# Calculadora de dilución de ácidos nucleicos (C1V1 = C2V2)

Prepara soluciones de trabajo de ADN/ARN en dos modos: por concentración objetivo según C1V1 = C2V2, con volumen de stock V1 = C2×V2/C1 y volumen de tampón; o por factor de dilución 1:X con concentración final C1/X y volumen V2/X. Basta que las unidades de stock y objetivo coincidan (ng/µL, µg/mL, nM) — el álgebra es independiente de la unidad. Incluye consejos de pipeteo: V1 < 0.5 µL sugiere dilución seriada en dos pasos, V1 < 2 µL punta de baja retención; se rechaza un objetivo mayor que el stock. Fuentes: Sambrook & Russell 3.ª ed., guía de pipeteo Thermo Fisher. Solo para educación y planificación.

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- **Categoría:** Education

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## Descripción general

La calculadora de dilución de ácidos nucleicos ayuda a preparar soluciones de trabajo de ADN o ARN mediante C1V1 = C2V2 o un factor de dilución 1:X. Indica el volumen de stock, el volumen de diluyente, la concentración final y el factor de dilución para el volumen total introducido.

## Entradas

- **Modo de cálculo** (select): Solve for the stock volume from a target concentration, or dilute by a fixed 1:X factor.
- **Concentración del stock (ng/µL)** (number): Quantified concentration of the stock (any unit — keep it identical to the target unit).
- **Concentración objetivo (ng/µL)** (number): Desired working concentration (C1V1 = C2V2 mode; must not exceed the stock).
- **Factor de dilución X** (number): Total-to-stock ratio of a 1:X dilution (dilution-factor mode; must be greater than 1).
- **Volumen final (µL)** (number): Total volume of the finished working solution.
- **Decimales** (number)

## Cuándo usarlo

- Cuando necesitas obtener una concentración objetivo de ADN o ARN a partir de un stock conocido.
- Cuando quieres preparar una dilución fija, como 1:10 o 1:100.
- Cuando necesitas comprobar si el volumen de stock es adecuado para pipetear y planificar una dilución seriada.

## Cómo funciona

- Selecciona el modo de cálculo: concentración objetivo mediante C1V1 = C2V2 o factor de dilución 1:X.
- Introduce la concentración del stock, la concentración objetivo o el factor X y el volumen final.
- Mantén la misma unidad para la concentración del stock y la concentración objetivo, por ejemplo ng/µL.
- La calculadora devuelve el volumen de stock, el volumen de diluyente, la concentración final y el factor de dilución; también señala objetivos superiores al stock y volúmenes muy pequeños.

## Casos de uso

- Preparar una solución de trabajo de ADN para una mezcla de qPCR.
- Diluir stocks concentrados de oligos, gBlocks u otras muestras de ácidos nucleicos.
- Planificar volúmenes de stock y tampón antes de una práctica de biología molecular.

## Preguntas frecuentes

### ¿Qué unidades puedo utilizar?

Puedes usar ng/µL, µg/mL, nM u otra unidad compatible, siempre que la concentración del stock y la objetivo estén expresadas en la misma unidad.

### ¿Qué fórmula utiliza el modo de concentración objetivo?

Utiliza C1V1 = C2V2 y calcula el volumen de stock como V1 = C2 × V2 ÷ C1.

### ¿Qué significa una dilución 1:X?

Significa una parte de stock en un volumen total X veces mayor. La concentración final es C1 ÷ X y el volumen de stock es V2 ÷ X.

### ¿Puedo introducir una concentración objetivo mayor que la del stock?

No. Una dilución no puede aumentar la concentración, por lo que ese objetivo se rechaza.

### ¿Qué hago si el volumen calculado es muy pequeño?

Si es menor de 2 µL, considera una punta de baja retención. Si es menor de 0,5 µL, se sugiere preparar una dilución seriada en dos pasos.

## Herramientas relacionadas

- [Calculadora del ensayo BCA (curva estándar)](https://elysiatools.com/es/tools/bca-assay-calculator): Cuantifica proteína por el método BCA (ácido bicincronínico, 562 nm) con curva estándar: pegue las líneas «concentración(µg/mL), A562» y las absorbancias desconocidas; la herramienta ajusta por mínimos cuadrados (pendiente, ordenada, R²), invierte c = (A−b)/m y multiplica por la dilución, devolviendo µg/mL y mg/mL. Las lecturas fuera del rango se marcan como extrapolación; las inferiores al blanco se rechazan. Claves del BCA: tolera ~5% de detergente (mejor que Bradford para lisados); pero DTT/TCEP/β-mercaptoetanol (>1 mM) y EDTA alto reducen o quelan Cu²⁺ e inflan la lectura — elimínelos antes; rango útil ~20–2000 µg/mL (Micro BCA 0,5–20). Fuente: Smith 1985 Anal Biochem. Solo para educación.
- [Calculadora del ensayo de Bradford (curva estándar de BSA)](https://elysiatools.com/es/tools/bradford-assay-calculator): Cuantifica proteína por el método de Bradford (Coomassie G-250, 595 nm) con curva estándar de BSA: pegue las líneas «concentración(µg/mL), A595» de los estándares y las absorbancias desconocidas; la herramienta ajusta por mínimos cuadrados (pendiente, ordenada, R²), invierte c = (A−b)/m y multiplica por el factor de dilución, devolviendo µg/mL y mg/mL. Las lecturas fuera del rango del estándar se marcan como extrapolación; las inferiores al blanco se rechazan como no cuantificables. Clave: la respuesta del colorante varía mucho según la proteína (BSA ≈ el doble que IgG) y los detergentes altos interfieren; use el mismo tampón para estándares y muestras. Fuente: Bradford 1976 Anal Biochem. Solo para educación.
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- [Calculadora de eficiencia catalítica (kcat/Km)](https://elysiatools.com/es/tools/enzyme-catalytic-efficiency): Calcula la eficiencia catalítica kcat/Km (M⁻¹s⁻¹) — la constante aparente de segundo orden a bajo sustrato y la forma justa de comparar la preferencia de una enzima por distintos sustratos. Dos entradas: kcat directo (s⁻¹ o min⁻¹) y Km (nM/µM/mM); o desde Vmax(µM/min) ÷ \[E\](µM) para obtener kcat y dividir por Km. Bandas (M⁻¹s⁻¹): <10³ ineficiente (sospeche sustrato equivocado o artefacto), 10³–10⁵ modesta, 10⁵–10⁷ eficiente (enzimas bien evolucionadas), 10⁷–10⁸ muy eficiente, ≥10⁸ cerca del límite de difusión (10⁸–10⁹), «catalíticamente perfecta» (triofosfato isomerasa, anhidrasa carbónica, acetilcolinesterasa). Válida solo en estado estacionario con Km ≫ \[E\]. Fuentes: Fersht, Knowles & Albery 1977, Radzicka & Wolfenden 1995. Solo para educación.
- [Calculadora de pureza OD260/230 (contaminación por sales/disolventes)](https://elysiatools.com/es/tools/od260-230-ratio): Evalúa la contaminación por sales y disolventes orgánicos mediante el ratio OD260/230 — el complemento que detecta lo que el 260/280 no ve: el ácido nucleico puro da 2.0–2.2, y un valor inferior a 2.0 señala arrastre de guanidinio (TRIzol/kits de columna), fenol, carbohidratos, EDTA, sales altas o β-mercaptoetanol; 2.2–2.3 suele ser un efecto aceptable del tampón; por encima de 2.3 apunta a un artefacto de agua/tampón y conviene remedir. Campo A280 opcional para el cruce OD260/280 (ADN ~1.8, ARN ~2.0): una sola serie de lecturas cubre ambas dimensiones de pureza. Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Thermo Fisher T042, Sambrook & Russell, Manchester 1995. Solo educación y planificación.
- [Calculadora de pureza de ácidos nucleicos (OD260/280)](https://elysiatools.com/es/tools/od260-280-ratio): Evalúa la pureza de ácidos nucleicos por el ratio OD260/280: las bases absorben máximo a 260 nm y los aminoácidos aromáticos (y el fenol) cerca de 280 nm, así que A260/A280 diagnostica arrastre de proteína/fenol. Valores esperados: ADN puro ≈ 1.8 (ventana 1.7–2.0), ARN puro ≈ 2.0 (ventana 1.8–2.2); ADN < 1.7 o ARN < 1.8 indica contaminación por proteína/fenol/guanidina, ADN > 2.0 sugiere contaminación con ARN, ARN > 2.2 apunta a artefacto de medición (baja fuerza iónica). Campo opcional A230 para el ratio secundario A260/A230 (puro 2.0–2.2; menor indica guanidina/fenol/carbohidratos/sales). Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Manchester 1995, Sambrook & Russell, Thermo Fisher T042. Solo educación y planificación.
- [Calculadora de concentración de ARN (A260, 1 OD = 40 µg/mL)](https://elysiatools.com/es/tools/rna-concentration-a260): Determina la concentración de ARN por absorbancia UV a 260 nm: concentración (µg/mL) = A260 × factor de dilución × 40 ÷ camino óptico (cm). La constante del ARN es 1 OD = 40 µg/mL, entre el ADN doble cadena (50) y el monocadena (33); un error frecuente es usar la constante 50 del ADNdc, lo que sobreestima el ARN un 25%. 1 µg/mL = 1 ng/µL; introduzca el volumen de elución para el rendimiento total. Incluye la ventana lineal 0.1–1.5; el ARN puro debe dar OD260/280 ≈ 2.0 (ADN ~1.8) — evalúe la pureza con la herramienta de ratio. Mantenga muestras libres de RNasas y en hielo. Fuentes: Marmur & Doty, Sambrook & Russell, Manchester 1995, Thermo Fisher. Solo educación y planificación.
- [Calculador de Exceso de Bases (EB, Componente Metabólico)](https://elysiatools.com/es/tools/base-excess-calculator): Calcula el exceso de bases (EB) para cuantificar el componente metabólico de los trastornos ácido-base. Fórmula de Siggaard-Andersen: EB = 0.9287×(HCO₃⁻ − 24.4 + 14.83×(pH − 7.4)). EB < −3 acidosis metabólica (déficit de bases), −3 a +3 normal, > +3 alcalosis metabólica. Gravedad: leve −3~−6 / +3~+6; moderada −6~−10 / +6~+10; grave < −10 / > +10. El EB aísla el componente metabólico; se usa en trauma (déficit ≤ −6 correlaciona con mortalidad), shock, paro cardíaco. HCO₃⁻ calculado por Henderson-Hasselbalch si no se proporciona. Fuentes: Siggaard-Andersen 1974, Cornell PICU, Medscape, Langer 2022. No es consejo médico.

## Ejemplos

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- [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Kotlin](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-kotlin): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Kotlin incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato
- [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Web Rust](https://elysiatools.com/es/samples/web-image-processing-rust): Ejemplos de procesamiento de imágenes Web Rust incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato

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