# Calculadora de UFC/mL (unidades formadoras de colônias)

Converte a contagem de colônias na concentração do cultivo original: UFC/mL = colônias × 10ⁿ ÷ volume plaqueado (mL), tendo a placa sido semeada a partir do tubo 10⁻ⁿ. Inclui a regra da faixa contável 30–300 colônias/placa: >300 sinaliza TNTC (numerosas demais, aumentar diluição), <30 sinaliza TFTC (pocas demais, diminuir diluição) e 0 colônias dá o limite de detecção; conversão opcional em UFC totais. Fontes: Standard Methods, FDA BAM. Apenas para educação.

> Página canônica: https://elysiatools.com/pt/tools/cfu-calculator

- **Categoria:** Education

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## Visão geral

A Calculadora de UFC/mL converte a contagem de colônias em concentração do cultivo original usando o expoente de diluição e o volume plaqueado. Ela também interpreta a faixa contável de 30 a 300 colônias e pode estimar o total de UFC com base no volume original informado.

## Entradas

- **Colônias contadas** (number): Colonies on the plate after incubation.
- **Expoente de diluição (10⁻ⁿ)** (number): n such that the plate was seeded from the 10⁻ⁿ dilution tube.
- **Volume plaqueado (mL)** (number): Volume of diluent spread on the plate (0.1 mL = 100 µL is typical).
- **Volume da amostra original (mL)** (number): Optional original culture volume, for total CFU in the sample.
- **Casas decimais** (number)

## Quando usar

- Calcular a concentração de uma cultura a partir de uma placa incubada.
- Verificar se a contagem está na faixa recomendada de 30 a 300 colônias.
- Planejar a próxima diluição quando a placa apresentar TNTC ou TFTC.

## Como funciona

- Informe o número de colônias contadas na placa.
- Digite o expoente da diluição correspondente ao tubo usado, como 6 para 10⁻⁶.
- Informe o volume plaqueado em mililitros, como 0,1 mL.
- A ferramenta calcula UFC/mL pela fórmula colônias × 10ⁿ ÷ volume plaqueado e classifica a contagem.

## Casos de uso

- Estudantes podem conferir cálculos de diluição em exercícios de microbiologia.
- Laboratórios de ensino podem transformar contagens de placas em UFC/mL de forma padronizada.
- Pesquisadores podem comparar placas de diferentes diluições e identificar contagens TNTC ou TFTC.

## Perguntas frequentes

### Qual é a fórmula de cálculo de UFC/mL?

UFC/mL = colônias × 10ⁿ ÷ volume plaqueado em mL, em que n é o expoente da diluição.

### O que significa uma contagem entre 30 e 300 colônias?

A contagem está na faixa considerada contável para a interpretação do resultado.

### O que significa TNTC?

TNTC indica mais de 300 colônias, numerosas demais para uma contagem confiável. Recomenda-se usar uma diluição maior.

### O que significa TFTC?

TFTC indica menos de 30 colônias, poucas demais para uma estimativa adequada. Recomenda-se usar uma diluição menor.

### O que acontece quando há zero colônias?

A ferramenta informa o limite de detecção associado à ausência de colônias na placa.

## Ferramentas relacionadas

- [Conversor Absorbância↔Transmitância (A = −log₁₀T)](https://elysiatools.com/pt/tools/absorbance-transmittance-converter): Converte nos dois sentidos entre absorbância e transmitância: A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T e A = 2 − log₁₀(%T). Aceita absorbância A, transmitância percentual %T ou transmitância fracionária T e devolve as três representações de uma vez. Referências: A=0 → %T=100; A=1 → %T=10; A=0,301 → %T=50. Absorbância negativa implicaria %T > 100 %, impossível na espectrofotometria padrão, e é rejeitada.
- [Calculadora de temperatura de anelamento PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/pt/tools/annealing-temperature-calculator): Calcula a temperatura de anelamento (Ta) da PCR por duas regras: a regra simples de bancada Ta = Tm − 5°C (usando o MENOR Tm do par de primers) e a fórmula empírica de Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(primer) + 0.7×Tm(produto) − 14.9 (o Tm do produto costuma ser 75–90°C e a fórmula fica 1–8°C acima da regra simples em pares típicos). Fornece a Ta recomendada, faixa de gradiente ±3°C e a direção de ajuste: Ta baixa dá bandas inespecíficas e dímeros, alta sem produto; mantenha os dois Tm dentro de 2–3°C e anele pelo menor. Fontes: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Apenas planejamento experimental.
- [Analisador de pedigree de herança autossômica dominante](https://elysiatools.com/pt/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcula o risco na descendência para herança autossômica dominante (AD) e avalia o ajuste das contagens observadas à proporção esperada. Genótipos parentais → proporção esperada: AA × qualquer = todos afetados; Aa × Aa = 3:1 (75%); Aa × aa = 1:1 (50%); aa × aa = nenhum. Contagens observadas permitem um teste qui-quadrado (df = 1, crítico 3.841). Marcas do pedigree AD: transmissão vertical, ambos os sexos igualmente afetados, transmissão homem-para-homem presente (exclui dominante ligado ao X), não afetados não transmitem (exceto mutação de novo). Exemplos: Huntington, acondroplasia, Marfan. Fontes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Apenas uso educativo.
- [Calculadora de risco de herança autossômica recessiva](https://elysiatools.com/pt/tools/autosomal-recessive-risk): Calcula a probabilidade de uma criança (ou pelo menos uma de n crianças) ser afetada por uma doença autossômica recessiva. Uma criança afetada (aa) deve receber um alelo recessivo de AMBOS os progenitores: P(criança afetada) = P(progenitor 1 transmite a) × P(progenitor 2 transmite a). Estados: portador (Aa), afetado (aa), não portador (AA), desconhecido (P(Aa)=c, P(aa)=c² pela frequência populacional). Dois portadores → 25% por filho, 50% portadores, P(portador | não afetado) = 2/3; pelo menos um de n = 1 − (1−r)^n. Padrão 0.04 (fibrose cística 1/25). Fontes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Apenas uso educativo, não substitui aconselhamento genético.
- [Calculadora de contagem celular em hemocitômetro](https://elysiatools.com/pt/tools/cell-counting-hemocytometer): Converte contagens brutas da câmara de Neubauer melhorada em concentração: células/mL = (total contadas ÷ quadrados) × diluição × 10⁴ (cada quadrado de 1 mm² com 0,1 mm de profundidade contém exatamente 0,1 µL). Informe o total contado, o número de quadrados (geralmente 4 cantos ou 5 com o central) e a diluição; opcionalmente o volume para o total de células. Inclui conselhos pela densidade ideal de 20–100 células por quadrado. Fontes: manual Freshney, geometria Neubauer. Apenas para educação.
- [Conversor de Densidade Celular (células/mL↔células/µL↔10⁶/mL↔10¹²/L)](https://elysiatools.com/pt/tools/cell-density-unit-converter): Conversão completa entre unidades de densidade celular: células/L, células/mL, células/µL, 10³ células/µL, 10⁶ células/mL, 10⁹ células/L e 10¹² células/L. Cobre tanto cultivo celular (p. ex. E. coli 5×10⁸ células/mL = 500 ×10⁶ células/mL) quanto laudos hematológicos (eritrócitos 4,9×10¹²/L = 4,9×10⁶ células/µL; leucócitos 6,5×10⁹/L = 6 500 células/µL) e devolve a tabela completa de unidades. Ferramenta complementar: calculadora OD600.
- [Calculadora de tempo de duplicação celular](https://elysiatools.com/pt/tools/cell-doubling-time): Calcula a cinética de crescimento exponencial a partir de duas contagens: tempo de duplicação t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀), número de duplicações n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 e taxa específica μ = ln(Nₜ/N₀)/t (h⁻¹). N₀ e Nₜ podem ser números de células ou densidades em qualquer unidade consistente; o tempo aceita horas/dias/minutos. Pressupõe fase log em ambos os pontos (semeadura subconfluente, colheita antes da inibição por contato), senão t_d sai alto; inclui referências de HEK293/HeLa/CHO. Fonte: manual Freshney. Apenas para educação.
- [Calculadora de viabilidade celular com azul de tripan](https://elysiatools.com/pt/tools/cell-viability-trypan-blue): Calcula a viabilidade a partir das contagens de células vivas/mortas no teste de exclusão do azul de tripan: viabilidade % = vivas ÷ (vivas + mortas) × 100; concentração de vivas = contagem × diluição × 10⁴ ÷ quadrados. O corante não atravessa membranas intactas: as vivas ficam brilhantes e as lesadas coram-se de azul intenso. Inclui leitura do estado da cultura (≥90% saudável, 70–90% aceitável, <70% estressada) e dicas de protocolo (contar em 3–5 min; exposição prolongada mata células viáveis). Fontes: Freshney, protocolo de Strober. Apenas para educação.

## Exemplos

- [Exemplos de Processamento de Imagem Web Python](https://elysiatools.com/pt/samples/web-image-processing-python): Exemplos de processamento de imagem Web Python usando PIL/Pillow incluindo leitura, salvamento, redimensionamento e conversão de formato
- [Exemplos de Processamento de Imagem Android Java](https://elysiatools.com/pt/samples/android-image-processing-java): Exemplos de processamento de imagem Android Java incluindo leitura/escrita, dimensionamento e conversão de formato
- [Exemplos de Processamento de Imagem Android Kotlin](https://elysiatools.com/pt/samples/android-image-processing-kotlin): Exemplos de processamento de imagem Android Kotlin incluindo leitura/escrita, dimensionamento e conversão de formato
- [Exemplos de Processamento de Imagem Web Rust](https://elysiatools.com/pt/samples/web-image-processing-rust): Exemplos de processamento de imagem Web Rust incluindo leitura/gravação, redimensionamento e conversão de formato