# 吸光度↔透射率换算器（A = −log₁₀T）

在吸光度与透射率之间双向换算：A = −log₁₀(T)，T = 10⁻ᴬ，%T = 100·T，A = 2 − log₁₀(%T)。可输入吸光度 A、百分透射率 %T 或小数透射率 T，同时给出全部三种表示。参考值：A=0 → %T=100；A=1 → %T=10；A=0.301 → %T=50。负吸光度意味着 %T>100%，标准分光光度法不可能出现，将被拒绝。

> 标准页面: https://elysiatools.com/zh/tools/absorbance-transmittance-converter

- **分类:** Education

- **关键词:** 吸光度, 透射率, 光密度, 分光光度法, 比尔朗伯定律, 吸光度换算, 百分透射率, OD600, 紫外可见, 光谱学换算

## 概述

吸光度↔透射率换算器用于在吸光度（A）、百分透射率（%T）与小数透射率（T）之间进行双向快速转换，基于比尔-朗伯定律公式 A = −log₁₀(T) 与 A = 2 − log₁₀(%T) 精确计算光谱学核心参数。

## 输入项

- **数值** (number): Value of the selected input quantity.
- **输入量类型** (select): Whether the entered value is absorbance (A), percent transmittance (%T), or the 0–1 transmittance fraction (T).
- **小数位数** (number)

## 适用场景

- 在分光光度计读出百分透射率 %T 时，需要将其换算为吸光度 A 以进行浓度定量分析。
- 测量细菌培养液 OD600 或蛋白质溶液吸光度后，需要了解光线实际透过样品的比例。
- 校准紫外-可见分光光度计或检查中性密度滤光片的透过率与吸光度对应关系。

## 工作原理

- 选择输入的物理量类型：吸光度 (A)、百分透射率 (%T) 或 0–1 的小数透射率 (T)。
- 输入待转换的数值，并根据需要设定保留的小数位数（0 到 8 位）。
- 系统应用公式 A = −log₁₀(T) 与 %T = 100·T 进行互换计算，并同步输出三种表示形式的完整结果。

## 使用案例

- 紫外-可见光谱（UV-Vis）实验中透射率与吸光度数据的批量换算与记录。
- 微生物培养实验中根据 OD600 读数计算菌液对入射光的实际衰减比例。
- 光学滤光片与比色皿透过特性的吸光度验证与仪器校准。

## 常见问题

### 吸光度与透射率的基本换算公式是什么？

换算公式为 A = −log₁₀(T) 或 A = 2 − log₁₀(%T)，反向换算为 T = 10⁻ᴬ 以及 %T = 100 × 10⁻ᴬ。

### 为什么工具不接受负数吸光度？

负吸光度意味着透过率大于 100%，在标准分光光度吸收测量中物理上不存在，因此会被系统拒绝。

### 吸光度 A = 1 时代表多少光线透过？

A = 1 代表透射率 T = 0.1，即仅有 10% 的入射光透过样品到达检测器。

### 光密度（OD）和吸光度（A）可以通用此换算器吗？

可以，分光光度法中的 OD600 等光密度值在数学换算上与吸光度 A 完全一致。

### 小数位数设置对结果有什么影响？

小数位数控制输出结果中 A、T 和 %T 的四舍五入精度，默认保留 4 位小数，支持 0 至 8 位调整。

## 相关工具

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- [酶活力单位换算器（U ↔ katal）](https://elysiatools.com/zh/tools/enzyme-unit-converter): 在酶活力单位制之间精确换算：1 U = 1 µmol/min（IUB 1978），1 kat = 1 mol/s（BIPM 1999），故 1 U = 16.667 nkat、1 µkat = 60 U、1 kat = 6×10⁷ U。输入 U/mU/µU 或 kat/mkat/µkat/nkat/pkat 中的任意一个数值，同时得到其余全部单位的等价活力。纯单位换算，不含测定假设，供论文报告与试剂说明书使用。来源：IUB 命名委员会、BIPM 第 21 届 CGPM、IUPAC 绿皮书。仅供教学与实验规划。
- [连接反应摩尔比计算器（插入片段:载体）](https://elysiatools.com/zh/tools/ligation-molar-ratio): 按 NEB 规范设定连接反应：pmol = ng × 10³ ÷ (650 × bp)。求插入片段质量模式用经典公式 插入 ng = 比例 × 载体 ng × (插入 bp ÷ 载体 bp)（650 系数相消，纯 bp 换算）；核对模式输入两者质量得实际摩尔比。按插入片段长度给出建议区间：<200 bp 用 5–10:1，200–999 bp 用 3–5:1，≥1000 bp 用 1–5:1，并提示比例过高（>10:1）反而促成插入片段自连/多拷贝。输入反应体积可得载体/插入 nM 浓度（连接酶对末端浓度敏感，>1 nM 更高效）。来源：NEB NEBioCalculator 与连接指南、Promega BioMath、Sambrook & Russell。仅供教学与实验规划。
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- [OD600 细胞浓度计算器（E. coli）](https://elysiatools.com/zh/tools/od600-cell-density): 将 OD600 浊度读数换算为细胞浓度与细胞干重（CDW）：归一化 OD = 读数 × 稀释倍数 ÷ 光程；cells/mL = OD × 每 OD 细胞数（默认 1×10⁹，E. coli 常用值）；CDW g/L = OD × 每 OD 干重（默认 0.36，BioNumbers 109837，文献范围 0.3–0.5）。两个系数均可编辑——菌株、培养基与仪器都会影响换算；默认组合自洽：0.36 g/L ÷ 10⁹ cells/mL = 0.36 pg/细胞。OD > 1 线性区外会标记提示稀释复测（Sigma-Aldrich）。来源：BioNumbers 109835/109837、Agilent/VectorBuilder、Sigma-Aldrich。建议用自测 OD-CFU 或干重曲线校准。仅供教学与实验规划。
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