# Calculadora del ensayo de Bradford (curva estándar de BSA)

Cuantifica proteína por el método de Bradford (Coomassie G-250, 595 nm) con curva estándar de BSA: pegue las líneas «concentración(µg/mL), A595» de los estándares y las absorbancias desconocidas; la herramienta ajusta por mínimos cuadrados (pendiente, ordenada, R²), invierte c = (A−b)/m y multiplica por el factor de dilución, devolviendo µg/mL y mg/mL. Las lecturas fuera del rango del estándar se marcan como extrapolación; las inferiores al blanco se rechazan como no cuantificables. Clave: la respuesta del colorante varía mucho según la proteína (BSA ≈ el doble que IgG) y los detergentes altos interfieren; use el mismo tampón para estándares y muestras. Fuente: Bradford 1976 Anal Biochem. Solo para educación.

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- **Categoría:** Education

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## Descripción general

La calculadora del ensayo de Bradford estima la concentración de proteína a partir de una curva estándar de BSA y lecturas A595. Ajusta una regresión lineal por mínimos cuadrados, calcula pendiente, ordenada y R², corrige por el factor de dilución y devuelve resultados en µg/mL y mg/mL.

## Entradas

- **Estándares de proteína (µg/mL, A595)** (textarea): One standard per line: concentration in µg/mL, then A595 (comma, semicolon, tab, or space separated).
- **Absorbancias desconocidas (A595)** (textarea): One sample A595 reading per line (blank-subtracted readings are fine as long as the curve includes the blank).
- **Factor de dilución de la muestra** (number): Dilution applied to the sample before the assay (1 = undiluted).
- **Decimales** (number)

## Cuándo usarlo

- Cuando necesites convertir absorbancias A595 de muestras desconocidas en concentración de proteína.
- Cuando quieras ajustar una curva estándar de BSA y revisar su pendiente, intercepto y R².
- Cuando las muestras se hayan diluido y necesites calcular la concentración original aplicando un factor de dilución.

## Cómo funciona

- Pega un estándar por línea con la concentración en µg/mL y su A595, separados por coma, punto y coma, tabulación o espacio.
- Introduce una lectura A595 por línea para cada muestra desconocida y especifica el factor de dilución.
- La herramienta ajusta la relación lineal A = mc + b mediante mínimos cuadrados y calcula R².
- Invierte la ecuación c = (A − b) / m, aplica la dilución y muestra la concentración en µg/mL y mg/mL; las lecturas fuera del rango se marcan como extrapolación.

## Casos de uso

- Cuantificación educativa de proteínas en muestras mediante un ensayo Bradford a 595 nm.
- Revisión rápida de curvas estándar de BSA obtenidas en ensayos de microplaca.
- Cálculo de concentraciones originales en lisados o muestras que fueron diluidos antes de la medición.

## Preguntas frecuentes

### ¿Qué datos debo introducir para los estándares?

Una línea por estándar con concentración en µg/mL y A595, por ejemplo: 10, 0.200.

### ¿Qué significa el factor de dilución?

Es la dilución aplicada antes del ensayo; usa 1 para una muestra sin diluir y 10 para una dilución de diez veces.

### ¿Qué resultados calcula la herramienta?

Calcula pendiente, intercepto, R² y la concentración de cada muestra en µg/mL y mg/mL.

### ¿Qué ocurre si una lectura está fuera del rango de estándares?

La lectura se calcula, pero se marca como extrapolación porque queda fuera del rango estándar.

### ¿Por qué una lectura inferior al blanco no es cuantificable?

Porque la absorbancia queda por debajo del nivel representado por el blanco y la herramienta la rechaza como no cuantificable.

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- [Calculadora de concentración de ADN (absorbancia A260)](https://elysiatools.com/es/tools/dna-concentration-a260): Determina la concentración de ADN por absorbancia UV a 260 nm: concentración (µg/mL) = A260 × factor de dilución × constante ÷ camino óptico (cm). Constantes: ADN doble cadena 1 OD = 50 µg/mL, ADN monocadena 1 OD = 33 µg/mL (ARN 40, ver herramienta de ARN). 1 µg/mL = 1 ng/µL; introduzca el volumen de elución para obtener el rendimiento total en µg. Incluye la ventana lineal 0.1–1.5: por debajo de 0.1 domina el ruido, por encima de 1.5 el detector puede saturarse. La pureza se evalúa con OD260/280. Fuentes: Marmur & Doty 1961/1962, Sambrook & Russell, Thermo Fisher NanoDrop. Solo para educación y planificación experimental.
- [Calculadora de pureza OD260/230 (contaminación por sales/disolventes)](https://elysiatools.com/es/tools/od260-230-ratio): Evalúa la contaminación por sales y disolventes orgánicos mediante el ratio OD260/230 — el complemento que detecta lo que el 260/280 no ve: el ácido nucleico puro da 2.0–2.2, y un valor inferior a 2.0 señala arrastre de guanidinio (TRIzol/kits de columna), fenol, carbohidratos, EDTA, sales altas o β-mercaptoetanol; 2.2–2.3 suele ser un efecto aceptable del tampón; por encima de 2.3 apunta a un artefacto de agua/tampón y conviene remedir. Campo A280 opcional para el cruce OD260/280 (ADN ~1.8, ARN ~2.0): una sola serie de lecturas cubre ambas dimensiones de pureza. Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Thermo Fisher T042, Sambrook & Russell, Manchester 1995. Solo educación y planificación.
- [Calculadora de pureza de ácidos nucleicos (OD260/280)](https://elysiatools.com/es/tools/od260-280-ratio): Evalúa la pureza de ácidos nucleicos por el ratio OD260/280: las bases absorben máximo a 260 nm y los aminoácidos aromáticos (y el fenol) cerca de 280 nm, así que A260/A280 diagnostica arrastre de proteína/fenol. Valores esperados: ADN puro ≈ 1.8 (ventana 1.7–2.0), ARN puro ≈ 2.0 (ventana 1.8–2.2); ADN < 1.7 o ARN < 1.8 indica contaminación por proteína/fenol/guanidina, ADN > 2.0 sugiere contaminación con ARN, ARN > 2.2 apunta a artefacto de medición (baja fuerza iónica). Campo opcional A230 para el ratio secundario A260/A230 (puro 2.0–2.2; menor indica guanidina/fenol/carbohidratos/sales). Con lecturas < ~0.05 el ratio no es fiable. Fuentes: Manchester 1995, Sambrook & Russell, Thermo Fisher T042. Solo educación y planificación.
- [Calculadora de concentración de ARN (A260, 1 OD = 40 µg/mL)](https://elysiatools.com/es/tools/rna-concentration-a260): Determina la concentración de ARN por absorbancia UV a 260 nm: concentración (µg/mL) = A260 × factor de dilución × 40 ÷ camino óptico (cm). La constante del ARN es 1 OD = 40 µg/mL, entre el ADN doble cadena (50) y el monocadena (33); un error frecuente es usar la constante 50 del ADNdc, lo que sobreestima el ARN un 25%. 1 µg/mL = 1 ng/µL; introduzca el volumen de elución para el rendimiento total. Incluye la ventana lineal 0.1–1.5; el ARN puro debe dar OD260/280 ≈ 2.0 (ADN ~1.8) — evalúe la pureza con la herramienta de ratio. Mantenga muestras libres de RNasas y en hielo. Fuentes: Marmur & Doty, Sambrook & Russell, Manchester 1995, Thermo Fisher. Solo educación y planificación.
- [Comparación de gravedad de neumonía (CURB-65 / PSI / SMART-COP)](https://elysiatools.com/es/tools/curb-65-vs-pneumonia-severity): Calcula simultáneamente tres escalas de neumonía y las compara: CURB-65 (0-5, derivación), PSI/PORT (clase I-V, estratificación de mortalidad más precisa), SMART-COP (0-10, predice necesidad de soporte respiratorio/vasopresor en UCI). Cada una tiene un foco: CURB-65 rápido; PSI más preciso pero complejo; SMART-COP detecta quién necesita UCI. Muestra el total y categoría de cada escala, y analiza la concordancia (si todas apuntan a ambulatorio/ingreso/UCI). Ante discrepancia, se favorece la conducta más conservadora. Fuentes: Lim 2003, Fine 1997, Charles 2008. No es consejo médico.
- [Selector de Color de Imagen](https://elysiatools.com/es/tools/image-color-picker): Selecciona colores de imágenes especificando coordenadas. Obtiene valores de color en formatos HEX, RGB, HSL, HSV y CMYK.
- [Traductor de codones a aminoácidos](https://elysiatools.com/es/tools/codon-amino-acid-translator): Traduce una secuencia de ADN o mRNA a proteína usando el código genético estándar. Escanea los 6 marcos de lectura (directo y complementario inverso), marca codones de inicio (AUG) y de paro, identifica los ORF más largos y muestra la composición de aminoácidos con colores por clase química. Admite normalización T→U y traducción de la complementaria inversa.

## Ejemplos

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- [Muestras FLAC Sin Derechos de Autor](https://elysiatools.com/es/samples/flac-samples): Colección de audio FLAC sin pérdidas para pruebas y desarrollo, incluyendo sonidos de la naturaleza y música de meditación
- [Muestras WAV Sin Derechos de Autor](https://elysiatools.com/es/samples/wav-samples): Colección de audio WAV sin compresión para pruebas y desarrollo, incluyendo sonidos de la naturaleza y música de meditación
- [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Android Java](https://elysiatools.com/es/samples/android-image-processing-java): Ejemplos de procesamiento de imágenes Android Java incluyendo lectura/escritura, escalado y conversión de formato

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- [Herramientas de codificacion y conversion de audio](https://elysiatools.com/es/hubs/audio-convert): Compara conversion de formatos de audio, cambios de bitrate, conversion de frecuencia de muestreo, cambio de codec y exportacion en un solo hub.
- [Herramientas de conversion de formatos de imagen y exportacion animada](https://elysiatools.com/es/hubs/image-convert): Compara convertidores de imagen para JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 y salidas pensadas para animacion en un solo hub.
- [Herramientas de intercambio JSON y traduccion de formatos](https://elysiatools.com/es/hubs/json-convert): Compara herramientas de conversion JSON para CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN y otros formatos estructurados en un solo hub.
