Education

Quantifiziert Protein nach der Bradford-Methode (Coomassie G-250, 595 nm) mit BSA-Standardkurve: fügen Sie die Zeilen «Konzentration(µg/mL), A595» der Standards und die Absorptionen der Proben ein; das Werkzeug fittet nach kleinsten Quadraten (Steigung, Achsenabschnitt, R²), invertiert c = (A−b)/m und multipliziert mit dem Verdünnungsfaktor (µg/mL und mg/mL). Werte außerhalb des Standardbereichs werden als Extrapolation markiert; Werte unterhalb der Leerprobe werden als nicht quantifizierbar abgelehnt. Wichtig: die Farbstoffantwort variiert stark je nach Protein (BSA ≈ doppelt so hoch wie IgG), hohe Detergenzien stören; Standards und Proben im selben Puffer. Quelle: Bradford 1976 Anal Biochem. Nur für Ausbildung.

Data Analysis

Schritt-für-Schritt-Hypothesentests für 2×2- und R×C-Tafeln: Pearson-Chi-Quadrat, Yates-Stetigkeitskorrektur, G-Test (Likelihood-Ratio), exakter Fisher-Test bei kleinen erwarteten Häufigkeiten, Effektstärken (Cramérs V / Phi / Kontingenzkoeffizient), Habermans adjustierte Residuen zur Zelllokalisierung, BH-FDR-Hinweis und optionale Chapman-Schätzung (Capture-Recapture).

Media

Wendet Long-Short-Swing auf transiente Loops mit reproduzierbarer Humanisierung an.

Education

Berechnet die PCR-Annealing-Temperatur (Ta) nach zwei Regeln: die einfache Laborregel Ta = Tm − 5°C (mit dem KLEINEREN Tm des Primerpaares) und die empirische Formel von Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(Primer) + 0.7×Tm(Produkt) − 14.9 (Produkt-Tm typisch 75–90°C; die Formel liegt bei typischen Paaren 1–8°C über der einfachen Regel). Liefert die empfohlene Ta, einen ±3°C-Gradientenbereich und die Richtung der Justage: zu niedrige Ta gibt unspezifische Banden und Primerdimere, zu hohe kein Produkt; halten Sie die Primer-Tm-Werte innerhalb von 2–3°C und annealen Sie nach dem kleineren. Quellen: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Nur für die Versuchsplanung.

Format Conversion

Wandelt Formeln zwischen AsciiMath, LaTeX und MathML um: erkennt das Eingabeformat und erzeugt kanonisches LaTeX, annotiertes Presentation-MathML, eine best-effort-AsciiMath-Rückübersetzung, ein aria-label-Snippet für Screenreader sowie eine KaTeX-Vorschau.

Education

Berechnet das Nachkommenrisiko bei autosomal-dominanter (AD) Vererbung und bewertet, wie gut beobachtete Anzahlen zum erwarteten Verhältnis passen. Eltern-Genotypen → erwarteter Anteil: AA × beliebig = alle betroffen; Aa × Aa = 3:1 (75%); Aa × aa = 1:1 (50%); aa × aa = keiner. Beobachtete Anzahlen erlauben einen Chi-Quadrat-Test (df = 1, kritisch 3.841). AD-Stammbaum-Merkmale: vertikale Übertragung, beide Geschlechter gleichermaßen betroffen, Mann-zu-Mann-Übertragung vorhanden (schließt X-gebunden dominant aus), Nicht-Betroffene übertragen nicht (außer de-novo-Mutation). Beispiele: Huntington, Achondroplasie, Marfan. Quellen: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Nur für Bildungszwecke.

Education

Berechnet die Wahrscheinlichkeit, dass ein Kind (oder mindestens eines von n Kindern) an einer autosomal-rezessiven Krankheit erkrankt. Ein betroffenes Kind (aa) muss von BEIDEN Elternteilen ein rezessives Allel erhalten: P(betroffenes Kind) = P(Elter 1 überträgt a) × P(Elter 2 überträgt a). Status: Überträger (Aa), betroffen (aa), kein Überträger (AA), unbekannt (P(Aa)=c, P(aa)=c² aus Populationsfrequenz). Zwei Überträger → 25% pro Kind, 50% Überträger, P(Überträger | nicht betroffen) = 2/3; mindestens eines von n = 1 − (1−r)^n. Standard 0.04 (Mukoviszidose 1/25). Quellen: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Nur für Bildungszwecke, kein Ersatz für genetische Beratung.

Finance

Rechnet Quoten zwischen Dezimal-, Bruch- und amerikanischem Format um, mit impliziter Wahrscheinlichkeit, plus Parlay-Kombiquoten und faire Quoten ohne Marge.

Education

Simuliert den erwarteten Heterozygotieverlust nach einem Flaschenhals (deterministische Erwartung). Bei idealem Wright-Fisher-Drift gilt pro Generation H_{t+1} = H_t(1 − 1/(2N)), also H_final = H₀(1−1/2Nb)^t × (1−1/2Nr)^g; die harmonische effektive Größe Ne = (t+g)/(t/Nb + g/Nr) wird vom Minimum dominiert; kumuliertes F = 1 − H_final/H₀. Für ein Allel der Frequenz p beträgt das Überleben EINER Flaschenhals-Generation 1 − (1−p)^(2Nb); seltene Allele gehen zuerst verloren. Klassiker: See-Elefant (~20 Überlebende um 1890), Gepard, Hawaiigans, Wisent, Pingelap-Atoll. Quellen: Wright 1931, Nei et al. 1975, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Nur für Bildungszwecke.

Education

Berechnet Allelhäufigkeiten aus beobachteten Genotyphäufigkeiten für einen biallelischen Locus. Für Anzahlen (AA/Aa/aa) und N Individuen: p = (2×AA + Aa) / 2N, q = (2×aa + Aa) / 2N, p+q=1. Jeder diploide Individuum trägt 2 Allele, Gesamt = 2N. Berichtet auch beobachtete und erwartete (HWE) Genotyp-Häufigkeiten. Quellen: Hartl & Clark 2007, Griffiths, StatPearls. Nur für Bildungszwecke.

Health

Konvertiert Serum-Gesamt-/direktes/indirektes Bilirubin zwischen konventionellen (mg/dL) und SI-Einheiten (µmol/L). Bilirubin (C₃₃H₃₆N₄O₆) hat die Molmasse 584.67 g/mol, daher ist der Faktor fix: mg/dL × 17.1 = µmol/L (÷17.1). Referenzbereiche (Erwachsene): Gesamt 0.3–1.2 mg/dL (5.1–20.5 µmol/L); direkt 0.0–0.3 (0–5.1); indirekt 0.2–0.8 (3.4–13.7). Sichtbarer Ikterus >2.0–2.5 mg/dL (>34–43 µmol/L); Neugeborenen-Austauschtransfusion oft >20 mg/dL (>340 µmol/L). Quellen: Young 1987, StatPearls, AAP 2004, Bhutani-Nomogramm. Keine medizinische Beratung.

Health

Konvertiert Gesamt-Calcium im Serum zwischen konventionellen (mg/dL) und SI-Einheiten (mmol/L). Atomgewicht Calcium 40.078, Faktor fix: mg/dL × 0.25 = mmol/L (×4.0 invers). Referenzbereich (Erwachsene, normales Albumin): 8.6–10.3 mg/dL (2.15–2.57 mmol/L). Hypokalzämie <8.5 mg/dL (<2.12 mmol/L), schwer <7.0; Hyperkalzämie >10.5 (>2.62), schwer >14.0. Hinweis: Gesamt-Ca sollte albuminkorrigiert werden (Payne: Ca korr. = Ca + 0.8×(4.0−Albumin g/dL)); dieses Tool konvertiert nur den gemessenen Wert. Quellen: Payne BMJ 1973, Young 1987, StatPearls, Endocrine Society. Keine medizinische Beratung.