Saisissez la liste des espèces avec leurs effectifs et obtenez les indicateurs clés de la structure de la communauté : richesse S, indice de Margalef d=(S−1)/ln N, indice de Menhinick d=S/√N (corrigés de la taille de l'échantillon), Shannon H′ et H′max=ln S, équitabilité de Pielou J=H′/ln S (0–1 ; J=1 parfaitement uniforme) et dominance de Berger–Parker (proportion de l'espèce dominante). Accepte `nom : effectif` par ligne (avec tableau par espèce) ou des nombres simples ; les noms dupliqués sont sommés. Plus de richesse = plus d'espèces ; J élevé = individus mieux répartis.

Design

Générateur de snippets CSS glassmorphism / neumorphisme

Génère de bout en bout le snippet CSS glassmorphism ou neumorphisme complet : réglez flou, saturation, opacité de teinte, rayon, bordure, ombre extérieure et reflet supérieur ; en option superposition de grain SVG feTurbulence et repli @supports ; préfixe -webkit-backdrop-filter ajouté automatiquement (requis avant Safari 18) et correspondance des classes Tailwind (avec la note v3/v4), avec aperçu en direct de la carte sur fond dégradé.

Health

Indice de Diversité de Shannon (H′)

Calcule l'indice de Shannon (Shannon–Wiener) : H′ = −Σpᵢ·ln pᵢ, avec pᵢ = nᵢ/N. H′ augmente avec la richesse S et avec l'équitabilité ; bases ln (convention classique), log₂ (bits par espèce) ou log₁₀. Indique H′max = ln(S) et l'équitabilité de Pielou J = H′/ln(S) (0–1 ; J=1 parfaitement uniforme). Repères : H′ < 1 faible, 1–3 modéré–élevé, > 3 très élevé (contextuel ; comparez des communautés à S proche).

Utilities

Constructeur lien court + UTM + QR

Une seule passe remplace le trio bit.ly + Campaign Builder + générateur de QR : saisissez la page de destination et les UTM (trio obligatoire GA4 validé, minuscules optionnelles) et obtenez l'URL complète tracée ; un slug base62 déterministe (hachage FNV-1a, même entrée → même slug, sans compte ni réseau) sur votre domaine court ; deux QR codes PNG (lien court et complet) ; plus les redirections nginx / vercel.json / Netlify et la ligne CSV de suivi de campagne.

Health

Indice de Diversité de Simpson (D = 1−Σpᵢ²)

Calcule la famille des indices de Simpson à partir des effectifs : dominance λ = Σpᵢ², diversité de Gini–Simpson D = 1−Σpᵢ² (0–1, probabilité que deux individus tirés au hasard appartiennent à des espèces différentes ; D=0 en monoculture), l'indice réciproque 1/λ (nombre de Hill, « nombre effectif d'espèces ») et l'équitabilité de Simpson (1/λ)/S. D élevé = forte diversité ; λ élevé = dominance de quelques taxons. 1/λ se compare mieux entre communautés. Certaines disciplines définissent l'« indice de Simpson » comme λ ou 1/λ — les trois conventions sont données.

Education

Calculateur de taux de croissance spécifique bactérien (µ)

Calcule le taux de croissance spécifique en phase exponentielle : µ = ln2 ÷ t_d, ou à partir de deux comptages µ = ln(Nₜ/N₀) ÷ t (N en OD₆₀₀, UFC ou toute unité cohérente). Rapporte µ par heure/jour/minute, le temps de doublement équivalent et les divisions par heure k = 1/t_d. Repères : E. coli ≈ 20–30 min en LB et ≈ 1 h en milieu minimal, B. subtilis ≈ 26 min. Sources : cinétique de Monod, Brock Biology of Microorganisms. Uniquement à but éducatif.

Education

Calculateur de multiplicité d'infection (MOI)

Calcule la multiplicité d'infection MOI = unités infectieuses ÷ cellules (direct : titre PFU/mL × volume mL ÷ cellules), ou en sens inverse le volume de virus V = MOI × cellules ÷ titre. Avec la statistique de Poisson : P(≥1) = 1 − e^(−MOI) ; MOI 1 → 63,2%, MOI 3 → 95,0%, MOI 10 → 99,995% de cellules infectées. Conseils d'adsorption inclus (30–60 min, changer le milieu). Sources : Molecular Cloning, Fields Virology. Uniquement à but éducatif.

Education

Planificateur de dilutions en série (série au 1/10)

Conçoit la série classique de dilutions au 1/10 : nombre d'étapes n = ceil(log₁₀(stock ÷ cible)) à partir des concentrations, ou étapes fixées directement ; fournit le tableau des concentrations par tube (C_k = stock ÷ 10^k) et la recette par tube (mélange 1:9, p. ex. 100 µL du tube précédent + 900 µL de diluant par tube de 1 mL). Conseils : changer de cône à chaque étape, vortexer 5–10 s, travailler du plus concentré au plus dilué. À combiner avec le calculateur d'UFC/mL. Sources : Standard Methods, annexe FDA BAM. Uniquement à but éducatif.

Development

Simulateur d'aperçu SERP Google (bureau + mobile)

Saisissez titre, description et URL pour simuler au pixel le rendu actuel (2026) de Google : titre une ligne ~600px sur desktop, deux lignes sur mobile, ligne « site › chemin » sur desktop contre domaine seul sur mobile (changement janvier 2025), étoiles et prix en résultats enrichis, date, thèmes clair et sombre, jauges de pixels et diagnostic (FAQ rich supprimé en mai 2026).

Education

Calculateur d'activité spécifique (U/mg de protéine)

Calcule l'activité spécifique = activité(U) ÷ masse de protéine(mg), ou directement concentration d'activité(U/mL) ÷ concentration de protéine(mg/mL). Renvoie U/mg, nkat/mg et µkat/mg. C'est une métrique de pureté : elle croît pendant la purification et plafonne à kcat(min⁻¹) ÷ MW(kDa) pour l'enzyme pur (p. ex. kcat 600 min⁻¹ et 60 kDa → 10 U/mg) ; le rapport mesuré/théorique estime la pureté. Exige des dosages d'activité et de protéine (Bradford/BCA/A280) en zone linéaire. Sources : nomenclature IUBMB, Scopes Protein Purification, Lehninger. Uniquement à but éducatif.

Education

Calculateur de concentration molaire d'ADN (µg/mL → nM)

Convertit la concentration massique d'ADN en concentration molaire : nM = µg/mL × 10⁶ ÷ (masse par paire de bases × bp). Masses moyennes selon NEB : ADN double brin 650 Da/bp, simple brin 330 Da/nt (Promega utilise 660). Piège classique : avec 10⁻³ au dénominateur on obtient des µM, pas des nM (facteur 1000). 1 µg/mL = 1 ng/µL ; avec le volume, l'outil donne les pmol totaux et les molécules par µL. Sources : NEB NEBioCalculator, Promega BioMath, N_A = 6.022×10²³. Uniquement pour l'éducation et la planification.

Education

Calculateur de dilution d'acides nucléiques (C1V1 = C2V2)

Prépare des solutions de travail d'ADN/ARN selon deux modes : concentration cible via C1V1 = C2V2 avec volume de stock V1 = C2×V2/C1 et volume de tampon ; ou facteur de dilution 1:X avec concentration finale C1/X et volume V2/X. Il suffit que stock et cible partagent la même unité (ng/µL, µg/mL, nM) — l'algèbre est indépendante des unités. Conseils de pipetage intégrés : V1 < 0.5 µL suggère une dilution en deux étapes, V1 < 2 µL une pointe à faible rétention ; une cible supérieure au stock est refusée. Sources : Sambrook & Russell 3ᵉ éd., guide de pipetage Thermo Fisher. Uniquement pour l'éducation et la planification.