# Visualiseur de Croisements Tri- et Dihybrides

Calcule les croisements mendéliens à 2-3 gènes avec échiquier de Punnett complet et diagramme en lignes fourchues. Soutient la dominance complète, incomplète et la codominance.

> Page canonique: https://elysiatools.com/fr/tools/punnett-trihybrid-cross

- **Catégorie:** Education

- **Mots-clés:** échiquier de punnett, trihybride, dihybride, génétique mendélienne, croisement, ligne fourchue, proportion génotype, proportion phénotype, génétique, biologie

## Présentation

Calcule les croisements mendéliens **dihybrides (2 gènes)** et **trihybrides (3 gènes)** avec un échiquier de Punnett complet ET un diagramme en lignes fourchues.

**Utilisation**
1. Déclarez chaque gène sur sa ligne : `Trait = Allèle1,Allèle2 [mode]`
2. Entrez les génotypes des deux parents, ex. `YyRr` ou `AaBbCc`.
3. Choisissez l'affichage : échiquier + proportions, lignes fourchues, ou les deux.

**Résultats** : échiquier complet (2ⁿ × 2ⁿ), diagramme fourchu (méthode de ramification montrant la multiplication des proportions monohybrides), proportions de génotypes et phénotypes.

## Entrées

- **Gènes (un par ligne : Trait = Allèle1,Allèle2 \[mode\])** (textarea): Declare 2 or 3 genes, one per line. Format: Trait = Allele1,Allele2 \[mode\]. Mode is optional (default complete).
- **Génotype parent 1 (ex. AaBb ou AaBbCc)** (text): Parent 1 genotype. Use the same letters as declared in the genes above.
- **Génotype parent 2** (text): Parent 2 genotype.
- **Afficher** (select): Both shows the full grid and the branch diagram. Punnett shows only the grid + ratios. Forked shows only the branch method.
- **Trier** (select): How to sort the genotype and phenotype ratio lists.

## Quand l'utiliser

- Lors de la résolution d'exercices de génétique mendélienne impliquant deux ou trois caractères simultanés.
- Pour enseigner ou étudier la méthode de ramification (lignes fourchues) sans avoir à dessiner manuellement une grille complexe de 64 cases.
- Pour déterminer rapidement les ratios phénotypiques théoriques en cas de dominance incomplète ou de codominance sur plusieurs loci.

## Fonctionnement

- Déclarez chaque gène sur une ligne distincte en spécifiant le nom du caractère, ses allèles et éventuellement le mode de transmission (complete, incomplete ou codominance).
- Saisissez les génotypes des deux parents en utilisant les mêmes lettres d'allèles que celles déclarées précédemment.
- Sélectionnez le mode d'affichage souhaité (échiquier de Punnett, diagramme en lignes fourchues ou les deux) et le mode de tri des résultats.
- Cliquez sur calculer pour générer la grille de croisement, le diagramme ramifié et les proportions détaillées des génotypes et phénotypes.

## Cas d'usage

- Préparation de supports de cours de biologie sur la transmission indépendante des caractères.
- Vérification rapide des résultats de croisements trihybrides complexes pour les étudiants en génétique.
- Simulation de croisements horticoles impliquant des caractères à dominance incomplète comme la couleur des fleurs.

## Questions fréquentes

### Quels modes de transmission génétique sont pris en charge ?

L'outil prend en charge la dominance complète, la dominance incomplète (mélange des caractères chez l'hétérozygote) et la codominance (expression simultanée des deux allèles).

### Puis-je analyser un croisement impliquant plus de trois gènes ?

Non, cet outil est spécifiquement conçu pour les croisements dihybrides (2 gènes) et trihybrides (3 gènes) afin de garantir une lisibilité optimale de l'échiquier.

### À quoi sert le diagramme en lignes fourchues ?

Il permet de calculer les proportions de croisements complexes en multipliant les probabilités de chaque gène de manière ramifiée, évitant ainsi de dessiner une grande grille de 64 cases.

### Comment formater la déclaration des gènes ?

Utilisez le format 'Nom = Allèle1,Allèle2 [mode]' par ligne. Par exemple : 'Couleur = Y,y' ou 'Fleur = R,W [incomplete]'.

### Comment sont triés les ratios de sortie ?

Vous pouvez choisir de trier les listes de génotypes et de phénotypes par ordre de fréquence décroissante ou par ordre alphabétique.

## Outils associés

- [Tuteur de dérive populationnelle Wright–Fisher et fréquences alléliques](https://elysiatools.com/fr/tools/wright-fisher-population-drift-and-allele-frequency-tutor): Simule la dérive génétique Wright–Fisher sur de nombreuses populations répliques avec mutation et sélection. Visualise trajectoires, distribution finale, décroissance de l'hétérozygotie et test chi² de Hardy–Weinberg.
- [Tuteur visuel fractions / décimaux / pourcentages](https://elysiatools.com/fr/tools/fraction-decimal-percent-visualizer): La même valeur en trois notations à la fois : 1/2 ⇄ 0.5 ⇄ 50 %. Camembert, barre de fraction, grille 10×10 et droite 0–1 liés ensemble ; un curseur interactif synchronise tout en direct et détecte la période décimale exacte (1/3 = 0.3̅, 1/7 = 0.142857̅). Avec des exercices de simplification, de repérage de période et de comparaison pourcentage/décimal, réponses expliquées.
- [Calculateur de température d'hybridation PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/fr/tools/annealing-temperature-calculator): Calcule la température d'hybridation (Ta) de la PCR selon deux règles : la règle simple de paillasse Ta = Tm − 5°C (en prenant le PLUS PETIT Tm de la paire d'amorces) et la formule empirique de Rychlik 1990 : Ta = 0.3×Tm(amorce) + 0.7×Tm(produit) − 14.9 (le Tm du produit est typiquement de 75–90°C et la formule tombe 1–8°C au-dessus de la règle simple pour des paires classiques). Fournit la Ta recommandée, une plage de gradient ±3°C et le sens d'ajustement : Ta trop basse donne bandes non spécifiques et dimères, trop haute aucun produit ; gardez les deux Tm à 2–3°C près et hybridez sur le plus petit. Sources : Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Uniquement pour la planification.
- [Analyseur de pedigree d'hérédité autosomique dominante](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcule le risque pour la descendance dans l'hérédité autosomique dominante (AD) et évalue l'ajustement des effectifs observés au ratio attendu. Génotypes parentaux → ratio attendu : AA × n'importe = tous atteints ; Aa × Aa = 3:1 (75%) ; Aa × aa = 1:1 (50%) ; aa × aa = aucun. Les effectifs observés permettent un test du chi-carré (df = 1, critique 3.841). Signes du pedigree AD : transmission verticale, deux sexes atteints à parts égales, transmission homme-homme présente (exclut le dominant lié à l'X), les non-atteints ne transmettent pas (sauf mutation de novo). Exemples : Huntington, achondroplasie, Marfan. Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Usage éducatif uniquement.
- [Calculateur de risque d'hérédité autosomique récessive](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-recessive-risk): Calcule la probabilité qu'un enfant (ou qu'au moins un de n enfants) soit atteint d'une maladie autosomique récessive. Un enfant atteint (aa) doit recevoir un allèle récessif de CHACUN des parents : P(enfant atteint) = P(parent 1 transmet a) × P(parent 2 transmet a). Statuts : porteur (Aa), atteint (aa), non porteur (AA), inconnu (P(Aa)=c, P(aa)=c² selon la fréquence populationnelle). Deux porteurs → 25% par enfant, 50% porteurs, P(porteur | non atteint) = 2/3 ; au moins un atteint parmi n = 1 − (1−r)^n. Défaut 0.04 (mucoviscidose 1/25). Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Usage éducatif uniquement, ne remplace pas un conseil génétique.
- [Calculateur de numération cellulaire à l'hémocytomètre](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-counting-hemocytometer): Convertit les comptages bruts de la chambre de Neubauer améliorée en concentration : cellules/mL = (total comptées ÷ carrés) × dilution × 10⁴ (chaque carré de 1 mm² sous 0,1 mm de profondeur contient exactement 0,1 µL). Saisissez le total compté, le nombre de carrés (généralement 4 angles ou 5 avec le central) et la dilution ; facultativement le volume pour le total de cellules. Conseils selon la densité idéale de 20–100 cellules par carré. Sources : manuel Freshney, géométrie Neubauer. Uniquement à but éducatif.
- [Calculateur de nombre de copies d'ADN (concentration → copies)](https://elysiatools.com/fr/tools/dna-copy-number-calculator): Convertit une concentration massique d'ADN en copies moléculaires par microlitre : copies/µL = c(g/µL) × N_A ÷ (longueur pb × 660 g/mol). Accepte ng/µL (sortie NanoDrop habituelle, identique à µg/mL), pg/µL (gamme Qubit) et µg/µL ; fournit la conversion en pmol/µL et le total de copies dans un volume optionnel. Repère : un plasmide de 5 000 pb à 50 ng/µL → 9.12×10⁹ copies/µL (0.0152 pmol/µL). Rappels : 660 Da/pb est une moyenne suffisante pour plasmides/génome/amplicons (pour des oligos exacts, sommez les masses des bases) ; l'A260 surestime les échantillons contaminés par ARN/nucléotides libres — pour la précision, préférez un dosage fluorométrique. Sources : N_A SI 2019, convention Thermo Fisher, Sambrook & Russell. Uniquement pour la planification.
- [Calculateur de ratios d'épistasie (9:7 / 9:3:4 / 12:3:1 / 13:3)](https://elysiatools.com/fr/tools/epistasis-ratio-calculator): Calcule les ratios phénotypiques F2 modifiés lorsque deux loci interagissent (AaBb × AaBb). Les groupes génotypiques du 9:3:3:1 de base — A_B_(9), A_bb(3), aaB_(3), aabb(1) — fusionnent en ratios classiques : gènes complémentaires 9:7 (coloration du pois de senteur), épistasie récessive 9:3:4 (robe du labrador), épistasie dominante 12:3:1 (couleur du fruit de courge), suppression dominante 13:3 (plumage de poule), gènes dupliqués dominants 15:1 (capsule de bourse-à-pasteur), effet cumulatif 9:6:1 (forme de courge). Avec des effectifs observés, effectue un test du chi-carré d'ajustement (df = classes − 1). Sources : Mendel 1866, Bateson & Punnett 1905, Griffiths, Hartl & Clark 2007. Usage éducatif uniquement.

## Exemples

- [Exemples de Développement Multiplateforme Xamarin](https://elysiatools.com/fr/samples/xamarin-samples): Exemples d'implémentation Xamarin.Forms et Xamarin.Native pour le développement d'applications mobiles multiplateformes avec C# et .NET
- [Exemples de Traitement d'Images Android Java](https://elysiatools.com/fr/samples/android-image-processing-java): Exemples de traitement d'images Android Java incluant lecture/écriture, mise à l'échelle et conversion de format
- [Exemples de Traitement d'Images Android Kotlin](https://elysiatools.com/fr/samples/android-image-processing-kotlin): Exemples de traitement d'images Android Kotlin incluant lecture/écriture, mise à l'échelle et conversion de format
- [Exemples de Traitement d'Images Web Python](https://elysiatools.com/fr/samples/web-image-processing-python): Exemples de traitement d'images Web Python utilisant PIL/Pillow incluant la lecture, l'enregistrement, le redimensionnement et la conversion de format