Health

Recupera la capacidad de carga a partir de observaciones reales: introduzca pares `tiempo, población` (mínimo 5) y la herramienta ajusta el modelo de Verhulst N(t)=K/(1+e^(−r(t−t₀))) por mínimos cuadrados de forma determinista — linealiza ln((K−N)/N)=−r·t+r·t₀ para cada K candidato y refina K con búsqueda ternaria. Devuelve K̂, r̂ intrínseca, punto de inflexión t̂₀, N₀, R², RMSE y una tabla de residuos por punto, con un SVG de dispersión observada + curva sigmoide ajustada + línea horizontal K. Si los datos aún no alcanzan la meseta (máx N < 0.6·K̂) advierte que K̂ es extrapolación. Es el problema inverso de logistic-growth-calculator.

Health

Calcula el volumen de stock de antibiótico a añadir al medio según C₁V₁ = C₂V₂: V₁ = concentración de trabajo × volumen final ÷ concentración del stock. Admite unidades absolutas (mg/mL, µg/mL, g/L, ng/mL) y notación × (p. ej. stock 1000×), con volúmenes en µL/mL/L. Devuelve el volumen de stock (mL y µL), el medio a añadir y el factor de dilución. Concentraciones típicas: ampicilina 100 µg/mL, kanamicina 25–50, cloranfenicol 25–34, tetraciclina 10–12.5.

Health

Convierte OD600 a concentración viable mediante la pendiente de calibración: CFU/mL = (OD600 − blanco) × factor × dilución. El factor son las CFU/mL a OD600 = 1 y depende en gran medida de cepa, medio y espectrofotómetro; los presets son solo órdenes de magnitud: E. coli ≈ 1×10⁹, B. subtilis ≈ 5×10⁸, S. cerevisiae ≈ 1×10⁷. Calibre con recuento en placa. La linealidad llega solo hasta ~0.2–0.6; si el OD neto supera 0.6 la herramienta avisa para diluir. Volumen opcional para el CFU total.

Health

Estima la confluencia de células adherentes mediante el método de cuadrícula en microscopía: confluencia% = cuadrados ocupados ÷ cuadrados totales × 100 por campo. Admite varios campos y calcula media ± desviación estándar, rango e interpretación del crecimiento (<10% dispersa, 10–50% subconfluente, 50–80% próxima a la confluencia, 80–95% casi confluyente, ≥95% confluyente). Con el tiempo de duplicación, estima las horas hasta la confluencia objetivo: t = TD × log₂(objetivo/actual). Cuente 3–5 campos aleatorios; pásese habitualmente al 70–90%.

Media

Crea una rampa DJ entre dos BPM sin cambiar el tono.

Media

Estima las notas cantadas estables más baja y más alta de una grabación.

Education

Convierte recuentos brutos de la cámara de Neubauer mejorada en concentración: células/mL = (total contadas ÷ cuadrículos) × dilución × 10⁴ (cada cuadrículo de 1 mm² con profundidad de 0,1 mm contiene exactamente 0,1 µL). Introduzca el total contado, el número de cuadrículos (normalmente 4 esquinas o 5 con el central) y la dilución; opcionalmente el volumen para el total de células. Incluye consejos según la densidad ideal de 20–100 células por cuadrículo. Fuentes: manual de Freshney, geometría Neubauer mejorada. Solo para educación.

Education

Calcula la cinética de crecimiento exponencial a partir de dos recuentos: tiempo de duplicación t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀), junto con el número de duplicaciones n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 y la tasa específica μ = ln(Nₜ/N₀)/t (h⁻¹). N₀ y Nₜ pueden ser números de células o densidades en cualquier unidad consistente; el tiempo acepta horas/días/minutos. Supone fase logarítmica en ambos puntos (siembra subconfluente, cosecha antes de la inhibición por contacto), de lo contrario t_d saldrá alto; incluye referencias de HEK293/HeLa/CHO. Fuente: manual Freshney. Solo para educación.

Education

Calcula la viabilidad a partir de los recuentos de células vivas/muertas en el ensayo de exclusión del azul de tripán: viabilidad % = vivas ÷ (vivas + muertas) × 100; concentración de vivas = recuento × dilución × 10⁴ ÷ cuadrículos. El colorante no atraviesa membranas intactas: las vivas quedan brillantes y las dañadas se tiñen azul intenso. Incluye interpretación del estado del cultivo (≥90% sano, 70–90% aceptable, <70% estresado) y consejos de protocolo (contar en 3–5 min; la exposición prolongada mata células viables). Fuentes: Freshney, ensayo de Strober. Solo para educación.

Education

Convierte el recuento de colonias en la concentración original: UFC/mL = colonias × 10ⁿ ÷ volumen sembrado (mL), donde la placa se sembró desde el tubo 10⁻ⁿ. Incluye la regla del rango contable 30–300 colonias/placa: >300 señala TNTC (demasiadas numerosas, subir dilución), <30 señala TFTC (demasiadas pocas, bajar dilución) y 0 colonias da el límite de detección; opcionalmente convierte a UFC totales por volumen. Fuentes: Standard Methods, FDA BAM. Solo para educación.

Education

Analiza la composición de una secuencia: recuentos y porcentajes molares de cada uno de los 20 aminoácidos estándar; totales por grupo (básicos K/R/H, ácidos D/E, aromáticos F/W/Y, azufrados C/M, alifáticos A/I/L/V, amidas N/Q, hidroxilo S/T, otros G/P); GRAVY con los valores de hidropatía de Kyte–Doolittle 1982 (>0 tendencia hidrofóbica, <0 hidrofílica; las globulares solubles suelen estar entre −1 y +0,3); y el peso molecular con la tabla de masas medias de ProtParam. Los códigos ambiguos (B/J/O/U/X/Z) se cuentan aparte y se excluyen de los porcentajes. Fuentes: Kyte & Doolittle 1982, ExPASy ProtParam, Lehninger. Solo para educación.

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Cuantifica proteína por el método BCA (ácido bicincronínico, 562 nm) con curva estándar: pegue las líneas «concentración(µg/mL), A562» y las absorbancias desconocidas; la herramienta ajusta por mínimos cuadrados (pendiente, ordenada, R²), invierte c = (A−b)/m y multiplica por la dilución, devolviendo µg/mL y mg/mL. Las lecturas fuera del rango se marcan como extrapolación; las inferiores al blanco se rechazan. Claves del BCA: tolera ~5% de detergente (mejor que Bradford para lisados); pero DTT/TCEP/β-mercaptoetanol (>1 mM) y EDTA alto reducen o quelan Cu²⁺ e inflan la lectura — elimínelos antes; rango útil ~20–2000 µg/mL (Micro BCA 0,5–20). Fuente: Smith 1985 Anal Biochem. Solo para educación.