₀, UFC ou qualquer unidade consistente). Informa µ por hora/dia/minuto, o tempo de duplicação equivalente e as divisões por hora k = 1/t_d. Referências: E. coli ≈ 20–30 min em LB e ≈ 1 h em meio mínimo, B. subtilis ≈ 26 min. Fontes: cinética de Monod, Brock Biology of Microorganisms. Apenas para educação.

Education

Planeja a clássica série de diluições de 10×: número de etapas n = ceil(log₁₀(estoque ÷ alvo)) a partir das concentrações, ou etapas definidas diretamente; inclui a tabela de concentrações por tubo (C_k = estoque ÷ 10^k) e a receita por tubo (mistura 1:9, p. ex. 100 µL do tubo anterior + 900 µL de diluente por tubo de 1 mL). Dicas: trocar ponteira a cada etapa, vortear 5–10 s, trabalhar do mais concentrado ao mais diluído. Combine com a calculadora de UFC/mL. Fontes: Standard Methods, apêndice FDA BAM. Apenas para educação.

Education

Analisa a composição de uma sequência: contagens e percentagens molares de cada um dos 20 aminoácidos padrão; totais por grupo (básicos K/R/H, ácidos D/E, aromáticos F/W/Y, sulfurados C/M, alifáticos A/I/L/V, amidas N/Q, hidroxila S/T, outros G/P); GRAVY com os valores de hidropatia de Kyte–Doolittle 1982 (>0 tendência hidrofóbica, <0 hidrofílica; globulares solúveis ficam entre −1 e +0,3); e a massa molecular pela tabela ProtParam. Códigos de ambiguidade (B/J/O/U/X/Z) contam-se à parte e excluem-se das percentagens. Fontes: Kyte & Doolittle 1982, ExPASy ProtParam, Lehninger. Apenas para educação.

Education

Quantifica proteína pelo método de Bradford (Coomassie G-250, 595 nm) com curva-padrão de BSA: cole as linhas «concentração(µg/mL), A595» dos padrões e as absorbâncias das amostras; a ferramenta ajusta por mínimos quadrados (inclinação, intercepto, R²), inverte c = (A−b)/m e multiplica pelo fator de diluição, retornando µg/mL e mg/mL. Leituras fora da faixa dos padrões são marcadas como extrapolação; abaixo do branco são rejeitadas como não quantificáveis. Pontos-chave: a resposta do corante varia muito com a proteína (BSA ≈ o dobro da IgG) e detergentes altos interferem; padrões e amostras no mesmo tampão. Fonte: Bradford 1976 Anal Biochem. Apenas para educação.

Development

Informe título, descrição e URL para simular ao pixel a aparência atual (2026) do Google: título de uma linha ~600px no desktop, duas linhas no mobile, linha “site › caminho” no desktop contra apenas domínio no mobile (mudança de janeiro 2025), estrelas e preço como resultados ricos, data, temas claro e escuro, medidores de pixels e diagnóstico (com o aviso de que FAQ rich foi removido em maio de 2026).

Education

Calcula a atividade específica = atividade(U) ÷ massa de proteína(mg), ou diretamente concentração de atividade(U/mL) ÷ concentração de proteína(mg/mL). Retorna U/mg, nkat/mg e µkat/mg. É uma métrica de pureza: sobe durante a purificação e o máximo da enzima pura é kcat(min⁻¹) ÷ MW(kDa) (p. ex. kcat 600 min⁻¹ e 60 kDa → 10 U/mg); a razão medido/teórico estima a pureza. Exige ensaio de atividade e dosagem de proteína (Bradford/BCA/A280) na faixa linear. Fontes: nomenclatura IUBMB, Scopes Protein Purification, Lehninger. Apenas para educação.

Media

Deteta transientes do loop e aproxima-os de uma grelha, swing ou groove de referência.

Education

Estima os tamanhos dos fragmentos após a digestão: um substrato circular com n cortes produz n fragmentos (contornando a origem) e um linear produz n+1. O modo de posições calcula fragmentos exatos a partir de coordenadas separadas por vírgula; o modo de número de sítios dá a contagem e a média com distribuição uniforme. Inclui a frequência esperada de sítios em DNA aleatório: enzimas de 4 bases ~1 a cada 256 bp, de 6 bases ~1 a cada 4096 bp (REBASE/Sambrook) e avisos de resolução em agarose (<50 bp pode escapar). Fontes: Sambrook & Russell 3ª ed., REBASE. Apenas para educação.

Education

Calcula a temperatura de anelamento (Ta) da PCR por duas regras: a regra simples de bancada Ta = Tm − 5°C (usando o MENOR Tm do par de primers) e a fórmula empírica de Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(primer) + 0.7×Tm(produto) − 14.9 (o Tm do produto costuma ser 75–90°C e a fórmula fica 1–8°C acima da regra simples em pares típicos). Fornece a Ta recomendada, faixa de gradiente ±3°C e a direção de ajuste: Ta baixa dá bandas inespecíficas e dímeros, alta sem produto; mantenha os dois Tm dentro de 2–3°C e anele pelo menor. Fontes: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Apenas planejamento experimental.

Format Conversion

Converte fórmulas entre AsciiMath, LaTeX e MathML: detecta o formato de entrada e produz LaTeX canônico, MathML de apresentação anotado, retrotradução aproximada para AsciiMath, snippet aria-label para leitores de tela e uma prévia KaTeX.