# Calculateur de ratios d'épistasie (9:7 / 9:3:4 / 12:3:1 / 13:3)

Calcule les ratios phénotypiques F2 modifiés lorsque deux loci interagissent (AaBb × AaBb). Les groupes génotypiques du 9:3:3:1 de base — A_B_(9), A_bb(3), aaB_(3), aabb(1) — fusionnent en ratios classiques : gènes complémentaires 9:7 (coloration du pois de senteur), épistasie récessive 9:3:4 (robe du labrador), épistasie dominante 12:3:1 (couleur du fruit de courge), suppression dominante 13:3 (plumage de poule), gènes dupliqués dominants 15:1 (capsule de bourse-à-pasteur), effet cumulatif 9:6:1 (forme de courge). Avec des effectifs observés, effectue un test du chi-carré d'ajustement (df = classes − 1). Sources : Mendel 1866, Bateson & Punnett 1905, Griffiths, Hartl & Clark 2007. Usage éducatif uniquement.

> Page canonique: https://elysiatools.com/fr/tools/epistasis-ratio-calculator

- **Catégorie:** Education

- **Mots-clés:** épistasie, calculateur de ratios d'épistasie, ratio dihybride modifié, ratio 9:7, ratio 9:3:4, ratio 12:3:1, ratio 13:3, ratio 15:1, ratio 9:6:1, interaction génique, gènes complémentaires, génétique mendélienne

## Présentation

Ce calculateur de ratios d’épistasie détermine les proportions phénotypiques attendues en F2 pour un croisement AaBb × AaBb, selon sept modèles d’interaction génique. Il convertit le ratio en effectifs attendus et peut comparer des effectifs observés au moyen d’un test du chi-carré d’ajustement.

## Entrées

- **Type d'interaction** (select): Type of gene interaction between the two loci.
- **Descendants F2 totaux** (number): Total number of F2 individuals used to convert ratios into expected counts.
- **Effectifs phénotypiques observés** (text): Optional comma-separated observed counts, one per phenotypic class, for a chi-square goodness-of-fit test.
- **Décimales** (number)

## Quand l'utiliser

- Comparer un croisement dihybride à un ratio mendélien 9:3:3:1 ou à un ratio modifié comme 9:7 ou 9:3:4.
- Convertir un ratio théorique en effectifs attendus pour un nombre donné de descendants F2.
- Évaluer l’ajustement d’effectifs phénotypiques observés avec un test du chi-carré.

## Fonctionnement

- Sélectionnez le type d’interaction génique : sans interaction, gènes complémentaires, épistasie récessive, épistasie dominante, suppression dominante, gènes dupliqués dominants ou effet cumulatif.
- Saisissez le nombre total de descendants F2 afin de calculer les effectifs attendus pour chaque classe phénotypique.
- Ajoutez facultativement les effectifs observés, séparés par des virgules et dans l’ordre des classes affichées.
- Le résultat indique le ratio, les classes phénotypiques, les effectifs attendus et, si des observations sont fournies, le chi-carré avec ses degrés de liberté.

## Cas d'usage

- Travaux pratiques de génétique mendélienne sur l’épistasie et les interactions entre deux loci.
- Préparation d’exercices portant sur la coloration du pois de senteur, la robe du labrador ou la couleur des fruits de courge.
- Analyse rapide de données F2 observées avant de comparer leur répartition au modèle théorique.

## Questions fréquentes

### Quels ratios ce calculateur prend-il en charge ?

Il prend en charge les ratios 9:3:3:1, 9:7, 9:3:4, 12:3:1, 13:3, 15:1 et 9:6:1.

### Quel croisement est utilisé comme base ?

Le calcul repose sur un croisement dihybride AaBb × AaBb et les groupes génotypiques issus du ratio 9:3:3:1.

### Les effectifs observés sont-ils obligatoires ?

Non. Ils sont facultatifs et servent uniquement à effectuer le test du chi-carré d’ajustement.

### Comment saisir les effectifs observés ?

Saisissez un effectif par classe, séparé par une virgule, en respectant l’ordre indiqué par le calculateur.

### À quoi servent les degrés de liberté ?

Pour le test du chi-carré, les degrés de liberté correspondent au nombre de classes moins un.

## Outils associés

- [Convertisseur Absorbance↔Transmittance (A = −log₁₀T)](https://elysiatools.com/fr/tools/absorbance-transmittance-converter): Convertit dans les deux sens absorbance et transmittance : A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T et A = 2 − log₁₀(%T). Accepte l'absorbance A, la transmittance en pourcentage %T ou en fraction T et renvoie les trois représentations à la fois. Repères : A=0 → %T=100 ; A=1 → %T=10 ; A=0,301 → %T=50. Une absorbance négative impliquerait %T > 100 %, impossible en spectrophotométrie standard, et est rejetée.
- [Calculateur de température d'hybridation PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/fr/tools/annealing-temperature-calculator): Calcule la température d'hybridation (Ta) de la PCR selon deux règles : la règle simple de paillasse Ta = Tm − 5°C (en prenant le PLUS PETIT Tm de la paire d'amorces) et la formule empirique de Rychlik 1990 : Ta = 0.3×Tm(amorce) + 0.7×Tm(produit) − 14.9 (le Tm du produit est typiquement de 75–90°C et la formule tombe 1–8°C au-dessus de la règle simple pour des paires classiques). Fournit la Ta recommandée, une plage de gradient ±3°C et le sens d'ajustement : Ta trop basse donne bandes non spécifiques et dimères, trop haute aucun produit ; gardez les deux Tm à 2–3°C près et hybridez sur le plus petit. Sources : Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Uniquement pour la planification.
- [Analyseur de pedigree d'hérédité autosomique dominante](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcule le risque pour la descendance dans l'hérédité autosomique dominante (AD) et évalue l'ajustement des effectifs observés au ratio attendu. Génotypes parentaux → ratio attendu : AA × n'importe = tous atteints ; Aa × Aa = 3:1 (75%) ; Aa × aa = 1:1 (50%) ; aa × aa = aucun. Les effectifs observés permettent un test du chi-carré (df = 1, critique 3.841). Signes du pedigree AD : transmission verticale, deux sexes atteints à parts égales, transmission homme-homme présente (exclut le dominant lié à l'X), les non-atteints ne transmettent pas (sauf mutation de novo). Exemples : Huntington, achondroplasie, Marfan. Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Usage éducatif uniquement.
- [Calculateur de risque d'hérédité autosomique récessive](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-recessive-risk): Calcule la probabilité qu'un enfant (ou qu'au moins un de n enfants) soit atteint d'une maladie autosomique récessive. Un enfant atteint (aa) doit recevoir un allèle récessif de CHACUN des parents : P(enfant atteint) = P(parent 1 transmet a) × P(parent 2 transmet a). Statuts : porteur (Aa), atteint (aa), non porteur (AA), inconnu (P(Aa)=c, P(aa)=c² selon la fréquence populationnelle). Deux porteurs → 25% par enfant, 50% porteurs, P(porteur | non atteint) = 2/3 ; au moins un atteint parmi n = 1 − (1−r)^n. Défaut 0.04 (mucoviscidose 1/25). Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Usage éducatif uniquement, ne remplace pas un conseil génétique.
- [Calculateur de numération cellulaire à l'hémocytomètre](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-counting-hemocytometer): Convertit les comptages bruts de la chambre de Neubauer améliorée en concentration : cellules/mL = (total comptées ÷ carrés) × dilution × 10⁴ (chaque carré de 1 mm² sous 0,1 mm de profondeur contient exactement 0,1 µL). Saisissez le total compté, le nombre de carrés (généralement 4 angles ou 5 avec le central) et la dilution ; facultativement le volume pour le total de cellules. Conseils selon la densité idéale de 20–100 cellules par carré. Sources : manuel Freshney, géométrie Neubauer. Uniquement à but éducatif.
- [Convertisseur de Densité Cellulaire (cellules/mL↔cellules/µL↔10⁶/mL↔10¹²/L)](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-density-unit-converter): Conversion complète entre unités de densité cellulaire : cellules/L, cellules/mL, cellules/µL, 10³ cellules/µL, 10⁶ cellules/mL, 10⁹ cellules/L et 10¹² cellules/L. Couvre la culture cellulaire (p. ex. E. coli 5×10⁸ cellules/mL = 500 ×10⁶ cellules/mL) comme les comptes rendus d'hématologie (érythrocytes 4,9×10¹²/L = 4,9×10⁶ cellules/µL ; leucocytes 6,5×10⁹/L = 6 500 cellules/µL) et renvoie la table complète des unités. Outil compagnon : calculateur OD600.
- [Calculateur de temps de doublement cellulaire](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-doubling-time): Calcule la cinétique de croissance exponentielle à partir de deux comptages : temps de doublement t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀), nombre de doublements n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 et taux spécifique μ = ln(Nₜ/N₀)/t (h⁻¹). N₀ et Nₜ peuvent être des nombres de cellules ou des densités dans toute unité cohérente ; le temps accepte heures/jours/minutes. Suppose la phase exponentielle aux deux points (ensemencement sous-confluent, récolte avant l'inhibition de contact), sinon t_d sera surestimé ; repères HEK293/HeLa/CHO inclus. Source : manuel Freshney. Uniquement à but éducatif.
- [Calculateur de viabilité cellulaire au bleu de trypan](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-viability-trypan-blue): Calcule la viabilité à partir des comptages cellules vivantes/mortes du test d'exclusion au bleu de trypan : viabilité % = vivantes ÷ (vivantes + mortes) × 100 ; concentration en vivantes = comptage × dilution × 10⁴ ÷ carrés. Le colorant ne traverse pas les membranes intactes : les cellules vivantes restent claires, les lésées se colorent en bleu profond. Fournit une lecture de l'état de la culture (≥90% saine, 70–90% acceptable, <70% stressée) et des conseils de protocole (compter en 3–5 min ; une exposition prolongée tue les cellules viables). Sources : Freshney, protocole de Strober. Uniquement à but éducatif.

## Exemples

- [Exemples de Traitement d'Images Web Python](https://elysiatools.com/fr/samples/web-image-processing-python): Exemples de traitement d'images Web Python utilisant PIL/Pillow incluant la lecture, l'enregistrement, le redimensionnement et la conversion de format
- [Exemples de Traitement d'Images Android Java](https://elysiatools.com/fr/samples/android-image-processing-java): Exemples de traitement d'images Android Java incluant lecture/écriture, mise à l'échelle et conversion de format
- [Exemples de Traitement d'Images Android Kotlin](https://elysiatools.com/fr/samples/android-image-processing-kotlin): Exemples de traitement d'images Android Kotlin incluant lecture/écriture, mise à l'échelle et conversion de format
- [Exemples de Traitement d'Images Web Rust](https://elysiatools.com/fr/samples/web-image-processing-rust): Exemples de traitement d'images Web Rust incluant lecture/écriture, redimensionnement et conversion de format

## Contenu associé

- [Outils d encodage et de conversion audio](https://elysiatools.com/fr/hubs/audio-convert): Comparez la conversion de formats audio, les changements de debit, la conversion de frequence d echantillonnage, les changements de codec et les exports dans un meme hub.
- [Outils de conversion de formats d image et d export anime](https://elysiatools.com/fr/hubs/image-convert): Comparez les convertisseurs d image pour JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 et les exports orientes animation dans un meme hub.
- [Outils d interchange JSON et de traduction de formats](https://elysiatools.com/fr/hubs/json-convert): Comparez les outils de conversion JSON pour CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN et d autres formats structures dans un meme hub.
- [Outils de conversion d'espaces colorimetriques pour web et impression](https://elysiatools.com/fr/hubs/design-convert): Des outils reunis pour conversion d'espaces colorimetriques entre web et impression dans un seul hub.