# Calculadora de proporción molar de ligadura (inserto:vector) Configura ligaduras según NEB: pmol = ng × 10³ ÷ (650 × bp). El modo de cálculo de masa usa la fórmula clásica inserto_ng = proporción × vector_ng × (bp_inserto ÷ bp_vector) (el factor 650 se cancela); el modo de verificación entra ambas masas y devuelve la proporción molar real. Intervalos recomendados según el tamaño del inserto: <200 bp 5–10:1, 200–999 bp 3–5:1, ≥1000 bp 1–5:1, avisando de que proporciones >10:1 favorecen concámeros del inserto. Con el volumen de reacción se obtienen las concentraciones nM (la ligasa es sensible a la concentración de extremos, >1 nM es más eficiente). Fuentes: NEB NEBioCalculator y guía de ligadura, Promega BioMath, Sambrook & Russell. Solo para educación. > Página canónica: https://elysiatools.com/es/tools/ligation-molar-ratio - **Categoría:** Education - **Palabras clave:** proporción molar ligadura, calculadora inserto vector, calculadora ligadura neb, montaje ligadura adn, masa inserto ng ligadura, molaridad vector inserto, pmol adn ligadura, proporción ligasa t4, calculadora inserto clonaje, vector desfosforilado ligadura, biología molecular, calculadora laboratorio ## Descripción general La calculadora de proporción molar de ligadura inserto:vector estima la masa de inserto necesaria para una proporción deseada o verifica la proporción real a partir de ambas masas. También calcula pmol y, si introduces el volumen de reacción, las concentraciones en nM. ## Entradas - **Modo de cálculo** (select): Solve for the insert mass a desired ratio needs, or check the actual ratio of two masses. - **Tamaño del vector (bp)** (number): Double-digested vector backbone length in base pairs. - **Masa del vector (ng)** (number): Mass of the linearized vector in the reaction. - **Tamaño del inserto (bp)** (number): Insert fragment length in base pairs. - **Masa del inserto (ng)** (number): Insert mass (check mode); ignored in solve mode, which computes the required value. - **Proporción inserto:vector deseada** (number): Molar insert:vector ratio (solve mode), e.g. 3 for a 3:1 setup. - **Volumen de reacción (µL, opcional)** (number): Total ligation volume in µL; enter 0 to skip nM concentrations. - **Decimales** (number) ## Cuándo usarlo - Para calcular cuántos ng de inserto necesitas con una proporción molar inserto:vector concreta. - Para comprobar si las masas de ADN preparadas alcanzan la proporción recomendada según el tamaño del inserto. - Para estimar los pmol y las concentraciones nM de vector e inserto en un volumen de reacción. ## Cómo funciona - Selecciona «Calcular masa del inserto» o «Verificar proporción real». - Introduce el tamaño del vector y del inserto en pares de bases, además de las masas requeridas. - En el modo de cálculo, indica la proporción inserto:vector deseada; en el modo de verificación, introduce también la masa real del inserto. - Añade opcionalmente el volumen de reacción para obtener las concentraciones nM y consulta la banda recomendada. ## Casos de uso - Planificar una ligadura de clonación ajustando la masa del inserto al tamaño y la masa del vector. - Revisar una mezcla preparada antes de la reacción y detectar una proporción molar inferior a la recomendada. - Comparar la cantidad de ADN y la concentración de extremos aproximada en distintos volúmenes de reacción. ## Preguntas frecuentes ### ¿Qué fórmula usa la calculadora para la masa del inserto? Usa inserto_ng = proporción × vector_ng × (bp del inserto ÷ bp del vector). ### ¿Qué proporción molar se recomienda? Para insertos menores de 200 bp, 5–10:1; de 200 a 999 bp, 3–5:1; y de 1000 bp o más, 1–5:1. ### ¿Qué ocurre si introduzco un volumen de reacción igual a 0? La calculadora omite las concentraciones nM y muestra los demás resultados. ### ¿Qué resultados devuelve la calculadora? Devuelve la masa calculada o la proporción real, los pmol de vector e inserto y, si se indica el volumen, sus concentraciones nM. ### ¿Una proporción superior a 10:1 es siempre mejor? No. El exceso de inserto puede favorecer la formación de concatémeros del inserto. ## Herramientas relacionadas - [Conversor Absorbancia↔Transmitancia (A = −log₁₀T)](https://elysiatools.com/es/tools/absorbance-transmittance-converter): Convierte en ambos sentidos entre absorbancia y transmitancia: A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T y A = 2 − log₁₀(%T). Acepta absorbancia A, transmitancia porcentual %T o transmitancia decimal T y devuelve las tres representaciones a la vez. Valores guía: A=0 → %T=100; A=1 → %T=10; A=0,301 → %T=50. Una absorbancia negativa implicaría %T > 100 %, imposible en espectrofotometría estándar, y se rechaza. - [Calculadora de viabilidad celular con azul de tripán](https://elysiatools.com/es/tools/cell-viability-trypan-blue): Calcula la viabilidad a partir de los recuentos de células vivas/muertas en el ensayo de exclusión del azul de tripán: viabilidad % = vivas ÷ (vivas + muertas) × 100; concentración de vivas = recuento × dilución × 10⁴ ÷ cuadrículos. El colorante no atraviesa membranas intactas: las vivas quedan brillantes y las dañadas se tiñen azul intenso. Incluye interpretación del estado del cultivo (≥90% sano, 70–90% aceptable, <70% estresado) y consejos de protocolo (contar en 3–5 min; la exposición prolongada mata células viables). Fuentes: Freshney, ensayo de Strober. Solo para educación. - [Calculadora de número de copias de ADN (concentración → copias)](https://elysiatools.com/es/tools/dna-copy-number-calculator): Convierte la concentración másica de ADN en copias moleculares por microlitro: copias/µL = c(g/µL) × N_A ÷ (longitud pb × 660 g/mol). Admite ng/µL (salida típica de NanoDrop, idéntico a µg/mL), pg/µL (rango Qubit) y µg/µL; incluye la conversión a pmol/µL y el total de copias en un volumen opcional. Referencia: un plásmido de 5.000 pb a 50 ng/µL → 9.12×10⁹ copias/µL (0.0152 pmol/µL). Recordatorios: 660 Da/pb es un promedio suficiente para plásmidos/genoma/amplicones (para oligos exactos sume masa por base); el A260 sobreestima muestras con ARN/nucleótidos libres — para exactitud use ensayo con fluoróforo. Fuentes: constante de Avogadro SI 2019, convención Thermo Fisher, Sambrook & Russell. Solo planificación. - [Planificador de diluciones seriadas (serie 10×)](https://elysiatools.com/es/tools/serial-dilution-planner): Diseña la clásica serie de diluciones 10×: obtén el número de pasos n = ceil(log₁₀(stock ÷ objetivo)) a partir de la concentración inicial y la objetivo, o fija los pasos directamente; incluye la tabla de concentraciones por tubo (C_k = stock ÷ 10^k) y la receta por tubo (mezcla 1:9, p. ej. 100 µL del tubo anterior + 900 µL de diluyente por tubo de 1 mL). Consejos: cambiar punta en cada paso, vortear 5–10 s, trabajar de más a menos concentrado. Combínalo con la calculadora de UFC/mL. Fuentes: Standard Methods, apéndice FDA BAM. Solo para educación. - [Calculadora de temperatura de anillado PCR (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/es/tools/annealing-temperature-calculator): Calcula la temperatura de anillado (Ta) de la PCR con dos reglas: la regla simple de banco Ta = Tm − 5°C (tomando el MENOR Tm del par de cebadores) y la fórmula empírica de Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(cebador) + 0.7×Tm(producto) − 14.9 (el Tm del producto suele ser 75–90°C y la fórmula cae 1–8°C por encima de la regla simple en pares típicos). Entrega la Ta recomendada, un rango de gradiente ±3°C y la dirección de ajuste: Ta baja produce bandas inespecíficas y dímeros, Ta alta sin producto; mantenga los dos Tm dentro de 2–3°C y anille con el menor. Fuentes: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Solo planificación experimental. - [Analizador de pedigrees de herencia autosómica dominante](https://elysiatools.com/es/tools/autosomal-dominant-pedigree): Calcula el riesgo en la descendencia para herencia autosómica dominante (AD) y evalúa el ajuste de los conteos observados a la proporción esperada. Genotipos parentales → proporción esperada: AA × cualquiera = todos afectados; Aa × Aa = 3:1 (75%); Aa × aa = 1:1 (50%); aa × aa = ninguno. Los conteos observados admiten una prueba chi-cuadrado (df = 1, crítico 3.841). Rasgos del pedigree AD: transmisión vertical, ambos sexos afectados por igual, existe transmisión hombre-a-hombre (excluye el dominante ligado al X), los no afectados no transmiten (salvo mutación de novo). Enfermedades ejemplo: Huntington, acondroplasia, Marfan. Fuentes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Solo uso educativo. - [Calculadora de riesgo de herencia autosómica recesiva](https://elysiatools.com/es/tools/autosomal-recessive-risk): Calcula la probabilidad de que un hijo (o al menos uno de n hijos) padezca una enfermedad autosómica recesiva. Un hijo afectado (aa) debe recibir un alelo recesivo de AMBOS progenitores: P(hijo afectado) = P(progenitor 1 transmite a) × P(progenitor 2 transmite a). Estados: portador (Aa), afectado (aa), no portador (AA), desconocido (P(Aa)=c, P(aa)=c² por frecuencia poblacional). Dos portadores → 25% por hijo, 50% portadores, P(portador | no afectado) = 2/3; al menos uno de n afectados = 1 − (1−r)^n. Portadores por defecto 0.04 (fibrosis quística 1/25). Fuentes: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Solo uso educativo, no sustituye la consejería genética. - [Calculadora de recuento celular en cámara de Neubauer](https://elysiatools.com/es/tools/cell-counting-hemocytometer): Convierte recuentos brutos de la cámara de Neubauer mejorada en concentración: células/mL = (total contadas ÷ cuadrículos) × dilución × 10⁴ (cada cuadrículo de 1 mm² con profundidad de 0,1 mm contiene exactamente 0,1 µL). Introduzca el total contado, el número de cuadrículos (normalmente 4 esquinas o 5 con el central) y la dilución; opcionalmente el volumen para el total de células. Incluye consejos según la densidad ideal de 20–100 células por cuadrículo. Fuentes: manual de Freshney, geometría Neubauer mejorada. Solo para educación. ## Ejemplos - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Web Python](https://elysiatools.com/es/samples/web-image-processing-python): Ejemplos de procesamiento de imágenes Web Python usando PIL/Pillow incluyendo lectura, guardado, redimensionamiento y conversión de formato - [Ejemplos de Base de Datos Vectorial](https://elysiatools.com/es/samples/vector-database): Ejemplos completos de bases de datos vectoriales incluyendo Chroma, Pinecone, Weaviate, FAISS y soluciones vectoriales personalizadas - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Java](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-java): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Java incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Kotlin](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-kotlin): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Kotlin incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato ## Contenido relacionado - [Herramientas de codificacion y conversion de audio](https://elysiatools.com/es/hubs/audio-convert): Compara conversion de formatos de audio, cambios de bitrate, conversion de frecuencia de muestreo, cambio de codec y exportacion en un solo hub. - [Herramientas de conversion de formatos de imagen y exportacion animada](https://elysiatools.com/es/hubs/image-convert): Compara convertidores de imagen para JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 y salidas pensadas para animacion en un solo hub. - [Herramientas de intercambio JSON y traduccion de formatos](https://elysiatools.com/es/hubs/json-convert): Compara herramientas de conversion JSON para CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN y otros formatos estructurados en un solo hub. - [Herramientas de conversion de espacios de color para web e impresion](https://elysiatools.com/es/hubs/design-convert): Herramientas reunidas para conversion de espacios de color entre web e impresion en un solo hub.