Health

Estime la taille d'une population fermée par la méthode de Petersen : saisissez les individus marqués-relâchés du premier échantillon (n₁), le total capturé du second (n₂) et les marqués recapturés (m₂). Fournit l'estimation simple de Lincoln–Petersen N̂ = n₁n₂/m₂ et la correction de Chapman N̂ = (n₁+1)(n₂+1)/(m₂+1)−1, avec erreur-type de Seber, intervalle de confiance à 95%, individus jamais revus, proportion marquée et probabilité de capture. Rejette m₂ = 0 ou m₂ > min(n₁, n₂). Suppose une population fermée ; avec m₂ < 10, l'IC est indicatif.

Education

Calcule la multiplicité d'infection MOI = unités infectieuses ÷ cellules (direct : titre PFU/mL × volume mL ÷ cellules), ou en sens inverse le volume de virus V = MOI × cellules ÷ titre. Avec la statistique de Poisson : P(≥1) = 1 − e^(−MOI) ; MOI 1 → 63,2%, MOI 3 → 95,0%, MOI 10 → 99,995% de cellules infectées. Conseils d'adsorption inclus (30–60 min, changer le milieu). Sources : Molecular Cloning, Fields Virology. Uniquement à but éducatif.

Education

Convertit la concentration massique d'ADN en concentration molaire : nM = µg/mL × 10⁶ ÷ (masse par paire de bases × bp). Masses moyennes selon NEB : ADN double brin 650 Da/bp, simple brin 330 Da/nt (Promega utilise 660). Piège classique : avec 10⁻³ au dénominateur on obtient des µM, pas des nM (facteur 1000). 1 µg/mL = 1 ng/µL ; avec le volume, l'outil donne les pmol totaux et les molécules par µL. Sources : NEB NEBioCalculator, Promega BioMath, N_A = 6.022×10²³. Uniquement pour l'éducation et la planification.

Education

Prépare des solutions de travail d'ADN/ARN selon deux modes : concentration cible via C1V1 = C2V2 avec volume de stock V1 = C2×V2/C1 et volume de tampon ; ou facteur de dilution 1:X avec concentration finale C1/X et volume V2/X. Il suffit que stock et cible partagent la même unité (ng/µL, µg/mL, nM) — l'algèbre est indépendante des unités. Conseils de pipetage intégrés : V1 < 0.5 µL suggère une dilution en deux étapes, V1 < 2 µL une pointe à faible rétention ; une cible supérieure au stock est refusée. Sources : Sambrook & Russell 3ᵉ éd., guide de pipetage Thermo Fisher. Uniquement pour l'éducation et la planification.

Education

Convertit la turbidité OD600 en concentration cellulaire et poids sec (CDW) : OD normalisée = lecture × facteur de dilution ÷ trajet optique ; cellules/mL = OD × cellules par unité d'OD (1×10⁹ par défaut, valeur usuelle d'E. coli) ; CDW g/L = OD × g/L par unité d'OD (0.36 par défaut, BioNumbers 109837 ; plage 0.3–0.5). Les deux facteurs sont modifiables — souche, milieu et instrument les influencent ; les valeurs par défaut sont auto-cohérentes : 0.36 g/L ÷ 10⁹ cellules/mL = 0.36 pg/cellule. Les lectures OD > 1 sont signalées hors plage linéaire (Sigma-Aldrich). Sources : BioNumbers 109835/109837, Agilent/VectorBuilder. Calibrez avec votre propre courbe OD-CFU. Uniquement pour l'éducation.

Education

Évalue la contamination par sels et solvants organiques via le ratio OD260/230 — le contrôle qui voit ce que le 260/280 ne voit pas : l'acide nucléique pur donne 2.0–2.2, et une valeur inférieure à 2.0 signale un entraînement de guanidinium (TRIzol/kits à colonne), de phénol, de glucides, d'EDTA, de sels concentrés ou de β-mercaptoéthanol ; 2.2–2.3 est généralement un effet de tampon acceptable ; au-dessus de 2.3, artefact d'eau/tampon probable — re-mesurer. Champ A280 optionnel pour le croisement OD260/280 (ADN ~1.8, ARN ~2.0) : une seule série de lectures couvre les deux dimensions de pureté. Sous ~0.05 de lecture le ratio n'est pas fiable. Sources : Thermo Fisher T042, Sambrook & Russell, Manchester 1995. Uniquement pour l'éducation.

Education

Évalue la pureté d'un acide nucléique par le ratio OD260/280 : les bases absorbent au maximum à 260 nm et les acides aminés aromatiques (ainsi que le phénol) vers 280 nm — A260/A280 diagnostique donc un entraînement de protéines/phénol. Valeurs attendues : ADN pur ≈ 1.8 (fenêtre 1.7–2.0), ARN pur ≈ 2.0 (fenêtre 1.8–2.2) ; ADN < 1.7 ou ARN < 1.8 signale une contamination protéines/phénol/guanidinium, ADN > 2.0 suggère une contamination par l'ARN, ARN > 2.2 un artefact de mesure (faible force ionique). Champ A230 optionnel pour le ratio secondaire A260/A230 (pur 2.0–2.2 ; plus bas = guanidinium/phénol/glucides/sels). Sous ~0.05 de lecture le ratio n'est pas fiable. Sources : Manchester 1995, Sambrook & Russell, Thermo Fisher T042. Uniquement pour l'éducation.

Development

Décode un paquet NTP/SNTP de 48 octets : champs de bits de l’octet 0, stratum/poll/precision, root delay/dispersion, reference ID, quatre horodatages 64 bits (époque 1900)

Math & Numbers

Conversion de moment de force : N·m (base SI) ↔ dyn·cm (CGS, 1=10⁻⁷ N·m) ↔ lbf·ft (1=1,3558179483314004 N·m) ↔ kgf·m (1=9,80665 N·m). Chaque facteur = force × longueur. Conversion via N·m avec les quatre équivalents. Réf. : écrou de roue ~100 N·m, pic moteur ~250 N·m.

Math & Numbers

Rendement du moteur : η = P_out / P_in. Entrée électrique (monophasée U·I·cosφ ou triphasée √3·U·I·cosφ) ou P_in direct ; la puissance de sortie peut être obtenue par le détail des pertes (cuivre+fer+méca.+suppl.) ou saisie directement.

Math & Numbers

Glissement du moteur asynchrone : n_s = 60·f/p, s = (n_s − n)/n_s. Calcule le glissement depuis la vitesse rotor ou la vitesse depuis le glissement. Mode générateur (s<0) détecté automatiquement.

Math & Numbers

Construit la caractéristique couple-vitesse d'un moteur asynchrone triphasé via la formule de Kloss : n_s=60f/p, T/T_max=2/(s/s_max+s_max/s). Renvoie le couple nominal, le couple max, le couple de démarrage, le glissement critique et une courbe échantillonnée.