# CFU/mL 菌落形成单位计算器 把平板菌落计数换算为原始培养物浓度：CFU/mL = 菌落数 × 10ⁿ ÷ 接种体积（mL），其中平皿接种自 10⁻ⁿ 稀释管。内置标准可计数范围 30–300 个/皿的判读：>300 提示 TNTC（过多无法计数，需加大稀释度），<30 提示 TFTC（过少误差大，需降低稀释度），0 个菌落给出检测限 LOD；可选填原始样品体积换算总 CFU。来源：Standard Methods 平板计数法、FDA BAM。仅供教学与实验规划。 > 标准页面: https://elysiatools.com/zh/tools/cfu-calculator - **分类:** Education - **关键词:** cfu 计算器, cfu/ml, 菌落形成单位 计算, 平板计数 稀释, 梯度稀释 cfu, tntc tftc 平板计数, 可计数范围 30 300, 细菌计数, 微生物计算器, 实验计算器 ## 概述 CFU/mL 菌落形成单位计算器可根据菌落数、稀释指数和接种体积，按公式“CFU/mL = 菌落数 × 10ⁿ ÷ 接种体积（mL）”估算原始培养物浓度，并按照 30–300 个菌落的标准范围提示可计数、TNTC 或 TFTC 状态。 ## 输入项 - **菌落数** (number): Colonies on the plate after incubation. - **稀释指数（10⁻ⁿ）** (number): n such that the plate was seeded from the 10⁻ⁿ dilution tube. - **平板接种体积（mL）** (number): Volume of diluent spread on the plate (0.1 mL = 100 µL is typical). - **原始样品体积（mL）** (number): Optional original culture volume, for total CFU in the sample. - **小数位数** (number) ## 适用场景 - 将平板上的菌落计数换算为原始培养物的 CFU/mL。 - 判断平皿菌落数是否处于 30–300 个的可计数范围。 - 根据原始样品体积进一步估算样品中的总 CFU。 ## 工作原理 - 输入培养后平板上的菌落数。 - 填写平皿所来自的稀释管，例如 10⁻⁶ 对应稀释指数 6。 - 输入平板接种体积，工具按公式计算 CFU/mL。 - 工具根据菌落数给出计数质量提示，并可在填写原始样品体积后换算总 CFU。 ## 使用案例 - 微生物学教学中演示梯度稀释与平板计数公式。 - 实验规划时比较不同稀释度和接种体积对应的计数结果。 - 整理平板菌落数据，并快速识别可计数、TNTC 和 TFTC 样本。 ## 常见问题 ### CFU/mL 的计算公式是什么？ CFU/mL = 菌落数 × 10ⁿ ÷ 平板接种体积（mL），其中 n 是稀释指数。 ### 什么是 30–300 个菌落的可计数范围？ 30–300 个菌落通常被视为标准可计数范围，便于获得相对可靠的平板计数结果。 ### TNTC 表示什么？ TNTC 表示菌落数超过 300，过多而难以可靠计数，通常应改用更高稀释度。 ### TFTC 表示什么？ TFTC 表示菌落数少于 30，数量过少、误差较大，通常应降低稀释度。 ### 原始样品体积是必填项吗？ 不是。填写后可根据 CFU/mL 和原始样品体积换算总 CFU；不填写则只计算 CFU/mL。 ## 相关工具 - [吸光度↔透射率换算器（A = −log₁₀T）](https://elysiatools.com/zh/tools/absorbance-transmittance-converter): 在吸光度与透射率之间双向换算：A = −log₁₀(T)，T = 10⁻ᴬ，%T = 100·T，A = 2 − log₁₀(%T)。可输入吸光度 A、百分透射率 %T 或小数透射率 T，同时给出全部三种表示。参考值：A=0 → %T=100；A=1 → %T=10；A=0.301 → %T=50。负吸光度意味着 %T>100%，标准分光光度法不可能出现，将被拒绝。 - [PCR 退火温度计算器（Ta = Tm − 5°C）](https://elysiatools.com/zh/tools/annealing-temperature-calculator): 计算 PCR 退火温度 Ta，支持两条规则：实验台默认的简单规则 Ta = Tm − 5°C（取引物对中较低的 Tm），与 Rychlik 1990 经验公式 Ta = 0.3×Tm(引物) + 0.7×Tm(产物) − 14.9（产物 Tm 通常 75–90°C，对典型引物对比简单规则高 1–8°C）。输出推荐 Ta、±3°C 梯度范围以及调温方向指引：温度过低出现非特异带与引物二聚体，过高则无扩增；两条引物 Tm 差应控制在 2–3°C 内并按较低者退火。来源：Rychlik 1990、Innis & Gelfand 1990、Lorenz 2012。仅供实验规划。 - [常染色体显性遗传系谱分析器](https://elysiatools.com/zh/tools/autosomal-dominant-pedigree): 计算常染色体显性（AD）遗传的子代风险并评估观察数据与预期比例的拟合度。亲本基因型组合决定预期患病比例：AA × 任意 = 全部患病；Aa × Aa = 3:1（75%）；Aa × aa = 1:1（50%）；aa × aa = 无。观察计数可做卡方检验（df = 1，α = 0.05 临界值 3.841）。系谱特征清单：垂直传递（代代出现）、两性患病率相近、父传子存在（可排除 X 连锁显性）、未患病者一般不传递（除新发突变）。示例疾病：亨廷顿病、软骨发育不全、马凡综合征。来源：Griffiths、Hartl & Clark 2007、StatPearls、OMIM。仅供教学用途。 - [常染色体隐性遗传风险计算器](https://elysiatools.com/zh/tools/autosomal-recessive-risk): 计算常染色体隐性遗传病在每个孩子及 n 个孩子中的患病概率。患病孩子（aa）必须从父母双方各得一个隐性等位基因：P(子代患病) = P(亲本1传 a) × P(亲本2传 a)。支持亲本状态：携带者（Aa）、患者（aa）、非携带者（AA）、未知（由群体携带率 c 推断：P(Aa)=c、P(aa)=c²）。双携带者 → 每胎 25% 患病、50% 携带、未患病子女为携带者的概率 2/3；n 个孩子至少一个患病 = 1 − (1−r)^n。默认携带率 0.04（北欧裔囊性纤维化 1/25）。来源：Griffiths、Hartl & Clark 2007、StatPearls。仅供教学用途，不能替代遗传咨询。 - [血球计数板细胞计数计算器](https://elysiatools.com/zh/tools/cell-counting-hemocytometer): 把血球计数板（改良 Neubauer）的原始计数换算为细胞浓度：cells/mL =（计数总数 ÷ 大方格数）× 稀释倍数 × 10⁴（每个 1 mm² 大方格在 0.1 mm 深度下容积恰为 0.1 µL）。输入计数总数、方格数（通常 4 个角格或加中央共 5 格）与稀释倍数，可选填样品体积以得到总细胞数；并按每格 20–100 个细胞的理想密度给出操作建议。来源：Freshney 细胞培养手册、Neubauer 改良室几何规格。仅供教学与实验规划。 - [细胞密度单位换算器（cells/mL↔cells/µL↔10⁶/mL↔10¹²/L）](https://elysiatools.com/zh/tools/cell-density-unit-converter): 在细胞密度单位之间全互换：cells/L、cells/mL、cells/µL、10³ cells/µL、10⁶ cells/mL、10⁹ cells/L、10¹² cells/L。覆盖细胞培养（如大肠杆菌 5×10⁸ cells/mL = 500 ×10⁶ cells/mL）与血液学报告（红细胞 4.9×10¹²/L = 4.9×10⁶ cells/µL、白细胞 6.5×10⁹/L = 6500 cells/µL）两种习惯写法，一次给出全部单位表。配套工具：OD600 细胞密度计算器（吸光度估算密度）。 - [细胞倍增时间计算器](https://elysiatools.com/zh/tools/cell-doubling-time): 由两次细胞计数计算指数生长期动力学：倍增时间 t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀)，同时给出倍增次数 n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 与比生长速率 μ = ln(Nₜ/N₀)/t（h⁻¹）。N₀/Nₜ 可为细胞数或任意一致单位的密度，时间支持小时/天/分钟。前提是两点都处于对数期（接种低于汇合、收获早于接触抑制），否则 t_d 会偏高；并附 HEK293/HeLa/CHO 常见倍增时间参照。来源：Freshney 细胞培养手册。仅供教学与实验规划。 - [台盼蓝细胞活力计算器](https://elysiatools.com/zh/tools/cell-viability-trypan-blue): 由台盼蓝拒染试验的活/死细胞计数计算活力：活力 % = 活 ÷（活 + 死）× 100；活细胞浓度 = 活细胞计数 × 稀释倍数 × 10⁴ ÷ 大方格数。台盼蓝不能透过完整细胞膜，活细胞明亮未着色、膜受损细胞染成深蓝。结果附培养状态判读（≥90% 健康、70–90% 可接受、<70% 受损）与操作要点（染色后 3–5 分钟内计数，暴露过久会杀死活细胞）。来源：Freshney《Culture of Animal Cells》、Strober 拒染试验方案。仅供教学与实验规划。 ## 示例 - [Web Python 图像处理示例](https://elysiatools.com/zh/samples/web-image-processing-python): Web Python 图像处理示例，使用 PIL/Pillow 包括读取、保存、缩放和格式转换 - [Android Java 图像处理示例](https://elysiatools.com/zh/samples/android-image-processing-java): Android Java 图像处理示例，包括图像读取保存、缩放和格式转换 - [Android Kotlin 图像处理示例](https://elysiatools.com/zh/samples/android-image-processing-kotlin): Android Kotlin 图像处理示例，包括图像读取保存、缩放和格式转换 - [Web Rust 图像处理示例](https://elysiatools.com/zh/samples/web-image-processing-rust): Web Rust 图像处理示例，包括图像读取保存、缩放和格式转换