# Calculadora de pureza OD260/230 (contaminación por sales/disolventes)

Evalúa la contaminación por sales y disolventes orgánicos mediante el ratio OD260/230 — el complemento que detecta lo que el 260/280 no ve: el ácido nucleico puro da 2.0–2.2, y un valor inferior a 2.0 señala arrastre de guanidinio (TRIzol/kits de columna), fenol, carbohidratos, EDTA, sales altas o β-mercaptoetanol; 2.2–2.3 suele ser un efecto aceptable del tampón; por encima de 2.3 apunta a un artefacto de agua/tampón y conviene remedir. Campo A280 opcional para el cruce OD260/280 (ADN ~1.8, ARN ~2.0): una sola serie de lecturas cubre ambas dimensiones de pureza. Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Thermo Fisher T042, Sambrook & Russell, Manchester 1995. Solo educación y planificación.

> Página canónica: https://elysiatools.com/es/tools/od260-230-ratio

- **Categoría:** Education

- **Palabras clave:** razón od260/230, a260/a230, pureza de ácidos nucleicos, contaminación salina adn, contaminación guanidinio, arrastre trizol, contaminación fenol, nanodrop 260/230, control secundario pureza, espectrofotómetro pureza, biología molecular, calculadora laboratorio

## Descripción general

La calculadora de pureza OD260/230 estima la contaminación por sales y disolventes orgánicos en muestras de ADN o ARN a partir de las absorbancias A260 y A230. También permite introducir A280 para calcular el ratio OD260/280 como comprobación adicional.

## Entradas

- **Tipo de ácido nucleico** (select): 260/230 expectations are identical for DNA and RNA; the type only tunes the optional A260/280 cross-check.
- **Absorbancia a 260 nm** (number): Absorbance at 260 nm (nucleic acid peak), same diluted sample as the A230 reading.
- **Absorbancia a 230 nm** (number): Absorbance at 230 nm (guanidine/phenol/salt peak) of the same diluted sample.
- **Absorbancia a 280 nm (opcional)** (number): Absorbance at 280 nm; enter 0 to skip the A260/280 cross-check.
- **Decimales** (number)

## Cuándo usarlo

- Para comprobar si una extracción de ADN o ARN presenta arrastre de guanidinio, fenol, sales, EDTA u otros compuestos absorbentes a 230 nm.
- Para complementar el ratio OD260/280 cuando necesitas evaluar dos dimensiones de pureza con la misma serie de lecturas.
- Para revisar muestras antes de planificar aplicaciones posteriores, teniendo en cuenta que las lecturas inferiores a aproximadamente 0.05 producen ratios poco fiables.

## Cómo funciona

- Selecciona el tipo de ácido nucleico: ADN o ARN.
- Introduce las absorbancias A260 y A230 de la misma muestra diluida.
- La herramienta calcula OD260/230 y lo compara con la referencia de 2.0–2.2 para ácido nucleico puro.
- Opcionalmente, añade A280 para obtener el cruce OD260/280; el resultado se redondea según el número de decimales indicado.

## Casos de uso

- Evaluar el arrastre de guanidinio o fenol en ADN y ARN extraídos con TRIzol o kits de columna.
- Comparar la pureza de una muestra mediante OD260/230 y OD260/280 antes de una aplicación de biología molecular.
- Documentar una revisión educativa o de planificación de muestras a partir de lecturas espectrofotométricas.

## Preguntas frecuentes

### ¿Qué significa un ratio OD260/230 inferior a 2.0?

Sugiere arrastre de guanidinio, fenol, sales, EDTA, carbohidratos o β-mercaptoetanol, entre otros contaminantes.

### ¿Cuál es el rango esperado para una muestra pura?

El ratio OD260/230 esperado para ácido nucleico puro es aproximadamente 2.0–2.2.

### ¿Puedo calcular también OD260/280?

Sí. Introduce A280 de forma opcional; si introduces 0, se omite esta comprobación.

### ¿Qué valores de OD260/280 se esperan?

Aproximadamente 1.8 para ADN y 2.0 para ARN.

### ¿Por qué las lecturas inferiores a 0.05 son problemáticas?

Con absorbancias tan bajas, el ratio puede estar dominado por el ruido de medición y no ser fiable.

## Herramientas relacionadas

- [Calculadora de concentración de ADN (absorbancia A260)](https://elysiatools.com/es/tools/dna-concentration-a260): Determina la concentración de ADN por absorbancia UV a 260 nm: concentración (µg/mL) = A260 × factor de dilución × constante ÷ camino óptico (cm). Constantes: ADN doble cadena 1 OD = 50 µg/mL, ADN monocadena 1 OD = 33 µg/mL (ARN 40, ver herramienta de ARN). 1 µg/mL = 1 ng/µL; introduzca el volumen de elución para obtener el rendimiento total en µg. Incluye la ventana lineal 0.1–1.5: por debajo de 0.1 domina el ruido, por encima de 1.5 el detector puede saturarse. La pureza se evalúa con OD260/280. Fuentes: Marmur & Doty 1961/1962, Sambrook & Russell, Thermo Fisher NanoDrop. Solo para educación y planificación experimental.
- [Calculadora de pureza de ácidos nucleicos (OD260/280)](https://elysiatools.com/es/tools/od260-280-ratio): Evalúa la pureza de ácidos nucleicos por el ratio OD260/280: las bases absorben máximo a 260 nm y los aminoácidos aromáticos (y el fenol) cerca de 280 nm, así que A260/A280 diagnostica arrastre de proteína/fenol. Valores esperados: ADN puro ≈ 1.8 (ventana 1.7–2.0), ARN puro ≈ 2.0 (ventana 1.8–2.2); ADN < 1.7 o ARN < 1.8 indica contaminación por proteína/fenol/guanidina, ADN > 2.0 sugiere contaminación con ARN, ARN > 2.2 apunta a artefacto de medición (baja fuerza iónica). Campo opcional A230 para el ratio secundario A260/A230 (puro 2.0–2.2; menor indica guanidina/fenol/carbohidratos/sales). Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Manchester 1995, Sambrook & Russell, Thermo Fisher T042. Solo educación y planificación.
- [Calculadora de concentración de ARN (A260, 1 OD = 40 µg/mL)](https://elysiatools.com/es/tools/rna-concentration-a260): Determina la concentración de ARN por absorbancia UV a 260 nm: concentración (µg/mL) = A260 × factor de dilución × 40 ÷ camino óptico (cm). La constante del ARN es 1 OD = 40 µg/mL, entre el ADN doble cadena (50) y el monocadena (33); un error frecuente es usar la constante 50 del ADNdc, lo que sobreestima el ARN un 25%. 1 µg/mL = 1 ng/µL; introduzca el volumen de elución para el rendimiento total. Incluye la ventana lineal 0.1–1.5; el ARN puro debe dar OD260/280 ≈ 2.0 (ADN ~1.8) — evalúe la pureza con la herramienta de ratio. Mantenga muestras libres de RNasas y en hielo. Fuentes: Marmur & Doty, Sambrook & Russell, Manchester 1995, Thermo Fisher. Solo educación y planificación.
- [Calculadora del ensayo BCA (curva estándar)](https://elysiatools.com/es/tools/bca-assay-calculator): Cuantifica proteína por el método BCA (ácido bicincronínico, 562 nm) con curva estándar: pegue las líneas «concentración(µg/mL), A562» y las absorbancias desconocidas; la herramienta ajusta por mínimos cuadrados (pendiente, ordenada, R²), invierte c = (A−b)/m y multiplica por la dilución, devolviendo µg/mL y mg/mL. Las lecturas fuera del rango se marcan como extrapolación; las inferiores al blanco se rechazan. Claves del BCA: tolera ~5% de detergente (mejor que Bradford para lisados); pero DTT/TCEP/β-mercaptoetanol (>1 mM) y EDTA alto reducen o quelan Cu²⁺ e inflan la lectura — elimínelos antes; rango útil ~20–2000 µg/mL (Micro BCA 0,5–20). Fuente: Smith 1985 Anal Biochem. Solo para educación.
- [Calculadora del ensayo de Bradford (curva estándar de BSA)](https://elysiatools.com/es/tools/bradford-assay-calculator): Cuantifica proteína por el método de Bradford (Coomassie G-250, 595 nm) con curva estándar de BSA: pegue las líneas «concentración(µg/mL), A595» de los estándares y las absorbancias desconocidas; la herramienta ajusta por mínimos cuadrados (pendiente, ordenada, R²), invierte c = (A−b)/m y multiplica por el factor de dilución, devolviendo µg/mL y mg/mL. Las lecturas fuera del rango del estándar se marcan como extrapolación; las inferiores al blanco se rechazan como no cuantificables. Clave: la respuesta del colorante varía mucho según la proteína (BSA ≈ el doble que IgG) y los detergentes altos interfieren; use el mismo tampón para estándares y muestras. Fuente: Bradford 1976 Anal Biochem. Solo para educación.
- [Extractor de Enlaces Markdown](https://elysiatools.com/es/tools/markdown-link-extractor): Extrae enlaces en línea, de referencia y URL simples de documentos Markdown con validación básica de sintaxis
- [Interpretación de Gasometría (AG / ΔAG)](https://elysiatools.com/es/tools/blood-gas-anion-gap): Interpretación sistemática de la gasometría arterial que combina el anion gap (AG) y delta-delta (ΔAG/ΔHCO₃⁻) para detectar trastornos mixtos. Pasos: ①pH (acidemia/normal/alcalemia); ②trastorno primario; ③compensación (Winter PaCO₂=1.5×HCO₃+8±2); ④AG=Na−Cl−HCO₃ (±corrección por albúmina); ⑤Delta ratio: <0.4 AG normal, 0.4–0.8 mixto, 1–2 HAGMA puro, >2 HAGMA+alcalosis. A diferencia de anion-gap-calculator (solo AG sérico), esta herramienta hace la interpretación completa. Fuentes: Emmett 2016, Kraut CJASN 2007, Rastegar 2007, LITFL, MDCalc, Adrogué NEJM 1998. No es consejo médico.
- [Comparación de gravedad de neumonía (CURB-65 / PSI / SMART-COP)](https://elysiatools.com/es/tools/curb-65-vs-pneumonia-severity): Calcula simultáneamente tres escalas de neumonía y las compara: CURB-65 (0-5, derivación), PSI/PORT (clase I-V, estratificación de mortalidad más precisa), SMART-COP (0-10, predice necesidad de soporte respiratorio/vasopresor en UCI). Cada una tiene un foco: CURB-65 rápido; PSI más preciso pero complejo; SMART-COP detecta quién necesita UCI. Muestra el total y categoría de cada escala, y analiza la concordancia (si todas apuntan a ambulatorio/ingreso/UCI). Ante discrepancia, se favorece la conducta más conservadora. Fuentes: Lim 2003, Fine 1997, Charles 2008. No es consejo médico.

## Ejemplos

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