分析一条氨基酸序列的组成：20 种标准氨基酸各自的计数与摩尔百分数；分组统计（碱性 K/R/H、酸性 D/E、芳香族 F/W/Y、含硫 C/M、脂肪族 A/I/L/V、酰胺侧链 N/Q、羟基 S/T、其他 G/P）；按 Kyte–Doolittle 1982 疏水值计算 GRAVY 平均疏水指数（>0 偏疏水、<0 偏亲水，可溶性球状蛋白通常介于 −1 至 +0.3）；并附 ProtParam 平均质量表的分子量。歧义码（B/J/O/U/X/Z）单独计数、不计入百分比。来源：Kyte & Doolittle 1982、ExPASy ProtParam、Lehninger。仅供教学与实验规划。

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DNA 摩尔浓度计算器（µg/mL → nM）

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将 DNA 质量浓度换算为摩尔浓度：nM = µg/mL × 10⁶ ÷ (每碱基对质量 × bp)。平均质量按 NEB 惯例：双链 DNA 650 Da/bp、单链 DNA 330 Da/nt（Promega 用 660，同理）。注意常见陷阱：分母若用 10⁻³ 得到的是 µM 而非 nM（差 1000 倍）。1 µg/mL = 1 ng/µL 两种单位通用；输入体积即可得总 pmol 与每 µL 分子数（衔接 dna-copy-number 工具）。来源：NEB NEBioCalculator、Promega BioMath、Avogadro 常数 6.022×10²³。仅供教学与实验规划。

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核酸稀释计算器（C1V1 = C2V2）

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两种模式配制 DNA/RNA 工作液：目标浓度法按 C1V1 = C2V2 求取样体积 V1 = C2×V2÷C1，并给出补加缓冲液体积；稀释倍数法按 1:X 直接得终浓度 C1÷X 与取样体积 V2÷X。浓度单位只需原液与目标一致（ng/µL、µg/mL、nM 均可），代数与单位无关。内置移液建议：V1 < 0.5 µL 提示改用两步梯度稀释，V1 < 2 µL 提示低吸附枪头；目标高于原液会被拒绝（稀释不能增浓）。来源：Sambrook & Russell 第 3 版、Thermo Fisher 移液技术指南。仅供教学与实验规划。

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OD600 细胞浓度计算器（E. coli）

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将 OD600 浊度读数换算为细胞浓度与细胞干重（CDW）：归一化 OD = 读数 × 稀释倍数 ÷ 光程；cells/mL = OD × 每 OD 细胞数（默认 1×10⁹，E. coli 常用值）；CDW g/L = OD × 每 OD 干重（默认 0.36，BioNumbers 109837，文献范围 0.3–0.5）。两个系数均可编辑——菌株、培养基与仪器都会影响换算；默认组合自洽：0.36 g/L ÷ 10⁹ cells/mL = 0.36 pg/细胞。OD > 1 线性区外会标记提示稀释复测（Sigma-Aldrich）。来源：BioNumbers 109835/109837、Agilent/VectorBuilder、Sigma-Aldrich。建议用自测 OD-CFU 或干重曲线校准。仅供教学与实验规划。

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寡核苷酸 Tm 计算器（盐浓度校正）

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两条经典 Tm 估算式：Wallace 规则 Tm = 2×(A+T) + 4×(G+C)（<14 nt 短链，不含盐依赖）；盐校正公式 Tm = 81.5 + 16.6×log₁₀[Na⁺] + 0.41×(%G+C) − 600/n（Sambrook 1989 p.11.46，Primer3 同式；长度项各文献为 500–675/n）。自动模式按长度切换。输出 GC%、碱基组成与两种方法结果对照。两者均为近似——设计级精度请用最近邻热力学（见配套 pcr-primer-tm 工具）。假设：DNA、无错配、无甲酰胺/DMSO、[Na⁺] 0.01–1 M。来源：Wallace 1979、von Ahsen 2001、Sambrook & Maniatis、OligoCalc。仅供教学与实验规划。

oligo-melting-temperature