Convierte texto Unicode a ASCII puro: quita acentos (é→e, ñ→n), romaniza cirílico/griego y pasa el chino a pinyin (北京→Bei Jing). Elimina emojis y símbolos sin equivalente ASCII.

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Cifrado Rail Fence (ZigZag)

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Codifica, decodifica, visualiza y aplica fuerza bruta al cifrado de transposición Rail Fence. Muestra la cuadrícula y prueba todos los rieles.

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Analizador de composición de aminoácidos

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Analiza la composición de una secuencia: recuentos y porcentajes molares de cada uno de los 20 aminoácidos estándar; totales por grupo (básicos K/R/H, ácidos D/E, aromáticos F/W/Y, azufrados C/M, alifáticos A/I/L/V, amidas N/Q, hidroxilo S/T, otros G/P); GRAVY con los valores de hidropatía de Kyte–Doolittle 1982 (>0 tendencia hidrofóbica, <0 hidrofílica; las globulares solubles suelen estar entre −1 y +0,3); y el peso molecular con la tabla de masas medias de ProtParam. Los códigos ambiguos (B/J/O/U/X/Z) se cuentan aparte y se excluyen de los porcentajes. Fuentes: Kyte & Doolittle 1982, ExPASy ProtParam, Lehninger. Solo para educación.

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Calculadora de concentración molar de ADN (µg/mL → nM)

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Convierte la concentración másica de ADN en concentración molar: nM = µg/mL × 10⁶ ÷ (masa por par de bases × bp). Masas medias según NEB: ADN doble cadena 650 Da/bp, ADN monocadena 330 Da/nt (Promega usa 660). Trampa habitual: con 10⁻³ en el denominador se obtiene µM, no nM (error de 1000×). 1 µg/mL = 1 ng/µL; con el volumen se calculan los pmol totales y las moléculas por µL. Fuentes: NEB NEBioCalculator, Promega BioMath, N_A = 6.022×10²³. Solo para educación y planificación experimental.

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Calculadora de dilución de ácidos nucleicos (C1V1 = C2V2)

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Prepara soluciones de trabajo de ADN/ARN en dos modos: por concentración objetivo según C1V1 = C2V2, con volumen de stock V1 = C2×V2/C1 y volumen de tampón; o por factor de dilución 1:X con concentración final C1/X y volumen V2/X. Basta que las unidades de stock y objetivo coincidan (ng/µL, µg/mL, nM) — el álgebra es independiente de la unidad. Incluye consejos de pipeteo: V1 < 0.5 µL sugiere dilución seriada en dos pasos, V1 < 2 µL punta de baja retención; se rechaza un objetivo mayor que el stock. Fuentes: Sambrook & Russell 3.ª ed., guía de pipeteo Thermo Fisher. Solo para educación y planificación.

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Calculadora de densidad celular OD600 (E. coli)

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Convierte lecturas de turbidez OD600 en concentración celular y peso seco (CDW): OD normalizada = lectura × factor de dilución ÷ camino óptico; células/mL = OD × células por OD (1×10⁹ por defecto, valor habitual de E. coli); CDW g/L = OD × g/L por OD (0.36 por defecto, BioNumbers 109837; rango 0.3–0.5). Ambos factores son editables — cepa, medio e instrumento los modifican; los valores por defecto son autoconsistentes: 0.36 g/L ÷ 10⁹ células/mL = 0.36 pg/célula. Marca lecturas OD > 1 fuera del rango lineal (Sigma-Aldrich). Fuentes: BioNumbers 109835/109837, Agilent/VectorBuilder. Calibre con su propia curva OD-CFU. Solo para educación.

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Calculadora de Tm de oligonucleótidos (corrección por sal)

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Dos estimaciones clásicas de Tm: la regla de Wallace Tm = 2×(A+T) + 4×(G+C) (oligos cortos <14 nt, sin dependencia de sal) y la fórmula con corrección por sal Tm = 81.5 + 16.6×log₁₀[Na⁺] + 0.41×(%G+C) − 600/n (Sambrook 1989 p.11.46, la misma de Primer3; el término de longitud varía 500–675/n según la fuente). El modo automático elige por longitud. Devuelve %GC, composición y ambas estimaciones. Son aproximaciones — para precisión de diseño use termodinámica de vecinos más cercanos (herramienta pcr-primer-tm). Supuestos: ADN, sin desapareamientos, sin formamida/DMSO, [Na⁺] 0.01–1 M. Fuentes: Wallace 1979, von Ahsen 2001, Sambrook & Maniatis, OligoCalc. Solo para educación.

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