# Calculateur de nombre de copies d'ADN (concentration → copies) Convertit une concentration massique d'ADN en copies moléculaires par microlitre : copies/µL = c(g/µL) × N_A ÷ (longueur pb × 660 g/mol). Accepte ng/µL (sortie NanoDrop habituelle, identique à µg/mL), pg/µL (gamme Qubit) et µg/µL ; fournit la conversion en pmol/µL et le total de copies dans un volume optionnel. Repère : un plasmide de 5 000 pb à 50 ng/µL → 9.12×10⁹ copies/µL (0.0152 pmol/µL). Rappels : 660 Da/pb est une moyenne suffisante pour plasmides/génome/amplicons (pour des oligos exacts, sommez les masses des bases) ; l'A260 surestime les échantillons contaminés par ARN/nucléotides libres — pour la précision, préférez un dosage fluorométrique. Sources : N_A SI 2019, convention Thermo Fisher, Sambrook & Russell. Uniquement pour la planification. > Page canonique: https://elysiatools.com/fr/tools/dna-copy-number-calculator - **Catégorie:** Education - **Mots-clés:** calculateur nombre copies adn, copies par microlitre, concentration adn vers copies, avogadro adn, nombre copies plasmide, copies matrice pcr, courbe standard qpcr, concentration molaire adn, pmol/µl adn, masse moléculaire adn, biologie moléculaire, calculateur laboratoire ## Présentation Ce calculateur convertit une concentration massique d'ADN en copies moléculaires par µL à partir de la concentration, de l'unité choisie et de la longueur de la matrice en paires de bases. Il fournit aussi la valeur en pmol/µL et, si un volume est indiqué, le nombre total de copies. Cet outil est destiné à la planification expérimentale. ## Entrées - **Concentration d'ADN** (number): Measured DNA concentration in the selected unit. - **Unité de concentration** (select): ng/µL and µg/mL are numerically identical; pg/µL is the Qubit range. - **Longueur de la matrice (pb)** (number): Total double-stranded length in bp: plasmid size, genome size, or amplicon length. - **Volume d'échantillon (µL, optionnel)** (number): Volume of template added (e.g. per PCR reaction); enter 0 to skip the total-copies calculation. - **Décimales** (number) ## Quand l'utiliser - Estimer le nombre de copies d'un plasmide, d'un génome ou d'un amplicon à partir d'une concentration en ADN. - Préparer une matrice pour une PCR ou une qPCR et calculer le nombre total de copies introduites. - Convertir des mesures en ng/µL, pg/µL, µg/mL ou µg/µL en copies/µL et en pmol/µL. ## Fonctionnement - Saisissez la concentration d'ADN et sélectionnez son unité : ng/µL, pg/µL, µg/mL ou µg/µL. - Indiquez la longueur totale de la matrice en paires de bases, par exemple la taille d'un plasmide ou d'un amplicon. - Le calcul applique la relation copies/µL = c(g/µL) × N_A ÷ (longueur en pb × 660 g/mol). - Ajoutez éventuellement un volume en µL pour obtenir le nombre total de copies dans cet échantillon. ## Cas d'usage - Planification de matrices pour des réactions PCR ou qPCR. - Préparation d'une courbe standard à partir d'un plasmide ou d'un ADN lambda. - Conversion de concentrations mesurées au NanoDrop ou dans la gamme du Qubit en quantité moléculaire. ## Questions fréquentes ### Quelles unités de concentration sont acceptées ? Le calculateur accepte ng/µL, pg/µL, µg/mL et µg/µL. ### Quelle longueur d'ADN faut-il saisir ? Saisissez la longueur totale de la matrice double brin en paires de bases : plasmide, génome ou amplicon. ### Comment obtenir le nombre total de copies ? Indiquez le volume de l'échantillon en µL. Le résultat multiplie alors les copies/µL par ce volume. ### Pourquoi la valeur 660 g/mol par paire de bases est-elle utilisée ? Il s'agit d'une masse moyenne adaptée aux plasmides, génomes et amplicons. Pour un oligonucléotide exact, les masses de chaque base doivent être additionnées. ### Une mesure A260 est-elle toujours précise ? Non. L'A260 peut surestimer la concentration en présence d'ARN ou de nucléotides libres ; un dosage fluorométrique est préférable pour une mesure plus précise. ## Outils associés - [Convertisseur Absorbance↔Transmittance (A = −log₁₀T)](https://elysiatools.com/fr/tools/absorbance-transmittance-converter): Convertit dans les deux sens absorbance et transmittance : A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T et A = 2 − log₁₀(%T). Accepte l'absorbance A, la transmittance en pourcentage %T ou en fraction T et renvoie les trois représentations à la fois. Repères : A=0 → %T=100 ; A=1 → %T=10 ; A=0,301 → %T=50. Une absorbance négative impliquerait %T > 100 %, impossible en spectrophotométrie standard, et est rejetée. - [Calculateur de viabilité cellulaire au bleu de trypan](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-viability-trypan-blue): Calcule la viabilité à partir des comptages cellules vivantes/mortes du test d'exclusion au bleu de trypan : viabilité % = vivantes ÷ (vivantes + mortes) × 100 ; concentration en vivantes = comptage × dilution × 10⁴ ÷ carrés. Le colorant ne traverse pas les membranes intactes : les cellules vivantes restent claires, les lésées se colorent en bleu profond. Fournit une lecture de l'état de la culture (≥90% saine, 70–90% acceptable, <70% stressée) et des conseils de protocole (compter en 3–5 min ; une exposition prolongée tue les cellules viables). Sources : Freshney, protocole de Strober. Uniquement à but éducatif. - [Calculateur de ratio molaire de ligature (insert:vecteur)](https://elysiatools.com/fr/tools/ligation-molar-ratio): Configure les ligatures selon NEB : pmol = ng × 10³ ÷ (650 × bp). Le mode calcul de masse utilise la formule classique insert_ng = ratio × vecteur_ng × (bp_insert ÷ bp_vecteur) (le facteur 650 s'annule) ; le mode vérification reçoit les deux masses et renvoie le ratio molaire réel. Bandes recommandées selon la taille de l'insert : <200 bp 5–10:1, 200–999 bp 3–5:1, ≥1000 bp 1–5:1, avec l'avertissement que des ratios >10:1 favorisent surtout les concatémères d'insert. Avec le volume de réaction, l'outil donne les concentrations nM (la ligase est sensible à la concentration d'extrémités, >1 nM est plus efficace). Sources : NEB NEBioCalculator et guide de ligature, Promega BioMath, Sambrook & Russell. Uniquement pour l'éducation. - [Planificateur de dilutions en série (série au 1/10)](https://elysiatools.com/fr/tools/serial-dilution-planner): Conçoit la série classique de dilutions au 1/10 : nombre d'étapes n = ceil(log₁₀(stock ÷ cible)) à partir des concentrations, ou étapes fixées directement ; fournit le tableau des concentrations par tube (C_k = stock ÷ 10^k) et la recette par tube (mélange 1:9, p. ex. 100 µL du tube précédent + 900 µL de diluant par tube de 1 mL). Conseils : changer de cône à chaque étape, vortexer 5–10 s, travailler du plus concentré au plus dilué. À combiner avec le calculateur d'UFC/mL. Sources : Standard Methods, annexe FDA BAM. Uniquement à but éducatif. - [Calculateur de température d'hybridation PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/fr/tools/annealing-temperature-calculator): Calcule la température d'hybridation (Ta) de la PCR selon deux règles : la règle simple de paillasse Ta = Tm − 5°C (en prenant le PLUS PETIT Tm de la paire d'amorces) et la formule empirique de Rychlik 1990 : Ta = 0.3×Tm(amorce) + 0.7×Tm(produit) − 14.9 (le Tm du produit est typiquement de 75–90°C et la formule tombe 1–8°C au-dessus de la règle simple pour des paires classiques). Fournit la Ta recommandée, une plage de gradient ±3°C et le sens d'ajustement : Ta trop basse donne bandes non spécifiques et dimères, trop haute aucun produit ; gardez les deux Tm à 2–3°C près et hybridez sur le plus petit. Sources : Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Uniquement pour la planification. - [Analyseur de pedigree d'hérédité autosomique dominante](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcule le risque pour la descendance dans l'hérédité autosomique dominante (AD) et évalue l'ajustement des effectifs observés au ratio attendu. Génotypes parentaux → ratio attendu : AA × n'importe = tous atteints ; Aa × Aa = 3:1 (75%) ; Aa × aa = 1:1 (50%) ; aa × aa = aucun. Les effectifs observés permettent un test du chi-carré (df = 1, critique 3.841). Signes du pedigree AD : transmission verticale, deux sexes atteints à parts égales, transmission homme-homme présente (exclut le dominant lié à l'X), les non-atteints ne transmettent pas (sauf mutation de novo). Exemples : Huntington, achondroplasie, Marfan. Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Usage éducatif uniquement. - [Calculateur de risque d'hérédité autosomique récessive](https://elysiatools.com/fr/tools/autosomal-recessive-risk): Calcule la probabilité qu'un enfant (ou qu'au moins un de n enfants) soit atteint d'une maladie autosomique récessive. Un enfant atteint (aa) doit recevoir un allèle récessif de CHACUN des parents : P(enfant atteint) = P(parent 1 transmet a) × P(parent 2 transmet a). Statuts : porteur (Aa), atteint (aa), non porteur (AA), inconnu (P(Aa)=c, P(aa)=c² selon la fréquence populationnelle). Deux porteurs → 25% par enfant, 50% porteurs, P(porteur | non atteint) = 2/3 ; au moins un atteint parmi n = 1 − (1−r)^n. Défaut 0.04 (mucoviscidose 1/25). Sources : Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Usage éducatif uniquement, ne remplace pas un conseil génétique. - [Calculateur de numération cellulaire à l'hémocytomètre](https://elysiatools.com/fr/tools/cell-counting-hemocytometer): Convertit les comptages bruts de la chambre de Neubauer améliorée en concentration : cellules/mL = (total comptées ÷ carrés) × dilution × 10⁴ (chaque carré de 1 mm² sous 0,1 mm de profondeur contient exactement 0,1 µL). Saisissez le total compté, le nombre de carrés (généralement 4 angles ou 5 avec le central) et la dilution ; facultativement le volume pour le total de cellules. Conseils selon la densité idéale de 20–100 cellules par carré. Sources : manuel Freshney, géométrie Neubauer. Uniquement à but éducatif. ## Exemples - [Exemples de Traitement d'Images Web Python](https://elysiatools.com/fr/samples/web-image-processing-python): Exemples de traitement d'images Web Python utilisant PIL/Pillow incluant la lecture, l'enregistrement, le redimensionnement et la conversion de format - [Exemples de Numéros TVA UE](https://elysiatools.com/fr/samples/eu-vat): Collection de numéros de TVA de tous les États membres de l'UE pour les tests de validation - [Exemples de Numéros de Téléphone Mondiaux](https://elysiatools.com/fr/samples/global-phone): Collection de numéros de téléphone de divers pays pour les tests de validation - [Échantillons de Nombres et Devises](https://elysiatools.com/fr/samples/number-currency-samples): Texte contenant divers formats de nombres et de devises pour tester l'extraction de devises ## Contenu associé - [Outils d encodage et de conversion audio](https://elysiatools.com/fr/hubs/audio-convert): Comparez la conversion de formats audio, les changements de debit, la conversion de frequence d echantillonnage, les changements de codec et les exports dans un meme hub. - [Outils de conversion de formats d image et d export anime](https://elysiatools.com/fr/hubs/image-convert): Comparez les convertisseurs d image pour JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 et les exports orientes animation dans un meme hub. - [Outils d interchange JSON et de traduction de formats](https://elysiatools.com/fr/hubs/json-convert): Comparez les outils de conversion JSON pour CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN et d autres formats structures dans un meme hub. - [Outils de conversion d'espaces colorimetriques pour web et impression](https://elysiatools.com/fr/hubs/design-convert): Des outils reunis pour conversion d'espaces colorimetriques entre web et impression dans un seul hub.