# Calculateur de masse moléculaire de protéine (par séquence) Calcule la masse moléculaire d'une protéine depuis sa séquence : MW = Σ masses moyennes des résidus + H₂O (18,01524 Da), avec la même table qu'ExPASy ProtParam (A 71,0788 … W 186,2132). L'entrée est insensible à la casse ; espaces et séparateurs * - . sont retirés ; les codes d'ambiguïté (B/J/O/U/X/Z) ne sont pas sommés mais comptés et signalés. Le résultat est la chaîne polypeptidique non modifiée : sans clivage du peptide signal, ponts disulfures (−2H par pont), PTM ni étiquettes. Renvoie kDa, masse moyenne par résidu et longueur. Sources : ExPASy ProtParam (Gasteiger 2005), handbook de Fasman. Uniquement à but éducatif. > Page canonique: https://elysiatools.com/fr/tools/protein-molecular-weight - **Catégorie:** Education - **Mots-clés:** calculateur masse moléculaire protéine, masse séquence acides aminés, table masses moyennes résidus, protparam masse moléculaire, calculateur masse polypeptide, kda depuis séquence, masse moléculaire peptide, équivalent protparam, longueur vers masse protéine, calculateur biochimie, calculateur laboratoire ## Présentation Ce calculateur estime la masse moléculaire moyenne d’une protéine à partir de sa séquence d’acides aminés. Il utilise la table de masses moyennes des résidus d’ExPASy ProtParam, ajoute H₂O et fournit la masse en Da, en kDa, la longueur et la masse moyenne par résidu. ## Entrées - **Séquence d'acides aminés** (textarea): One-letter amino-acid sequence (case-insensitive; spaces and * - . separators are ignored). - **Décimales** (number) ## Quand l'utiliser - Estimer rapidement la masse d’un peptide ou d’une chaîne polypeptidique à partir de sa séquence. - Vérifier la masse théorique d’une construction contenant une séquence d’étiquette. - Comparer une séquence avec une masse attendue avant une analyse biochimique ou pédagogique. ## Fonctionnement - Saisissez une séquence d’acides aminés à une lettre, en majuscules ou en minuscules. - Les espaces et séparateurs *, - et . sont automatiquement ignorés. - Le calcul additionne les masses moyennes des résidus standards puis ajoute 18,01524 Da pour H₂O. - Le résultat indique la masse en Da et en kDa, la longueur et la masse moyenne par résidu. ## Cas d'usage - Calculer la masse théorique d’un peptide ou d’une protéine courte. - Contrôler une séquence d’étiquette d’affinité avant une construction expérimentale. - Effectuer un contrôle pédagogique de la table de masses des 20 acides aminés standards. ## Questions fréquentes ### Quelles séquences puis-je saisir ? Saisissez une séquence d’acides aminés au format à une lettre, sans distinction entre majuscules et minuscules. ### Les espaces et les séparateurs sont-ils acceptés ? Oui. Les espaces ainsi que les séparateurs *, - et . sont retirés avant le calcul. ### Comment les codes d’ambiguïté sont-ils traités ? Les codes B, J, O, U, X et Z ne sont pas inclus dans la somme des masses, mais ils sont comptés et signalés. ### Le calcul inclut-il les modifications de la protéine ? Non. Il concerne une chaîne polypeptidique non modifiée, sans clivage du peptide signal, ponts disulfures, PTM ni étiquette ajoutée. ### Puis-je choisir le nombre de décimales ? Oui. Le nombre de décimales peut être réglé de 0 à 8, avec 2 décimales par défaut. ## Outils associés - [Analyseur de composition en acides aminés](https://elysiatools.com/fr/tools/amino-acid-composition): Analyse la composition d'une séquence : comptages et pourcentages molaires de chacun des 20 acides aminés standards ; totaux par groupe (basiques K/R/H, acides D/E, aromatiques F/W/Y, soufrés C/M, aliphatiques A/I/L/V, amides N/Q, hydroxyles S/T, autres G/P) ; GRAVY selon les valeurs d'hydropathie de Kyte–Doolittle 1982 (>0 tendance hydrophobe, <0 hydrophile ; les globulaires solubles se situent entre −1 et +0,3) ; et la masse moléculaire via la table ProtParam. Les codes d'ambiguïté (B/J/O/U/X/Z) sont comptés à part et exclus des pourcentages. Sources : Kyte & Doolittle 1982, ExPASy ProtParam, Lehninger. Uniquement à but éducatif. - [Simulateur de l'effet goulot d'étranglement (perte d'hétérozygotie)](https://elysiatools.com/fr/tools/bottleneck-effect-simulator): Simule la perte attendue d'hétérozygotie après un goulot d'étranglement (espérance déterministe). Sous dérive de Wright-Fisher idéale, H_{t+1} = H_t(1 − 1/(2N)) par génération, d'où H_final = H₀(1−1/2Nb)^t × (1−1/2Nr)^g ; la taille efficace harmonique Ne = (t+g)/(t/Nb + g/Nr) est dominée par le minimum ; F accumulé = 1 − H_final/H₀. Pour un allèle de fréquence p, la survie à UNE génération de goulot est 1 − (1−p)^(2Nb) ; les allèles rares disparaissent en premier. Cas classiques : éléphant de mer du Nord (~20 survivants vers 1890), guépard, nēnē d'Hawaï, bison d'Europe, atoll de Pingelap. Sources : Wright 1931, Nei et al. 1975, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Usage éducatif uniquement. - [Calculateur de longueur des fragments de restriction](https://elysiatools.com/fr/tools/restriction-fragment-length): Estime les tailles des fragments après digestion : un substrat circulaire avec n coupures produit n fragments (en bouclant l'origine), un linéaire en produit n+1. Le mode positions calcule les fragments exacts à partir de coordonnées séparées par des virgules ; le mode nombre de sites donne l'effectif et la moyenne pour une répartition uniforme. Inclut la fréquence attendue des sites dans l'ADN aléatoire : enzymes à 4 bases ~1 site/256 bp, à 6 bases ~1/4096 bp (REBASE/Sambrook), et des repères de résolution en agarose (<50 bp peut sortir du gel). Sources : Sambrook & Russell 3ᵉ éd., REBASE. Uniquement pour l'éducation. - [Calculateur d'efficacité de transfection (taux GFP+)](https://elysiatools.com/fr/tools/transfection-efficiency): Calcule l'efficacité de transfection via le taux GFP+ : efficacité = cellules GFP+ ÷ total × 100. Le mode mesure unique ajoute un intervalle de confiance Wilson à 95% (plus fiable que l'approximation normale pour petits effectifs) ; le mode réplicats prend des comptages parallèles séparés par virgules et renvoie l'efficacité par puits, la moyenne et l'écart-type d'échantillon (n−1). Bandes d'interprétation : ≥70% excellent (lignes faciles HEK293/CHO), 30–70% bon, 10–30% modéré, <10% faible (envisager électroporation ou vecteurs viraux). Hypothèses : même seuil GFP, cellules mortes exclues, lecture au pic 24–72 h. Sources : Wilson 1927, Newcombe 1998, Kim & Eberwine 2010. Uniquement pour l'éducation. - [Convertisseur de Vitesse Angulaire (rad/s / rpm / deg/s / Hz)](https://elysiatools.com/fr/tools/angular-velocity-converter): Conversion de vitesse angulaire : rad/s (base SI) ↔ tr/min (1=2π/60 rad/s) ↔ deg/s (1=π/180 rad/s) ↔ Hz (1 tour/s=2π rad/s). Ici Hz = tour par seconde. Conversion via rad/s avec les quatre équivalents. Réf. : vinyle 33⅓ tr/min≈3,49 rad/s, ralenti moteur ~800 tr/min≈83,8 rad/s. - [Métabolisme de Base Étendu (comparaison de formules)](https://elysiatools.com/fr/tools/basal-metabolic-rate-ext): Calcule en parallèle les cinq équations classiques du métabolisme basal adulte avec moyenne et étendue : Mifflin-St Jeor (standard actuel ADA), Harris-Benedict original (1919, surestime ~5%), Harris-Benedict révisé (Roza & Shizgal 1984), Schofield (FAO/OMS/ONU 1985, par tranches d'âge ; surestime sous les tropiques et en cas d'obésité) et Katch-McArdle (masse maigre optionnelle : 370 + 21,6×MM). Résultats en kcal/jour avec notes sur l'origine des écarts. Complète le bmr-calculator à formule unique et l'outil tdee Mifflin seul. Sources : Mifflin 1990, Roza 1984, FAO/OMS/ONU 1985, ADA. Adultes sains 18–100 ans. Non un avis médical. - [Estimation de la Confluence Cellulaire (méthode de grille)](https://elysiatools.com/fr/tools/confluency-estimator): Estime la confluence des cellules adhérentes par la méthode de la grille microscopique : confluence% = carrés occupés ÷ carrés totaux × 100 par champ. Accepte plusieurs champs et calcule la moyenne ± écart-type, l'étendue et l'interprétation de croissance (<10% clairsemée, 10–50% sub-confluente, 50–80% approche de la confluence, 80–95% quasi confluente, ≥95% confluente). Avec le temps de doublement, estime les heures jusqu'à la confluence cible : t = TD × log₂(cible/actuel). Comptez 3 à 5 champs ; repiquez à 70–90%. - [Calculateur de Dimensionnement de Conduit (débit et vitesse)](https://elysiatools.com/fr/tools/duct-size-calculator): Dimensionne un conduit à partir du débit Q et de la vitesse de projet v : section A=Q/v. Circulaire : diamètre D=√(4A/π). Rectangulaire de rapport r=a/b : b=√(A/r), a=r·b, diamètre équivalent ASHRAE D_éq=1,30·(a·b)^0,625/(a+b)^0,25. Débit en m³/s/m³/h/CFM ; résultats en mm et pouces. ## Exemples - [Exemples de Traitement d'Images Web Python](https://elysiatools.com/fr/samples/web-image-processing-python): Exemples de traitement d'images Web Python utilisant PIL/Pillow incluant la lecture, l'enregistrement, le redimensionnement et la conversion de format - [Échantillons Audio FLAC Libres de Droits](https://elysiatools.com/fr/samples/flac-samples): Collection audio FLAC sans perte pour tests et développement, incluant sons de la nature et musique de méditation - [Échantillons Audio WAV Libres de Droits](https://elysiatools.com/fr/samples/wav-samples): Collection audio WAV non compressé pour tests et développement, incluant sons de la nature et musique de méditation - [Exemples de Traitement d'Images Android Java](https://elysiatools.com/fr/samples/android-image-processing-java): Exemples de traitement d'images Android Java incluant lecture/écriture, mise à l'échelle et conversion de format ## Contenu associé - [Outils de quantification des protéines, cinétique enzymatique et analyse de séquences](https://elysiatools.com/fr/hubs/protein-quantification-enzyme-kinetics-sequence-tools): Planifiez des dosages de protéines, convertissez des concentrations et analysez séquences, activité, cinétique, inhibition et liaison dans un même flux de laboratoire. - [Outils de codes-barres, QR et etiquettes](https://elysiatools.com/fr/hubs/barcode-utility): Regroupe dans un meme hub les outils de generation de codes-barres, creation et decodage QR, validation UPC/EAN, partage WiFi par QR et etiquettes imprimables. - [Outils d encodage et de conversion audio](https://elysiatools.com/fr/hubs/audio-convert): Comparez la conversion de formats audio, les changements de debit, la conversion de frequence d echantillonnage, les changements de codec et les exports dans un meme hub. - [Outils de conversion de formats d image et d export anime](https://elysiatools.com/fr/hubs/image-convert): Comparez les convertisseurs d image pour JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 et les exports orientes animation dans un meme hub.