# Calculadora de multiplicidad de infección (MOI)

Calcula la multiplicidad de infección MOI = unidades infecciosas ÷ células (directo: título PFU/mL × volumen mL ÷ células), o a la inversa el volumen viral necesario V = MOI × células ÷ título. Incluye estadística Poisson: P(≥1) = 1 − e^(−MOI); MOI 1 → 63,2%, MOI 3 → 95,0%, MOI 10 → 99,995% de células infectadas. Con consejos de adsorción (30–60 min, cambiar medio). Fuentes: Molecular Cloning, Fields Virology. Solo para educación.

> Página canónica: https://elysiatools.com/es/tools/moi-calculator

- **Categoría:** Education

- **Palabras clave:** calculadora moi, multiplicidad de infección, título viral pfu por célula, volumen viral para moi, probabilidad infección poisson, porcentaje células infectadas moi, moi 1 infecta 63%, calculadora infección viral, cultivo celular infección, calculadora laboratorio

## Descripción general

La calculadora de multiplicidad de infección (MOI) estima la MOI a partir del título viral, el volumen y el número de células, o calcula el volumen de stock necesario para una MOI objetivo. También muestra la fracción estimada de células infectadas mediante la estadística de Poisson. Uso exclusivamente educativo.

## Entradas

- **Modo de cálculo** (select): Compute MOI from your infection setup, or the virus volume for a target MOI.
- **Título viral (PFU/mL)** (number): Infectious titer of the viral stock.
- **Volumen de infección (mL)** (number): Volume of inoculum added to the cells (MOI mode).
- **Número de células** (number): Total cells in the well/flask at infection.
- **MOI objetivo** (number): Desired MOI (volume mode); 3 gives ~95% infected cells.
- **Decimales** (number)

## Cuándo usarlo

- Para calcular la MOI de una infección a partir de un título en PFU/mL, un volumen de inóculo y un número de células.
- Para determinar qué volumen de stock viral se necesita para alcanzar una MOI objetivo.
- Para estimar el porcentaje de células con al menos una infección según la distribución de Poisson.

## Cómo funciona

- Selecciona «Desde título, volumen y células» o «Desde MOI objetivo y células».
- Introduce el título viral en PFU/mL, el volumen de infección, el número de células y, si corresponde, la MOI objetivo.
- La herramienta aplica MOI = título × volumen ÷ células o volumen = MOI × células ÷ título.
- El resultado incluye la MOI, el volumen calculado cuando corresponde y el porcentaje estimado de células infectadas: P(≥1) = 1 − e^(−MOI).

## Casos de uso

- Planificar cálculos de infección en cultivos celulares usando un título viral conocido.
- Convertir una MOI objetivo en un volumen de stock viral para un número concreto de células.
- Comparar la cobertura teórica de infección entre distintas MOI mediante el porcentaje estimado por Poisson.

## Preguntas frecuentes

### ¿Qué significa MOI?

La MOI es la proporción media de unidades infecciosas respecto al número de células.

### ¿Qué datos necesito para calcular la MOI?

Necesitas el título viral en PFU/mL, el volumen de infección en mL y el número de células.

### ¿Cómo calculo el volumen para una MOI objetivo?

Selecciona el modo correspondiente e introduce la MOI objetivo, el número de células y el título viral.

### ¿Una MOI de 1 infecta al 100% de las células?

No. Según Poisson, una MOI de 1 corresponde aproximadamente a un 63,21% de células con al menos una infección.

### ¿Para qué sirve la estadística de Poisson?

Estima la fracción de células que recibirían al menos una unidad infecciosa a partir de la MOI.

## Herramientas relacionadas

- [Calculadora de masa de péptidos (monoisotópica/media)](https://elysiatools.com/es/tools/peptide-mass-calculator): Calcula la masa de un péptido sumando residuos: M = Σ masas de residuo + H₂O (tabla ExPASy ProtParam). Dos modos: monoisotópica (H₂O = 18,01056, ideal para péptidos cortos en MS de alta resolución) o promedio (H₂O = 18,01524, para cadenas más largas), con los iones \[M+H\]⁺, \[M+Na\]⁺ y \[M+2H\]²⁺. La secuencia no distingue mayúsculas y se ignoran espacios y separadores; los códigos ambiguos B/J/O/U/X/Z se rechazan. Fuente: ExPASy ProtParam (Gasteiger 2005). Solo para educación.
- [Tutor visual de fracciones, decimales y porcentajes](https://elysiatools.com/es/tools/fraction-decimal-percent-visualizer): El mismo valor en tres notaciones a la vez: 1/2 ⇄ 0.5 ⇄ 50%. Gráfico circular, barra de fracción, cuadrícula 10×10 y recta 0–1 enlazados; un control deslizante interactivo sincroniza todo en vivo y detecta el periodo decimal exacto (1/3 = 0.3̅, 1/7 = 0.142857̅). Incluye ejercicios de simplificación, identificación de periodo y comparación porcentaje vs decimal con respuestas explicadas.
- [Tutor de deriva poblacional Wright–Fisher y frecuencia alélica](https://elysiatools.com/es/tools/wright-fisher-population-drift-and-allele-frequency-tutor): Simula la deriva genética Wright–Fisher con muchas poblaciones réplica, mutación y selección. Visualiza trayectorias, distribución final, caída de heterocigosidad y prueba chi-cuadrado de Hardy–Weinberg.
- [Calculadora de temperatura de anillado PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/es/tools/annealing-temperature-calculator): Calcula la temperatura de anillado (Ta) de la PCR con dos reglas: la regla simple de banco Ta = Tm − 5°C (tomando el MENOR Tm del par de cebadores) y la fórmula empírica de Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(cebador) + 0.7×Tm(producto) − 14.9 (el Tm del producto suele ser 75–90°C y la fórmula cae 1–8°C por encima de la regla simple en pares típicos). Entrega la Ta recomendada, un rango de gradiente ±3°C y la dirección de ajuste: Ta baja produce bandas inespecíficas y dímeros, Ta alta sin producto; mantenga los dos Tm dentro de 2–3°C y anille con el menor. Fuentes: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Solo planificación experimental.
- [Analizador de pedigrees de herencia autosómica dominante](https://elysiatools.com/es/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcula el riesgo en la descendencia para herencia autosómica dominante (AD) y evalúa el ajuste de los conteos observados a la proporción esperada. Genotipos parentales → proporción esperada: AA × cualquiera = todos afectados; Aa × Aa = 3:1 (75%); Aa × aa = 1:1 (50%); aa × aa = ninguno. Los conteos observados admiten una prueba chi-cuadrado (df = 1, crítico 3.841). Rasgos del pedigree AD: transmisión vertical, ambos sexos afectados por igual, existe transmisión hombre-a-hombre (excluye el dominante ligado al X), los no afectados no transmiten (salvo mutación de novo). Enfermedades ejemplo: Huntington, acondroplasia, Marfan. Fuentes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Solo uso educativo.
- [Calculadora de riesgo de herencia autosómica recesiva](https://elysiatools.com/es/tools/autosomal-recessive-risk): Calcula la probabilidad de que un hijo (o al menos uno de n hijos) padezca una enfermedad autosómica recesiva. Un hijo afectado (aa) debe recibir un alelo recesivo de AMBOS progenitores: P(hijo afectado) = P(progenitor 1 transmite a) × P(progenitor 2 transmite a). Estados: portador (Aa), afectado (aa), no portador (AA), desconocido (P(Aa)=c, P(aa)=c² por frecuencia poblacional). Dos portadores → 25% por hijo, 50% portadores, P(portador | no afectado) = 2/3; al menos uno de n afectados = 1 − (1−r)^n. Portadores por defecto 0.04 (fibrosis quística 1/25). Fuentes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Solo uso educativo, no sustituye la consejería genética.
- [Calculadora de recuento celular en cámara de Neubauer](https://elysiatools.com/es/tools/cell-counting-hemocytometer): Convierte recuentos brutos de la cámara de Neubauer mejorada en concentración: células/mL = (total contadas ÷ cuadrículos) × dilución × 10⁴ (cada cuadrículo de 1 mm² con profundidad de 0,1 mm contiene exactamente 0,1 µL). Introduzca el total contado, el número de cuadrículos (normalmente 4 esquinas o 5 con el central) y la dilución; opcionalmente el volumen para el total de células. Incluye consejos según la densidad ideal de 20–100 células por cuadrículo. Fuentes: manual de Freshney, geometría Neubauer mejorada. Solo para educación.
- [Calculadora de tiempo de duplicación celular](https://elysiatools.com/es/tools/cell-doubling-time): Calcula la cinética de crecimiento exponencial a partir de dos recuentos: tiempo de duplicación t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀), junto con el número de duplicaciones n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 y la tasa específica μ = ln(Nₜ/N₀)/t (h⁻¹). N₀ y Nₜ pueden ser números de células o densidades en cualquier unidad consistente; el tiempo acepta horas/días/minutos. Supone fase logarítmica en ambos puntos (siembra subconfluente, cosecha antes de la inhibición por contacto), de lo contrario t_d saldrá alto; incluye referencias de HEK293/HeLa/CHO. Fuente: manual Freshney. Solo para educación.

## Ejemplos

- [Muestras FLAC Sin Derechos de Autor](https://elysiatools.com/es/samples/flac-samples): Colección de audio FLAC sin pérdidas para pruebas y desarrollo, incluyendo sonidos de la naturaleza y música de meditación
- [Muestras MP3 Sin Derechos de Autor](https://elysiatools.com/es/samples/mp3-samples): Colección de muestras de audio sin derechos de autor para pruebas y desarrollo, incluyendo sonidos de la naturaleza, música de meditación y audio ambiental
- [Muestras WAV Sin Derechos de Autor](https://elysiatools.com/es/samples/wav-samples): Colección de audio WAV sin compresión para pruebas y desarrollo, incluyendo sonidos de la naturaleza y música de meditación
- [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Java](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-java): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Java incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato
