# Calculadora de Tm de oligonucleótidos (corrección por sal) Dos estimaciones clásicas de Tm: la regla de Wallace Tm = 2×(A+T) + 4×(G+C) (oligos cortos <14 nt, sin dependencia de sal) y la fórmula con corrección por sal Tm = 81.5 + 16.6×log₁₀[Na⁺] + 0.41×(%G+C) − 600/n (Sambrook 1989 p.11.46, la misma de Primer3; el término de longitud varía 500–675/n según la fuente). El modo automático elige por longitud. Devuelve %GC, composición y ambas estimaciones. Son aproximaciones — para precisión de diseño use termodinámica de vecinos más cercanos (herramienta pcr-primer-tm). Supuestos: ADN, sin desapareamientos, sin formamida/DMSO, [Na⁺] 0.01–1 M. Fuentes: Wallace 1979, von Ahsen 2001, Sambrook & Maniatis, OligoCalc. Solo para educación. > Página canónica: https://elysiatools.com/es/tools/oligo-melting-temperature - **Categoría:** Education - **Palabras clave:** calculadora tm oligo, temperatura fusión corrección sal, regla wallace tm, tm 81.5 16.6 log sodio, contenido gc oligonucleótido, estimación tm primer, temperatura hibridación, tm oligo corto, fórmula tm sambrook, biología molecular, calculadora laboratorio ## Descripción general Calcula una estimación de la temperatura de fusión (Tm) de un oligonucleótido de ADN a partir de su secuencia, longitud, contenido GC y concentración de sodio. Incluye la regla de Wallace, una fórmula con corrección por sal y un modo automático que selecciona el método según la longitud. ## Entradas - **Secuencia del oligonucleótido (5'→3')** (text): DNA sequence, A/C/G/T only (spaces stripped, case-insensitive), 4–200 nt. - **Método de Tm** (select): Auto uses Wallace below 14 nt and the salt-corrected formula from 14 nt up. - **Concentración de sodio (mM)** (number): Total \[Na⁺\] (or equivalent monovalent) of the buffer; used by the salt-corrected formula. - **Decimales** (number) ## Cuándo usarlo - Estimar rápidamente la Tm de un oligonucleótido de ADN de 4 a 200 nucleótidos. - Comparar la estimación de Wallace con la fórmula de Tm corregida por concentración de sodio. - Consultar el contenido GC, la composición de bases y la Tm calculada para una planificación experimental educativa. ## Cómo funciona - Introduce una secuencia de ADN formada por A, C, G y T; los espacios se eliminan y las minúsculas se aceptan. - Selecciona el método: automático, regla de Wallace o fórmula con corrección por sal. - Indica la concentración total de sodio del tampón en mM, especialmente cuando uses la fórmula corregida por sal. - La herramienta devuelve la longitud, el porcentaje GC, la composición, ambas estimaciones y el método utilizado, con los decimales elegidos. ## Casos de uso - Clases de biología molecular para relacionar longitud, composición GC y temperatura de fusión. - Planificación preliminar de sondas u oligonucleótidos de ADN antes de realizar cálculos más avanzados. - Comparación del efecto de distintas concentraciones de sodio sobre la Tm estimada. ## Preguntas frecuentes ### ¿Qué secuencias acepta la calculadora? Acepta secuencias de ADN de 4 a 200 nt compuestas únicamente por A, C, G y T. También admite espacios y minúsculas. ### ¿Qué método selecciona el modo automático? Usa la regla de Wallace para oligonucleótidos de menos de 14 nt y la fórmula con corrección por sal a partir de 14 nt. ### ¿Cómo influye la concentración de sodio? La concentración de sodio se usa en la fórmula corregida por sal. En este cálculo, una concentración menor suele producir una Tm estimada más baja. ### ¿Qué resultados muestra? Muestra la Tm seleccionada, el método utilizado, el porcentaje GC, la longitud, la composición de bases y las estimaciones de Wallace y corregida por sal. ### ¿Estas estimaciones sirven para diseñar cebadores con precisión? No. Son aproximaciones educativas; para diseño preciso se recomienda un cálculo termodinámico de vecinos más cercanos. ## Herramientas relacionadas - [Calculadora de temperatura de anillado PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/es/tools/annealing-temperature-calculator): Calcula la temperatura de anillado (Ta) de la PCR con dos reglas: la regla simple de banco Ta = Tm − 5°C (tomando el MENOR Tm del par de cebadores) y la fórmula empírica de Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(cebador) + 0.7×Tm(producto) − 14.9 (el Tm del producto suele ser 75–90°C y la fórmula cae 1–8°C por encima de la regla simple en pares típicos). Entrega la Ta recomendada, un rango de gradiente ±3°C y la dirección de ajuste: Ta baja produce bandas inespecíficas y dímeros, Ta alta sin producto; mantenga los dos Tm dentro de 2–3°C y anille con el menor. Fuentes: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Solo planificación experimental. - [Analizador de pedigrees de herencia autosómica dominante](https://elysiatools.com/es/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcula el riesgo en la descendencia para herencia autosómica dominante (AD) y evalúa el ajuste de los conteos observados a la proporción esperada. Genotipos parentales → proporción esperada: AA × cualquiera = todos afectados; Aa × Aa = 3:1 (75%); Aa × aa = 1:1 (50%); aa × aa = ninguno. Los conteos observados admiten una prueba chi-cuadrado (df = 1, crítico 3.841). Rasgos del pedigree AD: transmisión vertical, ambos sexos afectados por igual, existe transmisión hombre-a-hombre (excluye el dominante ligado al X), los no afectados no transmiten (salvo mutación de novo). Enfermedades ejemplo: Huntington, acondroplasia, Marfan. Fuentes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Solo uso educativo. - [Calculadora de riesgo de herencia autosómica recesiva](https://elysiatools.com/es/tools/autosomal-recessive-risk): Calcula la probabilidad de que un hijo (o al menos uno de n hijos) padezca una enfermedad autosómica recesiva. Un hijo afectado (aa) debe recibir un alelo recesivo de AMBOS progenitores: P(hijo afectado) = P(progenitor 1 transmite a) × P(progenitor 2 transmite a). Estados: portador (Aa), afectado (aa), no portador (AA), desconocido (P(Aa)=c, P(aa)=c² por frecuencia poblacional). Dos portadores → 25% por hijo, 50% portadores, P(portador | no afectado) = 2/3; al menos uno de n afectados = 1 − (1−r)^n. Portadores por defecto 0.04 (fibrosis quística 1/25). Fuentes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Solo uso educativo, no sustituye la consejería genética. - [Calculadora de recuento celular en cámara de Neubauer](https://elysiatools.com/es/tools/cell-counting-hemocytometer): Convierte recuentos brutos de la cámara de Neubauer mejorada en concentración: células/mL = (total contadas ÷ cuadrículos) × dilución × 10⁴ (cada cuadrículo de 1 mm² con profundidad de 0,1 mm contiene exactamente 0,1 µL). Introduzca el total contado, el número de cuadrículos (normalmente 4 esquinas o 5 con el central) y la dilución; opcionalmente el volumen para el total de células. Incluye consejos según la densidad ideal de 20–100 células por cuadrículo. Fuentes: manual de Freshney, geometría Neubauer mejorada. Solo para educación. - [Calculadora de tiempo de duplicación celular](https://elysiatools.com/es/tools/cell-doubling-time): Calcula la cinética de crecimiento exponencial a partir de dos recuentos: tiempo de duplicación t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀), junto con el número de duplicaciones n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 y la tasa específica μ = ln(Nₜ/N₀)/t (h⁻¹). N₀ y Nₜ pueden ser números de células o densidades en cualquier unidad consistente; el tiempo acepta horas/días/minutos. Supone fase logarítmica en ambos puntos (siembra subconfluente, cosecha antes de la inhibición por contacto), de lo contrario t_d saldrá alto; incluye referencias de HEK293/HeLa/CHO. Fuente: manual Freshney. Solo para educación. - [Calculadora de viabilidad celular con azul de tripán](https://elysiatools.com/es/tools/cell-viability-trypan-blue): Calcula la viabilidad a partir de los recuentos de células vivas/muertas en el ensayo de exclusión del azul de tripán: viabilidad % = vivas ÷ (vivas + muertas) × 100; concentración de vivas = recuento × dilución × 10⁴ ÷ cuadrículos. El colorante no atraviesa membranas intactas: las vivas quedan brillantes y las dañadas se tiñen azul intenso. Incluye interpretación del estado del cultivo (≥90% sano, 70–90% aceptable, <70% estresado) y consejos de protocolo (contar en 3–5 min; la exposición prolongada mata células viables). Fuentes: Freshney, ensayo de Strober. Solo para educación. - [Calculadora de UFC/mL (unidades formadoras de colonias)](https://elysiatools.com/es/tools/cfu-calculator): Convierte el recuento de colonias en la concentración original: UFC/mL = colonias × 10ⁿ ÷ volumen sembrado (mL), donde la placa se sembró desde el tubo 10⁻ⁿ. Incluye la regla del rango contable 30–300 colonias/placa: >300 señala TNTC (demasiadas numerosas, subir dilución), <30 señala TFTC (demasiadas pocas, bajar dilución) y 0 colonias da el límite de detección; opcionalmente convierte a UFC totales por volumen. Fuentes: Standard Methods, FDA BAM. Solo para educación. - [Calculadora de número de copias de ADN (concentración → copias)](https://elysiatools.com/es/tools/dna-copy-number-calculator): Convierte la concentración másica de ADN en copias moleculares por microlitro: copias/µL = c(g/µL) × N_A ÷ (longitud pb × 660 g/mol). Admite ng/µL (salida típica de NanoDrop, idéntico a µg/mL), pg/µL (rango Qubit) y µg/µL; incluye la conversión a pmol/µL y el total de copias en un volumen opcional. Referencia: un plásmido de 5.000 pb a 50 ng/µL → 9.12×10⁹ copias/µL (0.0152 pmol/µL). Recordatorios: 660 Da/pb es un promedio suficiente para plásmidos/genoma/amplicones (para oligos exactos sume masa por base); el A260 sobreestima muestras con ARN/nucleótidos libres — para exactitud use ensayo con fluoróforo. Fuentes: constante de Avogadro SI 2019, convención Thermo Fisher, Sambrook & Russell. Solo planificación. ## Ejemplos - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Web Python](https://elysiatools.com/es/samples/web-image-processing-python): Ejemplos de procesamiento de imágenes Web Python usando PIL/Pillow incluyendo lectura, guardado, redimensionamiento y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Java](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-java): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Java incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Kotlin](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-kotlin): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Kotlin incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Web Rust](https://elysiatools.com/es/samples/web-image-processing-rust): Ejemplos de procesamiento de imágenes Web Rust incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato ## Contenido relacionado - [Herramientas de codificacion y conversion de audio](https://elysiatools.com/es/hubs/audio-convert): Compara conversion de formatos de audio, cambios de bitrate, conversion de frecuencia de muestreo, cambio de codec y exportacion en un solo hub. - [Herramientas de conversion de formatos de imagen y exportacion animada](https://elysiatools.com/es/hubs/image-convert): Compara convertidores de imagen para JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 y salidas pensadas para animacion en un solo hub. - [Herramientas de intercambio JSON y traduccion de formatos](https://elysiatools.com/es/hubs/json-convert): Compara herramientas de conversion JSON para CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN y otros formatos estructurados en un solo hub. - [Herramientas de conversion de espacios de color para web e impresion](https://elysiatools.com/es/hubs/design-convert): Herramientas reunidas para conversion de espacios de color entre web e impresion en un solo hub.