Health

Estima el tamaño de una población cerrada por el método de Petersen: introduzca los marcados y liberados en la primera muestra (n₁), el total capturado en la segunda (n₂) y los marcados recapturados (m₂). Devuelve la estimación simple de Lincoln–Petersen N̂ = n₁n₂/m₂ y la corregida de Chapman N̂ = (n₁+1)(n₂+1)/(m₂+1)−1, con error estándar de Seber, intervalo de confianza del 95%, individuos nunca vistos, proporción marcada y probabilidad de captura. Rechaza m₂ = 0 o m₂ > min(n₁, n₂). Supone población cerrada y marcas sin efecto; con m₂ < 10 el IC es solo orientativo.

Education

Calcula la multiplicidad de infección MOI = unidades infecciosas ÷ células (directo: título PFU/mL × volumen mL ÷ células), o a la inversa el volumen viral necesario V = MOI × células ÷ título. Incluye estadística Poisson: P(≥1) = 1 − e^(−MOI); MOI 1 → 63,2%, MOI 3 → 95,0%, MOI 10 → 99,995% de células infectadas. Con consejos de adsorción (30–60 min, cambiar medio). Fuentes: Molecular Cloning, Fields Virology. Solo para educación.

Education

Convierte la concentración másica de ADN en concentración molar: nM = µg/mL × 10⁶ ÷ (masa por par de bases × bp). Masas medias según NEB: ADN doble cadena 650 Da/bp, ADN monocadena 330 Da/nt (Promega usa 660). Trampa habitual: con 10⁻³ en el denominador se obtiene µM, no nM (error de 1000×). 1 µg/mL = 1 ng/µL; con el volumen se calculan los pmol totales y las moléculas por µL. Fuentes: NEB NEBioCalculator, Promega BioMath, N_A = 6.022×10²³. Solo para educación y planificación experimental.

Education

Prepara soluciones de trabajo de ADN/ARN en dos modos: por concentración objetivo según C1V1 = C2V2, con volumen de stock V1 = C2×V2/C1 y volumen de tampón; o por factor de dilución 1:X con concentración final C1/X y volumen V2/X. Basta que las unidades de stock y objetivo coincidan (ng/µL, µg/mL, nM) — el álgebra es independiente de la unidad. Incluye consejos de pipeteo: V1 < 0.5 µL sugiere dilución seriada en dos pasos, V1 < 2 µL punta de baja retención; se rechaza un objetivo mayor que el stock. Fuentes: Sambrook & Russell 3.ª ed., guía de pipeteo Thermo Fisher. Solo para educación y planificación.

Education

Convierte lecturas de turbidez OD600 en concentración celular y peso seco (CDW): OD normalizada = lectura × factor de dilución ÷ camino óptico; células/mL = OD × células por OD (1×10⁹ por defecto, valor habitual de E. coli); CDW g/L = OD × g/L por OD (0.36 por defecto, BioNumbers 109837; rango 0.3–0.5). Ambos factores son editables — cepa, medio e instrumento los modifican; los valores por defecto son autoconsistentes: 0.36 g/L ÷ 10⁹ células/mL = 0.36 pg/célula. Marca lecturas OD > 1 fuera del rango lineal (Sigma-Aldrich). Fuentes: BioNumbers 109835/109837, Agilent/VectorBuilder. Calibre con su propia curva OD-CFU. Solo para educación.

Education

Evalúa la contaminación por sales y disolventes orgánicos mediante el ratio OD260/230 — el complemento que detecta lo que el 260/280 no ve: el ácido nucleico puro da 2.0–2.2, y un valor inferior a 2.0 señala arrastre de guanidinio (TRIzol/kits de columna), fenol, carbohidratos, EDTA, sales altas o β-mercaptoetanol; 2.2–2.3 suele ser un efecto aceptable del tampón; por encima de 2.3 apunta a un artefacto de agua/tampón y conviene remedir. Campo A280 opcional para el cruce OD260/280 (ADN ~1.8, ARN ~2.0): una sola serie de lecturas cubre ambas dimensiones de pureza. Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Thermo Fisher T042, Sambrook & Russell, Manchester 1995. Solo educación y planificación.

Education

Evalúa la pureza de ácidos nucleicos por el ratio OD260/280: las bases absorben máximo a 260 nm y los aminoácidos aromáticos (y el fenol) cerca de 280 nm, así que A260/A280 diagnostica arrastre de proteína/fenol. Valores esperados: ADN puro ≈ 1.8 (ventana 1.7–2.0), ARN puro ≈ 2.0 (ventana 1.8–2.2); ADN < 1.7 o ARN < 1.8 indica contaminación por proteína/fenol/guanidina, ADN > 2.0 sugiere contaminación con ARN, ARN > 2.2 apunta a artefacto de medición (baja fuerza iónica). Campo opcional A230 para el ratio secundario A260/A230 (puro 2.0–2.2; menor indica guanidina/fenol/carbohidratos/sales). Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Manchester 1995, Sambrook & Russell, Thermo Fisher T042. Solo educación y planificación.

Development

Decodifica un paquete NTP/SNTP de 48 bytes: byte 0 bitfields, stratum/poll/precision, root delay/dispersion, reference ID, cuatro timestamps de 64 bits (época 1900)

Math & Numbers

Conversión de momento de fuerza: N·m (base SI) ↔ dyn·cm (CGS, 1=10⁻⁷ N·m) ↔ lbf·ft (1=1,3558179483314004 N·m) ↔ kgf·m (1=9,80665 N·m). Cada factor = fuerza × longitud. Conversión vía N·m con los cuatro equivalentes. Ref.: tuerca rueda ~100 N·m, motor pico ~250 N·m.

Math & Numbers

Calcula la eficiencia del motor: η = P_out / P_in. Admite entrada eléctrica (monofásica U·I·cosφ o trifásica √3·U·I·cosφ) o P_in directa; la potencia de salida puede obtenerse del desglose de pérdidas (cobre+hierro+mecánicas+adicionales) o darse directamente.

Math & Numbers

Deslizamiento de un motor asíncrono trifásico: n_s = 60·f/p, s = (n_s − n)/n_s. Calcula el deslizamiento desde la velocidad del rotor o la velocidad desde el deslizamiento. Detecta modo generador (s<0).

Math & Numbers

Construye la curva par-velocidad de un motor asíncrono trifásico mediante la fórmula de Kloss: n_s=60f/p, T/T_max=2/(s/s_max+s_max/s). Devuelve par nominal, par máximo, par de arranque, deslizamiento crítico y una curva muestreada configurable.