# Calculateur de la constante d'inhibition Ki et IC50 (Cheng–Prusoff) Convertit entre IC50 et Ki selon Cheng–Prusoff : compétitive Ki = IC50 ÷ (1+[S]/Km), incompétitive Ki′ = IC50 ÷ (1+Km/[S]) (lie le complexe ES), non compétitive pure Ki = IC50 (indépendante de [S]) ; conversion inverse Ki → IC50 incluse. Point clé : l'IC50 n'est PAS une constante — celle d'un inhibiteur compétitif augmente avec [S] ; à [S] = Km, Ki = IC50/2, d'où l'obligation de publier [S] et Km avec l'IC50. Bandes de Ki (nM) : <1 très puissant, 1–100 puissant (bons inhibiteurs de type médicament), 100–1000 modéré, >1000 faible. Hypothèses : inhibition réversible à l'équilibre, cinétique michaélienne, liaison non étroite (sinon équation de Morrison) ; confirmez le mécanisme par ajustement global. Sources : Cheng & Prusoff 1973, Copeland. Uniquement à but éducatif. > Page canonique: https://elysiatools.com/fr/tools/enzyme-inhibition-ki - **Catégorie:** Education - **Mots-clés:** calculateur cheng prusoff, conversion ki ic50, calculateur constante inhibition, inhibiteur compétiteur ki, inhibition incompétitive, inhibition non compétitive, dépendance ic50 au substrat, équation morrison liaison étroite, puissance inhibiteur enzymatique, calculateur découverte de médicaments, calculateur biochimie ## Présentation Ce calculateur convertit l’IC50 en Ki, ou inversement, selon l’équation de Cheng–Prusoff pour les inhibitions compétitive, incompétitive et non compétitive pure. Saisissez les concentrations, leurs unités et le type d’inhibition pour obtenir un résultat dans l’unité choisie. ## Entrées - **Mode de calcul** (select): Derive Ki from a measured IC50, or predict the IC50 a known Ki will give at your substrate concentration. - **Type d'inhibition** (select): Mechanism of inhibition — it decides which Cheng–Prusoff variant applies. - **IC50** (number): Measured IC50 in the unit selected below (IC50 → Ki mode). - **Ki** (number): Known inhibition constant in the unit selected below (Ki → IC50 mode). - **Unité IC50/Ki** (select): Concentration unit shared by the IC50/Ki input and the output. - **Concentration de substrat \[S\]** (number): Substrate concentration in the assay, same unit as Km (below). - **Km** (number): Michaelis constant for the substrate in the assay. - **Unité substrat/Km** (select): Shared unit of \[S\] and Km (only their ratio matters). - **Décimales** (number) ## Quand l'utiliser - Convertir une IC50 mesurée en constante d’inhibition Ki en tenant compte de \[S\] et de Km. - Prévoir l’IC50 attendue à partir d’une Ki connue dans les conditions d’un essai enzymatique. - Comparer la puissance apparente d’inhibiteurs en distinguant les mécanismes d’inhibition. ## Fonctionnement - Choisissez le sens de conversion : IC50 → Ki ou Ki → IC50. - Sélectionnez le type d’inhibition : compétitive, incompétitive ou non compétitive pure. - Saisissez la valeur de l’IC50 ou de la Ki, puis indiquez \[S\] et Km dans des unités compatibles. - Le calculateur applique la variante Cheng–Prusoff correspondante et affiche le résultat avec le nombre de décimales choisi. ## Cas d'usage - Analyser les résultats d’un essai enzymatique en convertissant une IC50 en Ki. - Planifier une expérience en estimant l’IC50 d’un inhibiteur connu à une concentration de substrat donnée. - Évaluer rapidement la puissance d’un inhibiteur à partir des bandes de Ki en nM. ## Questions fréquentes ### Quelle formule est utilisée pour une inhibition compétitive ? Ki = IC50 ÷ (1 + [S]/Km). ### Quelle formule est utilisée pour une inhibition incompétitive ? Ki′ = IC50 ÷ (1 + Km/[S]), pour un inhibiteur qui se lie au complexe enzyme-substrat. ### La Ki et l’IC50 utilisent-elles la même unité ? Oui. L’unité choisie pour l’IC50 ou la Ki est également utilisée pour le résultat, avec les options nM et µM. ### Pourquoi faut-il renseigner \[S\] et Km ? Le rapport entre [S] et Km détermine le facteur de conversion pour les inhibitions compétitive et incompétitive. ### Le calculateur convient-il à une liaison très étroite ? Non. Le calcul suppose une liaison non étroite et ne remplace pas l’équation de Morrison ni un ajustement global du mécanisme. ## Outils associés - [Calculateur de température d'hybridation PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/fr/tools/annealing-temperature-calculator): Calcule la température d'hybridation (Ta) de la PCR selon deux règles : la règle simple de paillasse Ta = Tm − 5°C (en prenant le PLUS PETIT Tm de la paire d'amorces) et la formule empirique de Rychlik 1990 : Ta = 0.3×Tm(amorce) + 0.7×Tm(produit) − 14.9 (le Tm du produit est typiquement de 75–90°C et la formule tombe 1–8°C au-dessus de la règle simple pour des paires classiques). Fournit la Ta recommandée, une plage de gradient ±3°C et le sens d'ajustement : Ta trop basse donne bandes non spécifiques et dimères, trop haute aucun produit ; gardez les deux Tm à 2–3°C près et hybridez sur le plus petit. Sources : Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Uniquement pour la planification. - [Analyseur de pedigree d'hérédité autosomique dominante](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcule le risque pour la descendance dans l'hérédité autosomique dominante (AD) et évalue l'ajustement des effectifs observés au ratio attendu. Génotypes parentaux → ratio attendu : AA × n'importe = tous atteints ; Aa × Aa = 3:1 (75%) ; Aa × aa = 1:1 (50%) ; aa × aa = aucun. Les effectifs observés permettent un test du chi-carré (df = 1, critique 3.841). Signes du pedigree AD : transmission verticale, deux sexes atteints à parts égales, transmission homme-homme présente (exclut le dominant lié à l'X), les non-atteints ne transmettent pas (sauf mutation de novo). Exemples : Huntington, achondroplasie, Marfan. Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Usage éducatif uniquement. - [Calculateur de risque d'hérédité autosomique récessive](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-recessive-risk): Calcule la probabilité qu'un enfant (ou qu'au moins un de n enfants) soit atteint d'une maladie autosomique récessive. Un enfant atteint (aa) doit recevoir un allèle récessif de CHACUN des parents : P(enfant atteint) = P(parent 1 transmet a) × P(parent 2 transmet a). Statuts : porteur (Aa), atteint (aa), non porteur (AA), inconnu (P(Aa)=c, P(aa)=c² selon la fréquence populationnelle). Deux porteurs → 25% par enfant, 50% porteurs, P(porteur | non atteint) = 2/3 ; au moins un atteint parmi n = 1 − (1−r)^n. Défaut 0.04 (mucoviscidose 1/25). Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Usage éducatif uniquement, ne remplace pas un conseil génétique. - [Calculateur de numération cellulaire à l'hémocytomètre](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-counting-hemocytometer): Convertit les comptages bruts de la chambre de Neubauer améliorée en concentration : cellules/mL = (total comptées ÷ carrés) × dilution × 10⁴ (chaque carré de 1 mm² sous 0,1 mm de profondeur contient exactement 0,1 µL). Saisissez le total compté, le nombre de carrés (généralement 4 angles ou 5 avec le central) et la dilution ; facultativement le volume pour le total de cellules. Conseils selon la densité idéale de 20–100 cellules par carré. Sources : manuel Freshney, géométrie Neubauer. Uniquement à but éducatif. - [Calculateur de temps de doublement cellulaire](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-doubling-time): Calcule la cinétique de croissance exponentielle à partir de deux comptages : temps de doublement t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀), nombre de doublements n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 et taux spécifique μ = ln(Nₜ/N₀)/t (h⁻¹). N₀ et Nₜ peuvent être des nombres de cellules ou des densités dans toute unité cohérente ; le temps accepte heures/jours/minutes. Suppose la phase exponentielle aux deux points (ensemencement sous-confluent, récolte avant l'inhibition de contact), sinon t_d sera surestimé ; repères HEK293/HeLa/CHO inclus. Source : manuel Freshney. Uniquement à but éducatif. - [Calculateur de viabilité cellulaire au bleu de trypan](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-viability-trypan-blue): Calcule la viabilité à partir des comptages cellules vivantes/mortes du test d'exclusion au bleu de trypan : viabilité % = vivantes ÷ (vivantes + mortes) × 100 ; concentration en vivantes = comptage × dilution × 10⁴ ÷ carrés. Le colorant ne traverse pas les membranes intactes : les cellules vivantes restent claires, les lésées se colorent en bleu profond. Fournit une lecture de l'état de la culture (≥90% saine, 70–90% acceptable, <70% stressée) et des conseils de protocole (compter en 3–5 min ; une exposition prolongée tue les cellules viables). Sources : Freshney, protocole de Strober. Uniquement à but éducatif. - [Calculateur d'UFC/mL (unités formatrices de colonie)](https://elysiatools.com/fr/tools/cfu-calculator): Convertit le dénombrement des colonies en concentration de la culture d'origine : UFC/mL = colonies × 10ⁿ ÷ volume ensemencé (mL), la boîte ayant été ensemencée depuis le tube 10⁻ⁿ. Intègre la règle de la fourchette comptable 30–300 colonies par boîte : >300 signale un TFTC (trop nombreuses, augmenter la dilution), <30 signale un dénombrement trop faible (diminuer la dilution) et 0 colonie donne la limite de détection ; conversion en UFC totales optionnelle. Sources : Standard Methods, FDA BAM. Uniquement à but éducatif. - [Calculateur de nombre de copies d'ADN (concentration → copies)](https://elysiatools.com/fr/tools/dna-copy-number-calculator): Convertit une concentration massique d'ADN en copies moléculaires par microlitre : copies/µL = c(g/µL) × N_A ÷ (longueur pb × 660 g/mol). Accepte ng/µL (sortie NanoDrop habituelle, identique à µg/mL), pg/µL (gamme Qubit) et µg/µL ; fournit la conversion en pmol/µL et le total de copies dans un volume optionnel. Repère : un plasmide de 5 000 pb à 50 ng/µL → 9.12×10⁹ copies/µL (0.0152 pmol/µL). Rappels : 660 Da/pb est une moyenne suffisante pour plasmides/génome/amplicons (pour des oligos exacts, sommez les masses des bases) ; l'A260 surestime les échantillons contaminés par ARN/nucléotides libres — pour la précision, préférez un dosage fluorométrique. Sources : N_A SI 2019, convention Thermo Fisher, Sambrook & Russell. Uniquement pour la planification. ## Exemples - [Exemples de Traitement d'Images Web Python](https://elysiatools.com/fr/samples/web-image-processing-python): Exemples de traitement d'images Web Python utilisant PIL/Pillow incluant la lecture, l'enregistrement, le redimensionnement et la conversion de format - [Exemples de Traitement d'Images Android Java](https://elysiatools.com/fr/samples/android-image-processing-java): Exemples de traitement d'images Android Java incluant lecture/écriture, mise à l'échelle et conversion de format - [Exemples de Traitement d'Images Android Kotlin](https://elysiatools.com/fr/samples/android-image-processing-kotlin): Exemples de traitement d'images Android Kotlin incluant lecture/écriture, mise à l'échelle et conversion de format - [Exemples de Traitement d'Images Web Rust](https://elysiatools.com/fr/samples/web-image-processing-rust): Exemples de traitement d'images Web Rust incluant lecture/écriture, redimensionnement et conversion de format ## Contenu associé - [Outils de quantification des protéines, cinétique enzymatique et analyse de séquences](https://elysiatools.com/fr/hubs/protein-quantification-enzyme-kinetics-sequence-tools): Planifiez des dosages de protéines, convertissez des concentrations et analysez séquences, activité, cinétique, inhibition et liaison dans un même flux de laboratoire. - [Outils d encodage et de conversion audio](https://elysiatools.com/fr/hubs/audio-convert): Comparez la conversion de formats audio, les changements de debit, la conversion de frequence d echantillonnage, les changements de codec et les exports dans un meme hub. - [Outils de conversion de formats d image et d export anime](https://elysiatools.com/fr/hubs/image-convert): Comparez les convertisseurs d image pour JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 et les exports orientes animation dans un meme hub. - [Outils d interchange JSON et de traduction de formats](https://elysiatools.com/fr/hubs/json-convert): Comparez les outils de conversion JSON pour CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN et d autres formats structures dans un meme hub.