# Calculadora de eficiencia catalítica (kcat/Km) Calcula la eficiencia catalítica kcat/Km (M⁻¹s⁻¹) — la constante aparente de segundo orden a bajo sustrato y la forma justa de comparar la preferencia de una enzima por distintos sustratos. Dos entradas: kcat directo (s⁻¹ o min⁻¹) y Km (nM/µM/mM); o desde Vmax(µM/min) ÷ [E](µM) para obtener kcat y dividir por Km. Bandas (M⁻¹s⁻¹): <10³ ineficiente (sospeche sustrato equivocado o artefacto), 10³–10⁵ modesta, 10⁵–10⁷ eficiente (enzimas bien evolucionadas), 10⁷–10⁸ muy eficiente, ≥10⁸ cerca del límite de difusión (10⁸–10⁹), «catalíticamente perfecta» (triofosfato isomerasa, anhidrasa carbónica, acetilcolinesterasa). Válida solo en estado estacionario con Km ≫ [E]. Fuentes: Fersht, Knowles & Albery 1977, Radzicka & Wolfenden 1995. Solo para educación. > Página canónica: https://elysiatools.com/es/tools/enzyme-catalytic-efficiency - **Categoría:** Education - **Palabras clave:** calculadora eficiencia catalítica, kcat sobre km, razón kcat km, constante segundo orden enzima, límite difusión enzima, enzima catalíticamente perfecta, comparación preferencia sustrato, calculadora cinética enzimática, parámetros michaelis menten, calculadora bioquímica, calculadora laboratorio ## Descripción general La calculadora de eficiencia catalítica obtiene kcat/Km en M⁻¹s⁻¹ para comparar la preferencia de una enzima por distintos sustratos. Puedes introducir kcat y Km directamente, o calcular kcat a partir de Vmax y la concentración de enzima; el resultado incluye notación científica y una categoría de eficiencia. ## Entradas - **Modo de cálculo** (select): Enter kcat directly, or derive it from Vmax and enzyme concentration. - **kcat** (number): Turnover number in the unit selected below (direct mode). - **Unidad de kcat** (select): Whether kcat is per second or per minute. - **Km** (number): Michaelis constant in the unit selected below. - **Unidad de Km** (select): Concentration unit of Km. - **Vmax (µM/min)** (number): Maximal velocity as a concentration rate (from-Vmax mode). - **Concentración de enzima \[E\] (µM)** (number): Active-site concentration (from-Vmax mode). - **Decimales** (number) ## Cuándo usarlo - Comparar la eficiencia de una enzima con distintos sustratos mediante una métrica común. - Calcular kcat/Km cuando solo dispones de Vmax y de la concentración de enzima activa. - Interpretar si una eficiencia catalítica es modesta, eficiente, muy eficiente o cercana al límite de difusión. ## Cómo funciona - Selecciona el modo directo para introducir kcat y Km, o el modo desde Vmax para obtener primero kcat. - En el modo desde Vmax, la calculadora divide Vmax en µM/min por \[E\] en µM y convierte el resultado de min⁻¹ a s⁻¹. - Convierte Km desde nM, µM o mM a molar y calcula kcat/Km en M⁻¹s⁻¹. - Muestra el valor con la cantidad de decimales elegida, notación científica y una banda interpretativa de eficiencia. ## Casos de uso - Comparación de la preferencia de una enzima por diferentes sustratos. - Análisis educativo de parámetros de Michaelis-Menten y eficiencia catalítica. - Conversión de datos de Vmax y concentración enzimática en kcat/Km. ## Preguntas frecuentes ### ¿Qué calcula exactamente la herramienta? Calcula la razón kcat/Km, una constante aparente de segundo orden expresada en M⁻¹s⁻¹. ### ¿Qué unidades acepta para kcat? Acepta kcat en s⁻¹ o min⁻¹. Los valores en min⁻¹ se convierten a s⁻¹. ### ¿Qué unidades acepta para Km? Acepta Km en nanomolar, micromolar o milimolar y la convierte a molar. ### ¿Cómo se calcula kcat desde Vmax? Se divide Vmax en µM/min por la concentración de enzima activa [E] en µM y después se convierte a s⁻¹. ### ¿Cuándo es válida la comparación kcat/Km? Debe interpretarse bajo condiciones de estado estacionario y con Km mucho mayor que la concentración de enzima [E]. Es una herramienta educativa. ## Herramientas relacionadas - [Calculadora del ensayo BCA (curva estándar)](https://elysiatools.com/es/tools/bca-assay-calculator): Cuantifica proteína por el método BCA (ácido bicincronínico, 562 nm) con curva estándar: pegue las líneas «concentración(µg/mL), A562» y las absorbancias desconocidas; la herramienta ajusta por mínimos cuadrados (pendiente, ordenada, R²), invierte c = (A−b)/m y multiplica por la dilución, devolviendo µg/mL y mg/mL. Las lecturas fuera del rango se marcan como extrapolación; las inferiores al blanco se rechazan. Claves del BCA: tolera ~5% de detergente (mejor que Bradford para lisados); pero DTT/TCEP/β-mercaptoetanol (>1 mM) y EDTA alto reducen o quelan Cu²⁺ e inflan la lectura — elimínelos antes; rango útil ~20–2000 µg/mL (Micro BCA 0,5–20). Fuente: Smith 1985 Anal Biochem. Solo para educación. - [Calculadora del ensayo de Bradford (curva estándar de BSA)](https://elysiatools.com/es/tools/bradford-assay-calculator): Cuantifica proteína por el método de Bradford (Coomassie G-250, 595 nm) con curva estándar de BSA: pegue las líneas «concentración(µg/mL), A595» de los estándares y las absorbancias desconocidas; la herramienta ajusta por mínimos cuadrados (pendiente, ordenada, R²), invierte c = (A−b)/m y multiplica por el factor de dilución, devolviendo µg/mL y mg/mL. Las lecturas fuera del rango del estándar se marcan como extrapolación; las inferiores al blanco se rechazan como no cuantificables. Clave: la respuesta del colorante varía mucho según la proteína (BSA ≈ el doble que IgG) y los detergentes altos interfieren; use el mismo tampón para estándares y muestras. Fuente: Bradford 1976 Anal Biochem. Solo para educación. - [Calculadora de concentración de ADN (absorbancia A260)](https://elysiatools.com/es/tools/dna-concentration-a260): Determina la concentración de ADN por absorbancia UV a 260 nm: concentración (µg/mL) = A260 × factor de dilución × constante ÷ camino óptico (cm). Constantes: ADN doble cadena 1 OD = 50 µg/mL, ADN monocadena 1 OD = 33 µg/mL (ARN 40, ver herramienta de ARN). 1 µg/mL = 1 ng/µL; introduzca el volumen de elución para obtener el rendimiento total en µg. Incluye la ventana lineal 0.1–1.5: por debajo de 0.1 domina el ruido, por encima de 1.5 el detector puede saturarse. La pureza se evalúa con OD260/280. Fuentes: Marmur & Doty 1961/1962, Sambrook & Russell, Thermo Fisher NanoDrop. Solo para educación y planificación experimental. - [Calculadora de dilución de ácidos nucleicos (C1V1 = C2V2)](https://elysiatools.com/es/tools/nucleic-acid-dilution): Prepara soluciones de trabajo de ADN/ARN en dos modos: por concentración objetivo según C1V1 = C2V2, con volumen de stock V1 = C2×V2/C1 y volumen de tampón; o por factor de dilución 1:X con concentración final C1/X y volumen V2/X. Basta que las unidades de stock y objetivo coincidan (ng/µL, µg/mL, nM) — el álgebra es independiente de la unidad. Incluye consejos de pipeteo: V1 < 0.5 µL sugiere dilución seriada en dos pasos, V1 < 2 µL punta de baja retención; se rechaza un objetivo mayor que el stock. Fuentes: Sambrook & Russell 3.ª ed., guía de pipeteo Thermo Fisher. Solo para educación y planificación. - [Calculadora de pureza OD260/230 (contaminación por sales/disolventes)](https://elysiatools.com/es/tools/od260-230-ratio): Evalúa la contaminación por sales y disolventes orgánicos mediante el ratio OD260/230 — el complemento que detecta lo que el 260/280 no ve: el ácido nucleico puro da 2.0–2.2, y un valor inferior a 2.0 señala arrastre de guanidinio (TRIzol/kits de columna), fenol, carbohidratos, EDTA, sales altas o β-mercaptoetanol; 2.2–2.3 suele ser un efecto aceptable del tampón; por encima de 2.3 apunta a un artefacto de agua/tampón y conviene remedir. Campo A280 opcional para el cruce OD260/280 (ADN ~1.8, ARN ~2.0): una sola serie de lecturas cubre ambas dimensiones de pureza. Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Thermo Fisher T042, Sambrook & Russell, Manchester 1995. Solo educación y planificación. - [Calculadora de pureza de ácidos nucleicos (OD260/280)](https://elysiatools.com/es/tools/od260-280-ratio): Evalúa la pureza de ácidos nucleicos por el ratio OD260/280: las bases absorben máximo a 260 nm y los aminoácidos aromáticos (y el fenol) cerca de 280 nm, así que A260/A280 diagnostica arrastre de proteína/fenol. Valores esperados: ADN puro ≈ 1.8 (ventana 1.7–2.0), ARN puro ≈ 2.0 (ventana 1.8–2.2); ADN < 1.7 o ARN < 1.8 indica contaminación por proteína/fenol/guanidina, ADN > 2.0 sugiere contaminación con ARN, ARN > 2.2 apunta a artefacto de medición (baja fuerza iónica). Campo opcional A230 para el ratio secundario A260/A230 (puro 2.0–2.2; menor indica guanidina/fenol/carbohidratos/sales). Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Manchester 1995, Sambrook & Russell, Thermo Fisher T042. Solo educación y planificación. - [Calculadora de concentración de ARN (A260, 1 OD = 40 µg/mL)](https://elysiatools.com/es/tools/rna-concentration-a260): Determina la concentración de ARN por absorbancia UV a 260 nm: concentración (µg/mL) = A260 × factor de dilución × 40 ÷ camino óptico (cm). La constante del ARN es 1 OD = 40 µg/mL, entre el ADN doble cadena (50) y el monocadena (33); un error frecuente es usar la constante 50 del ADNdc, lo que sobreestima el ARN un 25%. 1 µg/mL = 1 ng/µL; introduzca el volumen de elución para el rendimiento total. Incluye la ventana lineal 0.1–1.5; el ARN puro debe dar OD260/280 ≈ 2.0 (ADN ~1.8) — evalúe la pureza con la herramienta de ratio. Mantenga muestras libres de RNasas y en hielo. Fuentes: Marmur & Doty, Sambrook & Russell, Manchester 1995, Thermo Fisher. Solo educación y planificación. - [Calculador de Exceso de Bases (EB, Componente Metabólico)](https://elysiatools.com/es/tools/base-excess-calculator): Calcula el exceso de bases (EB) para cuantificar el componente metabólico de los trastornos ácido-base. Fórmula de Siggaard-Andersen: EB = 0.9287×(HCO₃⁻ − 24.4 + 14.83×(pH − 7.4)). EB < −3 acidosis metabólica (déficit de bases), −3 a +3 normal, > +3 alcalosis metabólica. Gravedad: leve −3~−6 / +3~+6; moderada −6~−10 / +6~+10; grave < −10 / > +10. El EB aísla el componente metabólico; se usa en trauma (déficit ≤ −6 correlaciona con mortalidad), shock, paro cardíaco. HCO₃⁻ calculado por Henderson-Hasselbalch si no se proporciona. Fuentes: Siggaard-Andersen 1974, Cornell PICU, Medscape, Langer 2022. No es consejo médico. ## Ejemplos - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Web Python](https://elysiatools.com/es/samples/web-image-processing-python): Ejemplos de procesamiento de imágenes Web Python usando PIL/Pillow incluyendo lectura, guardado, redimensionamiento y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Java](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-java): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Java incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Kotlin](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-kotlin): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Kotlin incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Web Rust](https://elysiatools.com/es/samples/web-image-processing-rust): Ejemplos de procesamiento de imágenes Web Rust incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato ## Contenido relacionado - [Herramientas de cuantificación de proteínas, cinética enzimática y análisis de secuencias](https://elysiatools.com/es/hubs/protein-quantification-enzyme-kinetics-sequence-tools): Planifica ensayos de proteínas, convierte concentraciones y analiza secuencias, actividad, cinética, inhibición y unión en un solo flujo de laboratorio. - [Herramientas de codificacion y conversion de audio](https://elysiatools.com/es/hubs/audio-convert): Compara conversion de formatos de audio, cambios de bitrate, conversion de frecuencia de muestreo, cambio de codec y exportacion en un solo hub. - [Herramientas de conversion de formatos de imagen y exportacion animada](https://elysiatools.com/es/hubs/image-convert): Compara convertidores de imagen para JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 y salidas pensadas para animacion en un solo hub. - [Herramientas de intercambio JSON y traduccion de formatos](https://elysiatools.com/es/hubs/json-convert): Compara herramientas de conversion JSON para CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN y otros formatos estructurados en un solo hub.