# Calculadora de diluição de ácidos nucleicos (C1V1 = C2V2)

Prepara soluções de trabalho de DNA/RNA em dois modos: por concentração alvo via C1V1 = C2V2, com volume de estoque V1 = C2×V2/C1 e volume de tampão; ou por fator de diluição 1:X com concentração final C1/X e volume V2/X. Basta que estoque e alvo usem a mesma unidade (ng/µL, µg/mL, nM) — a álgebra é independente da unidade. Conselhos de pipetagem integrados: V1 < 0.5 µL sugere diluição seriada em duas etapas, V1 < 2 µL ponta de baixa retenção; alvo acima do estoque é rejeitado. Fontes: Sambrook & Russell 3ª ed., guia de pipetagem Thermo Fisher. Apenas para educação e planejamento.

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- **Categoria:** Education

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## Visão geral

A Calculadora de diluição de ácidos nucleicos ajuda a preparar soluções de trabalho de DNA ou RNA usando C1V1 = C2V2 ou um fator de diluição 1:X. Informe as concentrações na mesma unidade e o volume final para obter o volume de estoque, o volume de diluente, a concentração final e o fator de diluição.

## Entradas

- **Modo de cálculo** (select): Solve for the stock volume from a target concentration, or dilute by a fixed 1:X factor.
- **Concentração do estoque (ng/µL)** (number): Quantified concentration of the stock (any unit — keep it identical to the target unit).
- **Concentração alvo (ng/µL)** (number): Desired working concentration (C1V1 = C2V2 mode; must not exceed the stock).
- **Fator de diluição X** (number): Total-to-stock ratio of a 1:X dilution (dilution-factor mode; must be greater than 1).
- **Volume final (µL)** (number): Total volume of the finished working solution.
- **Casas decimais** (number)

## Quando usar

- Calcular quanto de uma solução estoque de DNA ou RNA usar para atingir uma concentração alvo.
- Preparar uma diluição 1:X com volume final definido.
- Verificar volumes de pipetagem e identificar quando uma diluição seriada pode ser mais adequada.

## Como funciona

- Escolha entre o modo de concentração alvo, baseado em C1V1 = C2V2, e o modo de fator de diluição 1:X.
- Informe a concentração do estoque, a concentração alvo quando aplicável e o volume final em microlitros.
- Use a mesma unidade para a concentração do estoque e a concentração alvo, como ng/µL, µg/mL ou nM.
- A ferramenta calcula os volumes de estoque e diluente, a concentração final e o fator de diluição, além de indicar cuidados para volumes muito pequenos.

## Casos de uso

- Preparação de soluções de trabalho de DNA para ensaios de biologia molecular.
- Diluição de RNA ou DNA concentrado para uma concentração adequada ao experimento.
- Planejamento de diluições 1:X e conferência dos volumes antes da pipetagem.

## Perguntas frequentes

### Quais unidades de concentração posso usar?

Você pode usar ng/µL, µg/mL, nM ou outra unidade consistente. A concentração do estoque e a concentração alvo devem usar a mesma unidade.

### Qual é a fórmula usada no modo de concentração alvo?

A ferramenta usa C1V1 = C2V2 e calcula o volume de estoque como V1 = C2 × V2 / C1.

### O que significa uma diluição 1:X?

É uma proporção em que uma parte corresponde ao estoque e o volume total corresponde a X partes. A concentração final é C1/X.

### Posso informar uma concentração alvo maior que a do estoque?

Não. Uma diluição não aumenta a concentração, por isso alvos acima da concentração do estoque são rejeitados.

### O que fazer quando o volume de estoque é muito pequeno?

Volumes abaixo de 0,5 µL sugerem uma diluição seriada em duas etapas. Para volumes abaixo de 2 µL, a ferramenta recomenda uma ponta de baixa retenção.

## Ferramentas relacionadas

- [Calculadora do ensaio BCA (curva-padrão)](https://elysiatools.com/pt/tools/bca-assay-calculator): Quantifica proteína pelo método BCA (ácido bicinconínico, 562 nm) com curva-padrão: cole as linhas «concentração(µg/mL), A562» e as absorbâncias das amostras; a ferramenta ajusta por mínimos quadrados (inclinação, intercepto, R²), inverte c = (A−b)/m e aplica o fator de diluição (µg/mL e mg/mL). Leituras fora da faixa são marcadas como extrapolação; abaixo do branco, rejeitadas. Especificidades do BCA: tolera ~5% de detergente (melhor que Bradford para lisados); mas DTT/TCEP/β-mercaptoetanol (>1 mM) e EDTA alto reduzem/queleram o Cu²⁺ e inflacionam a leitura — remova-os antes; faixa útil ~20–2000 µg/mL (Micro BCA 0,5–20). Fonte: Smith 1985 Anal Biochem. Apenas para educação.
- [Calculadora do ensaio de Bradford (curva-padrão de BSA)](https://elysiatools.com/pt/tools/bradford-assay-calculator): Quantifica proteína pelo método de Bradford (Coomassie G-250, 595 nm) com curva-padrão de BSA: cole as linhas «concentração(µg/mL), A595» dos padrões e as absorbâncias das amostras; a ferramenta ajusta por mínimos quadrados (inclinação, intercepto, R²), inverte c = (A−b)/m e multiplica pelo fator de diluição, retornando µg/mL e mg/mL. Leituras fora da faixa dos padrões são marcadas como extrapolação; abaixo do branco são rejeitadas como não quantificáveis. Pontos-chave: a resposta do corante varia muito com a proteína (BSA ≈ o dobro da IgG) e detergentes altos interferem; padrões e amostras no mesmo tampão. Fonte: Bradford 1976 Anal Biochem. Apenas para educação.
- [Calculadora de concentração de DNA (absorbância A260)](https://elysiatools.com/pt/tools/dna-concentration-a260): Determina a concentração de DNA pela absorbância UV a 260 nm: concentração (µg/mL) = A260 × fator de diluição × constante ÷ trajeto óptico (cm). Constantes: DNA de fita dupla 1 OD = 50 µg/mL, fita simples 1 OD = 33 µg/mL (RNA 40 — veja a ferramenta de RNA). 1 µg/mL = 1 ng/µL; informe o volume de eluição para obter o rendimento total em µg. Inclui a janela linear 0.1–1.5: abaixo de 0.1 o ruído domina, acima de 1.5 o detector pode saturar. Pureza avalie por OD260/280. Fontes: Marmur & Doty 1961/1962, Sambrook & Russell, Thermo Fisher NanoDrop. Apenas para educação e planejamento experimental.
- [Calculadora de eficiência catalítica (kcat/Km)](https://elysiatools.com/pt/tools/enzyme-catalytic-efficiency): Calcula a eficiência catalítica kcat/Km (M⁻¹s⁻¹) — a constante aparente de segunda ordem em substrato baixo e a forma justa de comparar a preferência de uma enzima por substratos. Duas entradas: kcat direto (s⁻¹ ou min⁻¹) e Km (nM/µM/mM); ou kcat obtido de Vmax(µM/min) ÷ \[E\](µM) e dividido por Km. Faixas (M⁻¹s⁻¹): <10³ ineficiente (suspeite de substrato errado ou artefato), 10³–10⁵ moderada, 10⁵–10⁷ eficiente (enzimas bem evoluídas), 10⁷–10⁸ muito eficiente, ≥10⁸ perto do limite de difusão (10⁸–10⁹), «cataliticamente perfeita» (triose-fosfato isomerase, anidrase carbônica, acetilcolinesterase). Válida apenas no estado estacionário com Km ≫ \[E\]. Fontes: Fersht, Knowles & Albery 1977, Radzicka & Wolfenden 1995. Apenas para educação.
- [Calculadora de pureza OD260/230 (contaminação por sais/solventes)](https://elysiatools.com/pt/tools/od260-230-ratio): Avalia a contaminação por sais e solventes orgânicos pela razão OD260/230 — o controle que enxerga o que o 260/280 não vê: ácido nucleico puro dá 2.0–2.2, e valores abaixo de 2.0 sinalizam arraste de guanidínio (TRIzol/kits de coluna), fenol, carboidratos, EDTA, sais altos ou β-mercaptoetanol; 2.2–2.3 costuma ser efeito aceitável do tampão; acima de 2.3 aponta artefato de água/tampão — remedir. Campo A280 opcional para o cruzamento OD260/280 (DNA ~1.8, RNA ~2.0): uma série de leituras cobre as duas dimensões de pureza. Com leituras < ~0.05 a razão não é confiável. Fontes: Thermo Fisher T042, Sambrook & Russell, Manchester 1995. Apenas educação.
- [Calculadora de pureza de ácidos nucleicos (OD260/280)](https://elysiatools.com/pt/tools/od260-280-ratio): Avalia a pureza de ácidos nucleicos pela razão OD260/280: as bases absorvem no máximo a 260 nm e os aminoácidos aromáticos (e o fenol) perto de 280 nm, então A260/A280 diagnostica arraste de proteína/fenol. Valores esperados: DNA puro ≈ 1.8 (janela 1.7–2.0), RNA puro ≈ 2.0 (janela 1.8–2.2); DNA < 1.7 ou RNA < 1.8 indica contaminação por proteína/fenol/guanidina, DNA > 2.0 sugere contaminação com RNA, RNA > 2.2 aponta artefato de medição (baixa força iônica). Campo A230 opcional para a razão secundária A260/A230 (puro 2.0–2.2; abaixo disso guanidina/fenol/carboidratos/sais). Com leituras < ~0.05 a razão não é confiável. Fontes: Manchester 1995, Sambrook & Russell, Thermo Fisher T042. Apenas educação e planejamento.
- [Calculadora de concentração de RNA (A260, 1 OD = 40 µg/mL)](https://elysiatools.com/pt/tools/rna-concentration-a260): Determina a concentração de RNA pela absorbância UV a 260 nm: concentração (µg/mL) = A260 × fator de diluição × 40 ÷ trajeto óptico (cm). A constante do RNA é 1 OD = 40 µg/mL, entre o DNA de fita dupla (50) e o de fita simples (33); um erro comum é manter a constante 50 do dsDNA, superestimando o RNA em 25%. 1 µg/mL = 1 ng/µL; informe o volume de eluição para o rendimento total. Inclui a janela linear 0.1–1.5; RNA puro deve dar OD260/280 ≈ 2.0 (DNA ~1.8) — avalie a pureza com a ferramenta de razão. Trabalhe sem RNase e no gelo. Fontes: Marmur & Doty, Sambrook & Russell, Manchester 1995, Thermo Fisher. Apenas para educação e planejamento.
- [Calculador de Excesso de Bases (BE, Componente Metabólico)](https://elysiatools.com/pt/tools/base-excess-calculator): Calcula o excesso de bases (BE) para quantificar o componente metabólico dos distúrbios ácido-base. Fórmula de Siggaard-Andersen: BE = 0.9287×(HCO₃⁻ − 24.4 + 14.83×(pH − 7.4)). BE < −3 acidose metabólica (déficit de bases), −3 a +3 normal, > +3 alcalose metabólica. Gravidade: leve −3~−6 / +3~+6; moderada −6~−10 / +6~+10; grave < −10 / > +10. O BE isola o componente metabólico; usado em trauma (déficit ≤ −6 correlaciona com mortalidade), choque, parada cardíaca. HCO₃⁻ calculado por Henderson-Hasselbalch se ausente. Fontes: Siggaard-Andersen 1974, Cornell PICU, Medscape, Langer 2022. Não é conselho médico.

## Exemplos

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- [Exemplos de Processamento de Imagem Android Kotlin](https://elysiatools.com/pt/samples/android-image-processing-kotlin): Exemplos de processamento de imagem Android Kotlin incluindo leitura/escrita, dimensionamento e conversão de formato
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