# 核酸稀释计算器（C1V1 = C2V2） 两种模式配制 DNA/RNA 工作液：目标浓度法按 C1V1 = C2V2 求取样体积 V1 = C2×V2÷C1，并给出补加缓冲液体积；稀释倍数法按 1:X 直接得终浓度 C1÷X 与取样体积 V2÷X。浓度单位只需原液与目标一致（ng/µL、µg/mL、nM 均可），代数与单位无关。内置移液建议：V1 < 0.5 µL 提示改用两步梯度稀释，V1 < 2 µL 提示低吸附枪头；目标高于原液会被拒绝（稀释不能增浓）。来源：Sambrook & Russell 第 3 版、Thermo Fisher 移液技术指南。仅供教学与实验规划。 > 标准页面: https://elysiatools.com/zh/tools/nucleic-acid-dilution - **分类:** Education - **关键词:** 核酸稀释, C1V1 = C2V2 计算器, DNA 稀释计算器, RNA 稀释, 稀释倍数 1:X, DNA 工作液, 原液配制计算, ng/µL 稀释, 梯度稀释 核酸, 分子生物学, 实验计算器 ## 概述 核酸稀释计算器用于配制 DNA/RNA 工作液，支持目标浓度法（C1V1 = C2V2）和稀释倍数法（1:X），计算所需原液、稀释液体积及最终浓度。原液与目标浓度需使用相同单位，仅供教学与实验规划参考。 ## 输入项 - **计算模式** (select): Solve for the stock volume from a target concentration, or dilute by a fixed 1:X factor. - **原液浓度（ng/µL）** (number): Quantified concentration of the stock (any unit — keep it identical to the target unit). - **目标浓度（ng/µL）** (number): Desired working concentration (C1V1 = C2V2 mode; must not exceed the stock). - **稀释倍数 X** (number): Total-to-stock ratio of a 1:X dilution (dilution-factor mode; must be greater than 1). - **终体积（µL）** (number): Total volume of the finished working solution. - **小数位数** (number) ## 适用场景 - 已知原液浓度、目标浓度和终体积，需要计算原液与缓冲液体积时。 - 需要按 1:X 稀释倍数快速配制 DNA 或 RNA 工作液时。 - 配液前检查取样体积是否过小，并获得移液操作建议时。 ## 工作原理 - 选择“目标浓度法”或“稀释倍数法”。 - 输入原液浓度、目标浓度或稀释倍数，以及工作液终体积。 - 目标浓度法按 V1 = C2×V2÷C1 计算原液体积；稀释倍数法按 V2÷X 计算取样体积。 - 工具输出原液体积、稀释液体积、最终浓度和稀释倍数，并对不适合的目标或过小体积给出提示。 ## 使用案例 - 将高浓度 DNA 小提产物配制为 qPCR 或其他实验所需的工作浓度。 - 按固定 1:10、1:100 等比例稀释 gBlocks、寡核苷酸或 RNA 原液。 - 在实验规划阶段核对终体积、稀释倍数和移液体积，减少手算错误。 ## 常见问题 ### 原液和目标浓度必须使用什么单位？ 两者使用相同单位即可，例如 ng/µL、µg/mL 或 nM。 ### 目标浓度可以高于原液浓度吗？ 不可以。稀释只能降低浓度，目标高于原液时工具会拒绝计算。 ### C1V1 = C2V2 模式计算什么？ 它根据原液浓度、目标浓度和终体积，计算所需原液体积及稀释液体积。 ### 1:X 稀释倍数是什么意思？ X 表示终体积与原液体积的比值，例如 1:10 表示 1 份原液加稀释液至 10 份总量。 ### 取样体积小于 0.5 µL 时怎么办？ 工具会建议采用两步梯度稀释；取样体积小于 2 µL 时会提示使用低吸附枪头。 ## 相关工具 - [BCA 法蛋白定量计算器（标准曲线）](https://elysiatools.com/zh/tools/bca-assay-calculator): 按 BCA 法（二喹啉甲酸，562 nm）由标准曲线定量蛋白：粘贴“浓度(µg/mL), A562”标准品数据与待测孔吸光度，工具做最小二乘拟合（斜率、截距、R²），反算 c = (A−b)/m，乘以稀释倍数输出 µg/mL 与 mg/mL。超范围读数标记外推；低于空白的读数判不可定量。BCA 要点：兼容约 5% 去垢剂（裂解液首选，优于 Bradford）；但 DTT/TCEP/β-巯基乙醇（>1 mM）与高浓度 EDTA 会还原/螯合 Cu²⁺ 使读数虚高，须先除干扰；工作范围约 20–2000 µg/mL（Micro BCA 0.5–20）。来源：Smith 1985 Anal Biochem。仅供教学与实验规划。 - [Bradford 法蛋白定量计算器（BSA 标准曲线）](https://elysiatools.com/zh/tools/bradford-assay-calculator): 按 Bradford 法（考马斯亮蓝 G-250，595 nm）由 BSA 标准曲线定量蛋白：粘贴“浓度(µg/mL), A595”标准曲线数据与待测孔吸光度，工具做最小二乘拟合（给出斜率、截距、R²），反算 c = (A−b)/m，再乘以稀释倍数输出 µg/mL 与 mg/mL。超出标准范围的读数标记为外推；低于空白的读数判为不可定量。要点：染料响应随蛋白不同差异大（BSA 约为 IgG 的两倍），高去垢剂不适；配制标准品须与样品同缓冲液。来源：Bradford 1976 Anal Biochem。仅供教学与实验规划。 - [DNA 浓度计算器（A260 吸光度法）](https://elysiatools.com/zh/tools/dna-concentration-a260): 用 A260 紫外吸光度法测定 DNA 浓度：浓度 (µg/mL) = A260 × 稀释倍数 × 转换系数 ÷ 光程 (cm)。经验系数：双链 DNA 1 OD = 50 µg/mL，单链 DNA 1 OD = 33 µg/mL（RNA 为 40，见配套 RNA 工具）。1 µg/mL = 1 ng/µL；输入洗脱体积即可得总量 µg。附带 0.1–1.5 线性范围判读：低于 0.1 噪声为主，高于 1.5 探测器可能饱和，需稀释重测。纯度请用 OD260/280 工具判断。来源：Marmur & Doty 1961/1962、Sambrook & Russell、Thermo Fisher NanoDrop 技术资料。仅供教学与实验规划，请以校准仪器为准。 - [酶催化效率计算器（kcat/Km）](https://elysiatools.com/zh/tools/enzyme-catalytic-efficiency): 计算催化效率 kcat/Km（M⁻¹s⁻¹）——低底物浓度下的表观二级速率常数，也是比较酶对不同底物偏好的公平标尺。两种输入：直接输入 kcat（s⁻¹ 或 min⁻¹）与 Km（nM/µM/mM）；或由 Vmax(µM/min) ÷ \[E\](µM) 先得 kcat 再除以 Km。判读（M⁻¹s⁻¹）：<10³ 低效（警惕底物错误或测定假象）、10³–10⁵ 一般、10⁵–10⁷ 高效（典型进化优化酶）、10⁷–10⁸ 很高、≥10⁸ 接近扩散控制极限（10⁸–10⁹）即“催化完美”（磷酸丙糖异构酶、碳酸酐酶、乙酰胆碱酯酶）。仅在 Km ≫ \[E\] 的稳态假设下成立。来源：Fersht、Knowles & Albery 1977、Radzicka & Wolfenden 1995。仅供教学与实验规划。 - [OD260/230 纯度比计算器（盐/有机溶剂污染）](https://elysiatools.com/zh/tools/od260-230-ratio): 用 OD260/230 比值判断核酸样品的盐与有机溶剂污染——这是 260/280 检不出污染时的重要补充：纯核酸该比值为 2.0–2.2，低于 2.0 提示胍（TRIzol/柱试剂盒）、酚、碳水化合物、EDTA、高盐或 β-巯基乙醇残留；2.2–2.3 通常为可接受的缓冲液效应；高于 2.3 提示水/缓冲液假象需复测。可选填 A280 同时给出 OD260/280 交叉核对（DNA ~1.8、RNA ~2.0），一次读数覆盖两个纯度维度。读数低于 ~0.05 时比值不可靠。来源：Thermo Fisher T042、Sambrook & Russell、Manchester 1995。仅供教学与实验规划。 - [核酸纯度比计算器（OD260/280）](https://elysiatools.com/zh/tools/od260-280-ratio): 用 OD260/280 比值判断核酸样品纯度：核酸碱基在 260 nm 吸收最强，蛋白质芳香族氨基酸与酚类在 280 nm 附近吸收，因此 A260/A280 可诊断蛋白/酚污染。预期值：纯 DNA ≈ 1.8（可接受 1.7–2.0），纯 RNA ≈ 2.0（可接受 1.8–2.2）；DNA < 1.7 或 RNA < 1.8 提示蛋白/酚/胍污染，DNA > 2.0 提示 RNA 污染，RNA > 2.2 提示低离子强度缓冲液等测量假象。可选填 A230 计算次级比值 A260/A230（纯品 2.0–2.2，偏低提示胍/酚/碳水化合物/盐残留）。读数低于 ~0.05 时比值不可靠。来源：Manchester 1995、Sambrook & Russell、Thermo Fisher T042。仅供教学与实验规划。 - [RNA 浓度计算器（A260，1 OD = 40 µg/mL）](https://elysiatools.com/zh/tools/rna-concentration-a260): 用 A260 紫外吸光度法测定 RNA 浓度：浓度 (µg/mL) = A260 × 稀释倍数 × 40 ÷ 光程 (cm)。RNA 的经验系数为 1 OD = 40 µg/mL，介于双链 DNA（50）与单链 DNA（33）之间；常见操作失误是沿用 dsDNA 的 50，会高估 RNA 产量 25%。1 µg/mL = 1 ng/µL；输入洗脱体积即可得总量 µg。附带 0.1–1.5 线性范围判读；纯 RNA 的 OD260/280 应接近 2.0（DNA 约 1.8），纯度请用配套比值工具判断，操作注意无 RNase、置冰。来源：Marmur & Doty 1961/1962、Sambrook & Russell、Manchester 1995、Thermo Fisher NanoDrop。仅供教学与实验规划，请以校准仪器为准。 - [碱剩余 BE 计算器（代谢分量）](https://elysiatools.com/zh/tools/base-excess-calculator): 计算碱剩余（BE）以量化酸碱失衡的代谢分量。Siggaard-Andersen 公式：BE = 0.9287×(HCO₃⁻ − 24.4 + 14.83×(pH − 7.4))；等效形式 BE = 0.02786×PaCO₂×10^(pH−6.1) + 13.77×pH − 124.58。BE < −3 代酸（负值 = 碱缺失），−3 至 +3 正常，> +3 代碱。严重度：轻度 −3~−6 / +3~+6；中度 −6~−10 / +6~+10；重度 < −10 / > +10。BE 将代谢分量从呼吸分量中分离，用于创伤（碱缺失 ≤ −6 与死亡率相关）、休克、心脏骤停预后。HCO₃⁻ 未提供时用 Henderson-Hasselbalch 从 pH + PaCO₂ 计算。来源 Siggaard-Andersen 1974、Cornell PICU、Medscape、Langer 2022。不构成医疗建议。 ## 示例 - [Web Python 图像处理示例](https://elysiatools.com/zh/samples/web-image-processing-python): Web Python 图像处理示例，使用 PIL/Pillow 包括读取、保存、缩放和格式转换 - [Android Java 图像处理示例](https://elysiatools.com/zh/samples/android-image-processing-java): Android Java 图像处理示例，包括图像读取保存、缩放和格式转换 - [Android Kotlin 图像处理示例](https://elysiatools.com/zh/samples/android-image-processing-kotlin): Android Kotlin 图像处理示例，包括图像读取保存、缩放和格式转换 - [Web Rust 图像处理示例](https://elysiatools.com/zh/samples/web-image-processing-rust): Web Rust 图像处理示例，包括图像读取保存、缩放和格式转换 ## 相关内容 - 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