# Planificador de diluciones seriadas (serie 10×) Diseña la clásica serie de diluciones 10×: obtén el número de pasos n = ceil(log₁₀(stock ÷ objetivo)) a partir de la concentración inicial y la objetivo, o fija los pasos directamente; incluye la tabla de concentraciones por tubo (C_k = stock ÷ 10^k) y la receta por tubo (mezcla 1:9, p. ej. 100 µL del tubo anterior + 900 µL de diluyente por tubo de 1 mL). Consejos: cambiar punta en cada paso, vortear 5–10 s, trabajar de más a menos concentrado. Combínalo con la calculadora de UFC/mL. Fuentes: Standard Methods, apéndice FDA BAM. Solo para educación. > Página canónica: https://elysiatools.com/es/tools/serial-dilution-planner - **Categoría:** Education - **Palabras clave:** calculadora diluciones seriadas, serie dilución 10×, planificador dilución, esquema dilución logarítmica, cuántos tubos dilución, receta dilución 1 a 10, 100 microlitros 900 microlitros, serie dilución ufc, calculadora microbiología, calculadora laboratorio ## Descripción general El planificador de diluciones seriadas diseña una serie clásica de diluciones 10× a partir de la concentración del stock y la concentración objetivo, o de un número fijo de pasos. Calcula la concentración de cada tubo y la receta 1:9 según el volumen total indicado. Uso exclusivamente educativo. ## Entradas - **Modo de planificación** (select): Solve the step count from a target concentration, or start from a known step count. - **Concentración del stock** (number): Concentration of the starting material (any consistent unit). - **Concentración objetivo** (number): Concentration the final tube should reach or fall below (target mode). - **Número de pasos 10×** (number): Fixed step count (steps mode), 1–12. - **Volumen total por tubo (mL)** (number): Final volume in each dilution tube; sets the transfer recipe. - **Decimales** (number) ## Cuándo usarlo - Para calcular cuántos pasos 10× se necesitan entre una concentración inicial y una concentración objetivo. - Para planificar una serie con un número fijo de tubos y conocer la concentración resultante en cada uno. - Para obtener los volúmenes de muestra y diluyente necesarios en cada tubo. ## Cómo funciona - Selecciona si quieres calcular los pasos desde una concentración objetivo o introducirlos directamente. - Indica la concentración del stock, la concentración objetivo o el número de pasos, y el volumen total por tubo. - El planificador calcula cada concentración mediante Cₖ = stock ÷ 10ᵏ y muestra la concentración final. - Para cada tubo, genera una mezcla 1:9: una décima parte de muestra del tubo anterior y nueve décimas partes de diluyente. ## Casos de uso - Planificar diluciones de suspensiones microbianas antes de estimar UFC/mL. - Preparar una serie de tubos para seleccionar la concentración adecuada en un ensayo educativo. - Comparar las concentraciones intermedias de una serie cuando el número de pasos ya está definido por un protocolo. ## Preguntas frecuentes ### ¿Qué tipo de dilución calcula la herramienta? Calcula series de diluciones 10× consecutivas, equivalentes a una mezcla 1:9 en cada paso. ### ¿Cómo se determina el número de pasos? En el modo de concentración objetivo, se calcula como n = ceil(log₁₀(stock ÷ objetivo)). ### ¿Qué ocurre si introduzco un número fijo de pasos? La herramienta calcula las concentraciones de todos los tubos y la concentración final después de ese número de pasos. ### ¿Cómo cambia el volumen por tubo? El volumen total indicado determina la receta: una décima parte corresponde a la muestra y nueve décimas partes al diluyente. ### ¿La herramienta sustituye un protocolo de laboratorio? No. Es una herramienta educativa de planificación y no sustituye un SOP, la validación experimental ni las normas de seguridad. ## Herramientas relacionadas - [Conversor Absorbancia↔Transmitancia (A = −log₁₀T)](https://elysiatools.com/es/tools/absorbance-transmittance-converter): Convierte en ambos sentidos entre absorbancia y transmitancia: A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T y A = 2 − log₁₀(%T). Acepta absorbancia A, transmitancia porcentual %T o transmitancia decimal T y devuelve las tres representaciones a la vez. Valores guía: A=0 → %T=100; A=1 → %T=10; A=0,301 → %T=50. Una absorbancia negativa implicaría %T > 100 %, imposible en espectrofotometría estándar, y se rechaza. - [Calculadora de viabilidad celular con azul de tripán](https://elysiatools.com/es/tools/cell-viability-trypan-blue): Calcula la viabilidad a partir de los recuentos de células vivas/muertas en el ensayo de exclusión del azul de tripán: viabilidad % = vivas ÷ (vivas + muertas) × 100; concentración de vivas = recuento × dilución × 10⁴ ÷ cuadrículos. El colorante no atraviesa membranas intactas: las vivas quedan brillantes y las dañadas se tiñen azul intenso. Incluye interpretación del estado del cultivo (≥90% sano, 70–90% aceptable, <70% estresado) y consejos de protocolo (contar en 3–5 min; la exposición prolongada mata células viables). Fuentes: Freshney, ensayo de Strober. Solo para educación. - [Calculadora de número de copias de ADN (concentración → copias)](https://elysiatools.com/es/tools/dna-copy-number-calculator): Convierte la concentración másica de ADN en copias moleculares por microlitro: copias/µL = c(g/µL) × N_A ÷ (longitud pb × 660 g/mol). Admite ng/µL (salida típica de NanoDrop, idéntico a µg/mL), pg/µL (rango Qubit) y µg/µL; incluye la conversión a pmol/µL y el total de copias en un volumen opcional. Referencia: un plásmido de 5.000 pb a 50 ng/µL → 9.12×10⁹ copias/µL (0.0152 pmol/µL). Recordatorios: 660 Da/pb es un promedio suficiente para plásmidos/genoma/amplicones (para oligos exactos sume masa por base); el A260 sobreestima muestras con ARN/nucleótidos libres — para exactitud use ensayo con fluoróforo. Fuentes: constante de Avogadro SI 2019, convención Thermo Fisher, Sambrook & Russell. Solo planificación. - [Calculadora de proporción molar de ligadura (inserto:vector)](https://elysiatools.com/es/tools/ligation-molar-ratio): Configura ligaduras según NEB: pmol = ng × 10³ ÷ (650 × bp). El modo de cálculo de masa usa la fórmula clásica inserto_ng = proporción × vector_ng × (bp_inserto ÷ bp_vector) (el factor 650 se cancela); el modo de verificación entra ambas masas y devuelve la proporción molar real. Intervalos recomendados según el tamaño del inserto: <200 bp 5–10:1, 200–999 bp 3–5:1, ≥1000 bp 1–5:1, avisando de que proporciones >10:1 favorecen concámeros del inserto. Con el volumen de reacción se obtienen las concentraciones nM (la ligasa es sensible a la concentración de extremos, >1 nM es más eficiente). Fuentes: NEB NEBioCalculator y guía de ligadura, Promega BioMath, Sambrook & Russell. Solo para educación. - [Calculadora de temperatura de anillado PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/es/tools/annealing-temperature-calculator): Calcula la temperatura de anillado (Ta) de la PCR con dos reglas: la regla simple de banco Ta = Tm − 5°C (tomando el MENOR Tm del par de cebadores) y la fórmula empírica de Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(cebador) + 0.7×Tm(producto) − 14.9 (el Tm del producto suele ser 75–90°C y la fórmula cae 1–8°C por encima de la regla simple en pares típicos). Entrega la Ta recomendada, un rango de gradiente ±3°C y la dirección de ajuste: Ta baja produce bandas inespecíficas y dímeros, Ta alta sin producto; mantenga los dos Tm dentro de 2–3°C y anille con el menor. Fuentes: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Solo planificación experimental. - [Analizador de pedigrees de herencia autosómica dominante](https://elysiatools.com/es/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcula el riesgo en la descendencia para herencia autosómica dominante (AD) y evalúa el ajuste de los conteos observados a la proporción esperada. Genotipos parentales → proporción esperada: AA × cualquiera = todos afectados; Aa × Aa = 3:1 (75%); Aa × aa = 1:1 (50%); aa × aa = ninguno. Los conteos observados admiten una prueba chi-cuadrado (df = 1, crítico 3.841). Rasgos del pedigree AD: transmisión vertical, ambos sexos afectados por igual, existe transmisión hombre-a-hombre (excluye el dominante ligado al X), los no afectados no transmiten (salvo mutación de novo). Enfermedades ejemplo: Huntington, acondroplasia, Marfan. Fuentes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Solo uso educativo. - [Calculadora de riesgo de herencia autosómica recesiva](https://elysiatools.com/es/tools/autosomal-recessive-risk): Calcula la probabilidad de que un hijo (o al menos uno de n hijos) padezca una enfermedad autosómica recesiva. Un hijo afectado (aa) debe recibir un alelo recesivo de AMBOS progenitores: P(hijo afectado) = P(progenitor 1 transmite a) × P(progenitor 2 transmite a). Estados: portador (Aa), afectado (aa), no portador (AA), desconocido (P(Aa)=c, P(aa)=c² por frecuencia poblacional). Dos portadores → 25% por hijo, 50% portadores, P(portador | no afectado) = 2/3; al menos uno de n afectados = 1 − (1−r)^n. Portadores por defecto 0.04 (fibrosis quística 1/25). Fuentes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Solo uso educativo, no sustituye la consejería genética. - [Calculadora de recuento celular en cámara de Neubauer](https://elysiatools.com/es/tools/cell-counting-hemocytometer): Convierte recuentos brutos de la cámara de Neubauer mejorada en concentración: células/mL = (total contadas ÷ cuadrículos) × dilución × 10⁴ (cada cuadrículo de 1 mm² con profundidad de 0,1 mm contiene exactamente 0,1 µL). Introduzca el total contado, el número de cuadrículos (normalmente 4 esquinas o 5 con el central) y la dilución; opcionalmente el volumen para el total de células. Incluye consejos según la densidad ideal de 20–100 células por cuadrículo. Fuentes: manual de Freshney, geometría Neubauer mejorada. Solo para educación. ## Ejemplos - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Web Python](https://elysiatools.com/es/samples/web-image-processing-python): Ejemplos de procesamiento de imágenes Web Python usando PIL/Pillow incluyendo lectura, guardado, redimensionamiento y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Java](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-java): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Java incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Kotlin](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-kotlin): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Kotlin incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Web Rust](https://elysiatools.com/es/samples/web-image-processing-rust): Ejemplos de procesamiento de imágenes Web Rust incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato ## Contenido relacionado - [Herramientas de codificacion y conversion de audio](https://elysiatools.com/es/hubs/audio-convert): Compara conversion de formatos de audio, cambios de bitrate, conversion de frecuencia de muestreo, cambio de codec y exportacion en un solo hub. - [Herramientas de conversion de formatos de imagen y exportacion animada](https://elysiatools.com/es/hubs/image-convert): Compara convertidores de imagen para JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 y salidas pensadas para animacion en un solo hub. - [Herramientas de intercambio JSON y traduccion de formatos](https://elysiatools.com/es/hubs/json-convert): Compara herramientas de conversion JSON para CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN y otros formatos estructurados en un solo hub. - [Herramientas de conversion de espacios de color para web e impresion](https://elysiatools.com/es/hubs/design-convert): Herramientas reunidas para conversion de espacios de color entre web e impresion en un solo hub.