Isoelektrischer-Punkt-Rechner für Proteine (pI)

Rechnet in beide Richtungen zwischen Absorbanz und Transmission um: A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T und A = 2 − log₁₀(%T). Akzeptiert Absorbanz A, Prozent-Transmission %T oder Bruchteil-Transmission T und liefert alle drei Darstellungen gleichzeitig. Richtwerte: A=0 → %T=100; A=1 → %T=10; A=0,301 → %T=50. Negative Absorbanz hieße %T > 100 %, in der Standard-Spektrophotometrie unmöglich, und wird abgelehnt.

Rechnet exakt zwischen Enzymaktivitäts-Einheiten um: 1 U = 1 µmol/min (IUB 1978), 1 kat = 1 mol/s (BIPM 1999), also 1 U = 16,667 nkat, 1 µkat = 60 U und 1 kat = 6×10⁷ U. Geben Sie einen Wert in U/mU/µU oder kat/mkat/µkat/nkat/pkat ein und erhalten Sie dieselbe Aktivität in allen anderen Einheiten. Reine Skalenumrechnung ohne Testannahmen, nützlich für Manuskripte und Datenblätter. Quellen: IUB-Komitee, BIPM 21. CGPM, IUPAC-Green Book. Nur für Ausbildung.

Löst eine der vier Größen des Beer-Lambert-Gesetzes A = ε·c·l aus den anderen drei: Absorbanz A, molarer Extinktionskoeffizient ε (M⁻¹cm⁻¹), Konzentration (M/mM/µM/nM) oder Schichtdicke (cm/mm). Enthält den klassischen Ankerwert NADH ε340 = 6220 M⁻¹cm⁻¹ (100 µM in 1-cm-Küvette → A = 0,622), Grundlage enzymatischer Aktivitätstests.

Rechnet OD600-Trübungsmessungen in Zellkonzentration und Zelltrockengewicht (CDW) um: normierte OD = Messwert × Verdünnungsfaktor ÷ Schichtdicke; Zellen/mL = OD × Zellen pro OD-Einheit (standardmäßig 1×10⁹, üblich für E. coli); CDW g/L = OD × g/L pro OD-Einheit (Standard 0.36, BioNumbers 109837; Bereich 0.3–0.5). Beide Faktoren sind editierbar — Stamm, Medium und Gerät beeinflussen sie; die Defaults sind selbstkonsistent: 0.36 g/L ÷ 10⁹ Zellen/mL = 0.36 pg/Zelle. Messungen über OD 1 werden als außerhalb des linearen Bereichs markiert (Sigma-Aldrich). Quellen: BioNumbers 109835/109837, Agilent/VectorBuilder. Mit eigener OD-KBE-Kurve kalibrieren. Nur für Ausbildung.