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Crée une rampe DJ entre deux BPM en préservant la hauteur.

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Transpose une chanson par tonalité ou demi-tons sans modifier durée ni vitesse.

Education

Calcule le taux de croissance spécifique en phase exponentielle : µ = ln2 ÷ t_d, ou à partir de deux comptages µ = ln(Nₜ/N₀) ÷ t (N en OD₆₀₀, UFC ou toute unité cohérente). Rapporte µ par heure/jour/minute, le temps de doublement équivalent et les divisions par heure k = 1/t_d. Repères : E. coli ≈ 20–30 min en LB et ≈ 1 h en milieu minimal, B. subtilis ≈ 26 min. Sources : cinétique de Monod, Brock Biology of Microorganisms. Uniquement à but éducatif.

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Conçoit la série classique de dilutions au 1/10 : nombre d'étapes n = ceil(log₁₀(stock ÷ cible)) à partir des concentrations, ou étapes fixées directement ; fournit le tableau des concentrations par tube (C_k = stock ÷ 10^k) et la recette par tube (mélange 1:9, p. ex. 100 µL du tube précédent + 900 µL de diluant par tube de 1 mL). Conseils : changer de cône à chaque étape, vortexer 5–10 s, travailler du plus concentré au plus dilué. À combiner avec le calculateur d'UFC/mL. Sources : Standard Methods, annexe FDA BAM. Uniquement à but éducatif.

Education

Analyse la composition d'une séquence : comptages et pourcentages molaires de chacun des 20 acides aminés standards ; totaux par groupe (basiques K/R/H, acides D/E, aromatiques F/W/Y, soufrés C/M, aliphatiques A/I/L/V, amides N/Q, hydroxyles S/T, autres G/P) ; GRAVY selon les valeurs d'hydropathie de Kyte–Doolittle 1982 (>0 tendance hydrophobe, <0 hydrophile ; les globulaires solubles se situent entre −1 et +0,3) ; et la masse moléculaire via la table ProtParam. Les codes d'ambiguïté (B/J/O/U/X/Z) sont comptés à part et exclus des pourcentages. Sources : Kyte & Doolittle 1982, ExPASy ProtParam, Lehninger. Uniquement à but éducatif.

Education

Dose les protéines par la méthode de Bradford (Coomassie G-250, 595 nm) avec courbe standard de BSA : collez les lignes « concentration(µg/mL), A595 » des standards et les absorbances des essais ; l'outil ajuste par moindres carrés (pente, ordonnée, R²), inverse c = (A−b)/m puis multiplie par le facteur de dilution, en renvoyant µg/mL et mg/mL. Les lectures hors plage de standards sont signalées comme extrapolations ; celles sous le blanc sont rejetées comme non quantifiables. Points clés : la réponse du colorant varie fortement selon la protéine (BSA ≈ le double de l'IgG) et les détergents élevés interfèrent ; standards et essais dans le même tampon. Source : Bradford 1976 Anal Biochem. Uniquement à but éducatif.

Development

Saisissez titre, description et URL pour simuler au pixel le rendu actuel (2026) de Google : titre une ligne ~600px sur desktop, deux lignes sur mobile, ligne « site › chemin » sur desktop contre domaine seul sur mobile (changement janvier 2025), étoiles et prix en résultats enrichis, date, thèmes clair et sombre, jauges de pixels et diagnostic (FAQ rich supprimé en mai 2026).

Education

Calcule l'activité spécifique = activité(U) ÷ masse de protéine(mg), ou directement concentration d'activité(U/mL) ÷ concentration de protéine(mg/mL). Renvoie U/mg, nkat/mg et µkat/mg. C'est une métrique de pureté : elle croît pendant la purification et plafonne à kcat(min⁻¹) ÷ MW(kDa) pour l'enzyme pur (p. ex. kcat 600 min⁻¹ et 60 kDa → 10 U/mg) ; le rapport mesuré/théorique estime la pureté. Exige des dosages d'activité et de protéine (Bradford/BCA/A280) en zone linéaire. Sources : nomenclature IUBMB, Scopes Protein Purification, Lehninger. Uniquement à but éducatif.

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Détecte les transitoires et les rapproche d’une grille, d’un swing ou d’un groove de référence.

Education

Estime les tailles des fragments après digestion : un substrat circulaire avec n coupures produit n fragments (en bouclant l'origine), un linéaire en produit n+1. Le mode positions calcule les fragments exacts à partir de coordonnées séparées par des virgules ; le mode nombre de sites donne l'effectif et la moyenne pour une répartition uniforme. Inclut la fréquence attendue des sites dans l'ADN aléatoire : enzymes à 4 bases ~1 site/256 bp, à 6 bases ~1/4096 bp (REBASE/Sambrook), et des repères de résolution en agarose (<50 bp peut sortir du gel). Sources : Sambrook & Russell 3ᵉ éd., REBASE. Uniquement pour l'éducation.

Education

Calcule la température d'hybridation (Ta) de la PCR selon deux règles : la règle simple de paillasse Ta = Tm − 5°C (en prenant le PLUS PETIT Tm de la paire d'amorces) et la formule empirique de Rychlik 1990 : Ta = 0.3×Tm(amorce) + 0.7×Tm(produit) − 14.9 (le Tm du produit est typiquement de 75–90°C et la formule tombe 1–8°C au-dessus de la règle simple pour des paires classiques). Fournit la Ta recommandée, une plage de gradient ±3°C et le sens d'ajustement : Ta trop basse donne bandes non spécifiques et dimères, trop haute aucun produit ; gardez les deux Tm à 2–3°C près et hybridez sur le plus petit. Sources : Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Uniquement pour la planification.

Format Conversion

Convertit des formules entre AsciiMath, LaTeX et MathML : détecte le format d'entrée et produit du LaTeX canonique, du MathML de présentation annoté, une rétro-traduction AsciiMath approximative, un extrait aria-label pour lecteurs d'écran et un aperçu KaTeX.