Education

Dose les protéines par la méthode de Bradford (Coomassie G-250, 595 nm) avec courbe standard de BSA : collez les lignes « concentration(µg/mL), A595 » des standards et les absorbances des essais ; l'outil ajuste par moindres carrés (pente, ordonnée, R²), inverse c = (A−b)/m puis multiplie par le facteur de dilution, en renvoyant µg/mL et mg/mL. Les lectures hors plage de standards sont signalées comme extrapolations ; celles sous le blanc sont rejetées comme non quantifiables. Points clés : la réponse du colorant varie fortement selon la protéine (BSA ≈ le double de l'IgG) et les détergents élevés interfèrent ; standards et essais dans le même tampon. Source : Bradford 1976 Anal Biochem. Uniquement à but éducatif.

Data Analysis

Tests d'hypothèses pas à pas pour tableaux 2×2 et R×C : khi-carré de Pearson, correction de continuité de Yates, test G (rapport de vraisemblance), test exact de Fisher quand les effectifs théoriques sont petits, tailles d'effet (V de Cramér / phi / coefficient de contingence), résidus ajustés de Haberman pour localiser les cellules, avertissement BH-FDR et estimation optionnelle de Chapman (capture-recapture).

Media

Applique un timing long-court aux boucles transitoires avec humanisation reproductible.

Education

Calcule la température d'hybridation (Ta) de la PCR selon deux règles : la règle simple de paillasse Ta = Tm − 5°C (en prenant le PLUS PETIT Tm de la paire d'amorces) et la formule empirique de Rychlik 1990 : Ta = 0.3×Tm(amorce) + 0.7×Tm(produit) − 14.9 (le Tm du produit est typiquement de 75–90°C et la formule tombe 1–8°C au-dessus de la règle simple pour des paires classiques). Fournit la Ta recommandée, une plage de gradient ±3°C et le sens d'ajustement : Ta trop basse donne bandes non spécifiques et dimères, trop haute aucun produit ; gardez les deux Tm à 2–3°C près et hybridez sur le plus petit. Sources : Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Uniquement pour la planification.

Format Conversion

Convertit des formules entre AsciiMath, LaTeX et MathML : détecte le format d'entrée et produit du LaTeX canonique, du MathML de présentation annoté, une rétro-traduction AsciiMath approximative, un extrait aria-label pour lecteurs d'écran et un aperçu KaTeX.

Education

Calcule le risque pour la descendance dans l'hérédité autosomique dominante (AD) et évalue l'ajustement des effectifs observés au ratio attendu. Génotypes parentaux → ratio attendu : AA × n'importe = tous atteints ; Aa × Aa = 3:1 (75%) ; Aa × aa = 1:1 (50%) ; aa × aa = aucun. Les effectifs observés permettent un test du chi-carré (df = 1, critique 3.841). Signes du pedigree AD : transmission verticale, deux sexes atteints à parts égales, transmission homme-homme présente (exclut le dominant lié à l'X), les non-atteints ne transmettent pas (sauf mutation de novo). Exemples : Huntington, achondroplasie, Marfan. Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Usage éducatif uniquement.

Education

Calcule la probabilité qu'un enfant (ou qu'au moins un de n enfants) soit atteint d'une maladie autosomique récessive. Un enfant atteint (aa) doit recevoir un allèle récessif de CHACUN des parents : P(enfant atteint) = P(parent 1 transmet a) × P(parent 2 transmet a). Statuts : porteur (Aa), atteint (aa), non porteur (AA), inconnu (P(Aa)=c, P(aa)=c² selon la fréquence populationnelle). Deux porteurs → 25% par enfant, 50% porteurs, P(porteur | non atteint) = 2/3 ; au moins un atteint parmi n = 1 − (1−r)^n. Défaut 0.04 (mucoviscidose 1/25). Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Usage éducatif uniquement, ne remplace pas un conseil génétique.

Finance

Convertit les cotes entre formats décimal, fractionnel et américain avec probabilité implicite, plus cotes combinées de parlay et cotes justes sans marge.

Education

Simule la perte attendue d'hétérozygotie après un goulot d'étranglement (espérance déterministe). Sous dérive de Wright-Fisher idéale, H_{t+1} = H_t(1 − 1/(2N)) par génération, d'où H_final = H₀(1−1/2Nb)^t × (1−1/2Nr)^g ; la taille efficace harmonique Ne = (t+g)/(t/Nb + g/Nr) est dominée par le minimum ; F accumulé = 1 − H_final/H₀. Pour un allèle de fréquence p, la survie à UNE génération de goulot est 1 − (1−p)^(2Nb) ; les allèles rares disparaissent en premier. Cas classiques : éléphant de mer du Nord (~20 survivants vers 1890), guépard, nēnē d'Hawaï, bison d'Europe, atoll de Pingelap. Sources : Wright 1931, Nei et al. 1975, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Usage éducatif uniquement.

Education

Calcule les fréquences alléliques à partir des comptages génotypiques observés pour un locus biallélique. Pour les comptages (AA/Aa/aa) et N individus : p = (2×AA + Aa) / 2N, q = (2×aa + Aa) / 2N, p+q=1. Chaque individu diploïde porte 2 allèles, total = 2N. Rapporte aussi les fréquences génotypiques observées et attendues sous HWE. Sources : Hartl & Clark 2007, Griffiths, StatPearls. Usage éducatif uniquement.

Health

Convertit la bilirubine sérique totale/directe/indirecte entre unités conventionnelles (mg/dL) et SI (µmol/L). La bilirubine (C₃₃H₃₆N₄O₆) a une masse molaire de 584.67 g/mol, donc le facteur est fixe : mg/dL × 17.1 = µmol/L (÷17.1). Références (adulte) : total 0.3–1.2 mg/dL (5.1–20.5 µmol/L) ; directe 0.0–0.3 (0–5.1) ; indirecte 0.2–0.8 (3.4–13.7). Ictère visible >2.0–2.5 mg/dL (>34–43 µmol/L) ; exsanguino-transfusion néonatale souvent >20 mg/dL (>340 µmol/L). Sources : Young 1987, StatPearls, AAP 2004, nomogramme de Bhutani. Non un avis médical.

Health

Convertit la calcémie totale entre unités conventionnelles (mg/dL) et SI (mmol/L). Poids atomique du calcium 40.078, facteur fixe : mg/dL × 0.25 = mmol/L (×4.0 inverse). Référence (adulte, albumine normale) : 8.6–10.3 mg/dL (2.15–2.57 mmol/L). Hypocalcémie <8.5 mg/dL (<2.12 mmol/L), sévère <7.0 ; hypercalcémie >10.5 (>2.62), sévère >14.0. Note : la calcémie totale doit être corrigée pour l'albumine (Payne : Ca corrigé = Ca + 0.8×(4.0−albumine g/dL)) ; cet outil convertit uniquement la valeur mesurée. Sources : Payne BMJ 1973, Young 1987, StatPearls, Endocrine Society. Non un avis médical.