# Probabilité de rétention allélique par effet fondateur Calcule la probabilité qu'un allèle de fréquence p soit retenu parmi les 2N gènes de N fondateurs (échantillonnage binomial) : P(k) = C(2N,k)p^k(1−p)^(2N−k) ; rétention = 1 − (1−p)^(2N) ; perte = (1−p)^(2N) ; copies attendues = 2Np ; variance du nombre de copies = 2Np(1−p) ; variance de dérive de la fréquence fondatrice = p(1−p)/(2N). Sous dérive neutre, la probabilité de fixation finale avec k copies est k/(2N). Cas classiques : atoll de Pingelap (~20 survivants, un porteur de l'achromatopsie ; aujourd'hui ~10% atteints), Amish (Ellis–van Creveld), Ashkénazes (Tay–Sachs), Canadiens français. Sources : Mayr 1942, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Usage éducatif uniquement. > Page canonique: https://elysiatools.com/fr/tools/founder-effect-probability - **Catégorie:** Education - **Mots-clés:** effet fondateur, probabilité de rétention allélique, dérive génétique, mutation fondatrice, fondation de population, probabilité de perte allélique, pingelap, génétique des populations, génétique de la conservation, génétique ## Présentation Ce calculateur estime, par échantillonnage binomial, la probabilité qu’un allèle soit retenu ou perdu lors de la fondation d’une population diploïde, ainsi que le nombre attendu de copies et les mesures de dérive associées. ## Entrées - **Nombre de fondateurs** (number): Number of diploid founders (N). - **Fréquence allélique dans la source** (number): Frequency p of the allele in the source population (0 ≤ p ≤ 1). - **Décimales** (number) ## Quand l'utiliser - Pour étudier l’effet du nombre de fondateurs sur la conservation d’un allèle. - Pour comparer le risque de perte d’allèles rares dans plusieurs scénarios de fondation. - Pour illustrer l’échantillonnage génétique et la dérive neutre en génétique des populations ou de la conservation. ## Fonctionnement - Saisissez le nombre N de fondateurs diploïdes et la fréquence p de l’allèle dans la population source. - Choisissez entre 0 et 8 décimales pour l’affichage des résultats. - Le calcul applique un modèle binomial aux 2N copies géniques et évalue la rétention avec 1 − (1 − p)^(2N). - Le résultat JSON présente notamment les probabilités de rétention et de perte, le nombre attendu de copies et les mesures de variance associées. ## Cas d'usage - Comparer la rétention d’un même allèle avec 20, 50 ou 100 fondateurs. - Estimer la probabilité qu’une mutation rare disparaisse dès la fondation. - Présenter quantitativement l’effet fondateur dans un cours de génétique des populations. ## Questions fréquentes ### Que représente le nombre de fondateurs ? Il s’agit du nombre N d’individus diploïdes qui fondent la nouvelle population, soit 2N copies géniques. ### Quelle fréquence allélique faut-il saisir ? Saisissez la fréquence p dans la population source, entre 0 et 1. ### Comment la probabilité de perte est-elle calculée ? Elle est égale à (1 − p)^(2N), soit la probabilité qu’aucune copie ne soit échantillonnée. ### Que signifie le nombre attendu de copies ? La valeur 2Np est la moyenne du nombre de copies de l’allèle parmi les fondateurs. ### Le résultat prédit-il l’évolution réelle d’une population ? Non. Il repose sur un modèle binomial et une dérive neutre, et sert uniquement à des fins éducatives. ## Outils associés - [Convertisseur Absorbance↔Transmittance (A = −log₁₀T)](https://elysiatools.com/fr/tools/absorbance-transmittance-converter): Convertit dans les deux sens absorbance et transmittance : A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T et A = 2 − log₁₀(%T). Accepte l'absorbance A, la transmittance en pourcentage %T ou en fraction T et renvoie les trois représentations à la fois. Repères : A=0 → %T=100 ; A=1 → %T=10 ; A=0,301 → %T=50. Une absorbance négative impliquerait %T > 100 %, impossible en spectrophotométrie standard, et est rejetée. - [Calculateur de température d'hybridation PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/fr/tools/annealing-temperature-calculator): Calcule la température d'hybridation (Ta) de la PCR selon deux règles : la règle simple de paillasse Ta = Tm − 5°C (en prenant le PLUS PETIT Tm de la paire d'amorces) et la formule empirique de Rychlik 1990 : Ta = 0.3×Tm(amorce) + 0.7×Tm(produit) − 14.9 (le Tm du produit est typiquement de 75–90°C et la formule tombe 1–8°C au-dessus de la règle simple pour des paires classiques). Fournit la Ta recommandée, une plage de gradient ±3°C et le sens d'ajustement : Ta trop basse donne bandes non spécifiques et dimères, trop haute aucun produit ; gardez les deux Tm à 2–3°C près et hybridez sur le plus petit. Sources : Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Uniquement pour la planification. - [Analyseur de pedigree d'hérédité autosomique dominante](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcule le risque pour la descendance dans l'hérédité autosomique dominante (AD) et évalue l'ajustement des effectifs observés au ratio attendu. Génotypes parentaux → ratio attendu : AA × n'importe = tous atteints ; Aa × Aa = 3:1 (75%) ; Aa × aa = 1:1 (50%) ; aa × aa = aucun. Les effectifs observés permettent un test du chi-carré (df = 1, critique 3.841). Signes du pedigree AD : transmission verticale, deux sexes atteints à parts égales, transmission homme-homme présente (exclut le dominant lié à l'X), les non-atteints ne transmettent pas (sauf mutation de novo). Exemples : Huntington, achondroplasie, Marfan. Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Usage éducatif uniquement. - [Calculateur de risque d'hérédité autosomique récessive](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-recessive-risk): Calcule la probabilité qu'un enfant (ou qu'au moins un de n enfants) soit atteint d'une maladie autosomique récessive. Un enfant atteint (aa) doit recevoir un allèle récessif de CHACUN des parents : P(enfant atteint) = P(parent 1 transmet a) × P(parent 2 transmet a). Statuts : porteur (Aa), atteint (aa), non porteur (AA), inconnu (P(Aa)=c, P(aa)=c² selon la fréquence populationnelle). Deux porteurs → 25% par enfant, 50% porteurs, P(porteur | non atteint) = 2/3 ; au moins un atteint parmi n = 1 − (1−r)^n. Défaut 0.04 (mucoviscidose 1/25). Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Usage éducatif uniquement, ne remplace pas un conseil génétique. - [Calculateur de numération cellulaire à l'hémocytomètre](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-counting-hemocytometer): Convertit les comptages bruts de la chambre de Neubauer améliorée en concentration : cellules/mL = (total comptées ÷ carrés) × dilution × 10⁴ (chaque carré de 1 mm² sous 0,1 mm de profondeur contient exactement 0,1 µL). Saisissez le total compté, le nombre de carrés (généralement 4 angles ou 5 avec le central) et la dilution ; facultativement le volume pour le total de cellules. Conseils selon la densité idéale de 20–100 cellules par carré. Sources : manuel Freshney, géométrie Neubauer. Uniquement à but éducatif. - [Convertisseur de Densité Cellulaire (cellules/mL↔cellules/µL↔10⁶/mL↔10¹²/L)](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-density-unit-converter): Conversion complète entre unités de densité cellulaire : cellules/L, cellules/mL, cellules/µL, 10³ cellules/µL, 10⁶ cellules/mL, 10⁹ cellules/L et 10¹² cellules/L. Couvre la culture cellulaire (p. ex. E. coli 5×10⁸ cellules/mL = 500 ×10⁶ cellules/mL) comme les comptes rendus d'hématologie (érythrocytes 4,9×10¹²/L = 4,9×10⁶ cellules/µL ; leucocytes 6,5×10⁹/L = 6 500 cellules/µL) et renvoie la table complète des unités. Outil compagnon : calculateur OD600. - [Calculateur de temps de doublement cellulaire](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-doubling-time): Calcule la cinétique de croissance exponentielle à partir de deux comptages : temps de doublement t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀), nombre de doublements n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 et taux spécifique μ = ln(Nₜ/N₀)/t (h⁻¹). N₀ et Nₜ peuvent être des nombres de cellules ou des densités dans toute unité cohérente ; le temps accepte heures/jours/minutes. Suppose la phase exponentielle aux deux points (ensemencement sous-confluent, récolte avant l'inhibition de contact), sinon t_d sera surestimé ; repères HEK293/HeLa/CHO inclus. Source : manuel Freshney. Uniquement à but éducatif. - [Calculateur de viabilité cellulaire au bleu de trypan](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-viability-trypan-blue): Calcule la viabilité à partir des comptages cellules vivantes/mortes du test d'exclusion au bleu de trypan : viabilité % = vivantes ÷ (vivantes + mortes) × 100 ; concentration en vivantes = comptage × dilution × 10⁴ ÷ carrés. Le colorant ne traverse pas les membranes intactes : les cellules vivantes restent claires, les lésées se colorent en bleu profond. Fournit une lecture de l'état de la culture (≥90% saine, 70–90% acceptable, <70% stressée) et des conseils de protocole (compter en 3–5 min ; une exposition prolongée tue les cellules viables). Sources : Freshney, protocole de Strober. Uniquement à but éducatif. ## Exemples - [Exemples de Traitement d'Images Web Python](https://elysiatools.com/fr/samples/web-image-processing-python): Exemples de traitement d'images Web Python utilisant PIL/Pillow incluant la lecture, l'enregistrement, le redimensionnement et la conversion de format - [Exemples de Traitement d'Images Android Java](https://elysiatools.com/fr/samples/android-image-processing-java): Exemples de traitement d'images Android Java incluant lecture/écriture, mise à l'échelle et conversion de format - [Exemples de Traitement d'Images Android Kotlin](https://elysiatools.com/fr/samples/android-image-processing-kotlin): Exemples de traitement d'images Android Kotlin incluant lecture/écriture, mise à l'échelle et conversion de format - [Exemples de Traitement d'Images Web Rust](https://elysiatools.com/fr/samples/web-image-processing-rust): Exemples de traitement d'images Web Rust incluant lecture/écriture, redimensionnement et conversion de format ## Contenu associé - [Outils d encodage et de conversion audio](https://elysiatools.com/fr/hubs/audio-convert): Comparez la conversion de formats audio, les changements de debit, la conversion de frequence d echantillonnage, les changements de codec et les exports dans un meme hub. - [Outils de conversion de formats d image et d export anime](https://elysiatools.com/fr/hubs/image-convert): Comparez les convertisseurs d image pour JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 et les exports orientes animation dans un meme hub. - [Outils d interchange JSON et de traduction de formats](https://elysiatools.com/fr/hubs/json-convert): Comparez les outils de conversion JSON pour CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN et d autres formats structures dans un meme hub. - [Outils de conversion d'espaces colorimetriques pour web et impression](https://elysiatools.com/fr/hubs/design-convert): Des outils reunis pour conversion d'espaces colorimetriques entre web et impression dans un seul hub.