# Conversor Absorbancia↔Transmitancia (A = −log₁₀T) Convierte en ambos sentidos entre absorbancia y transmitancia: A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T y A = 2 − log₁₀(%T). Acepta absorbancia A, transmitancia porcentual %T o transmitancia decimal T y devuelve las tres representaciones a la vez. Valores guía: A=0 → %T=100; A=1 → %T=10; A=0,301 → %T=50. Una absorbancia negativa implicaría %T > 100 %, imposible en espectrofotometría estándar, y se rechaza. > Página canónica: https://elysiatools.com/es/tools/absorbance-transmittance-converter - **Categoría:** Education - **Palabras clave:** absorbancia, transmitancia, densidad óptica, espectrofotometría, ley de beer-lambert, calculadora absorbancia, transmitancia porcentual, od600, uv-vis, conversor espectroscopía ## Descripción general El conversor de absorbancia y transmitancia permite transformar valores espectrofotométricos de forma bidireccional mediante las relaciones estándar A = −log₁₀(T) y %T = 100·T. A partir de un dato de absorbancia (A), transmitancia porcentual (%T) o transmitancia decimal (T), la herramienta calcula en simultáneo las tres representaciones con la precisión decimal configurada. ## Entradas - **Valor** (number): Value of the selected input quantity. - **Magnitud de entrada** (select): Whether the entered value is absorbance (A), percent transmittance (%T), or the 0–1 transmittance fraction (T). - **Decimales** (number) ## Cuándo usarlo - Al convertir lecturas directas de transmitancia porcentual (%T) emitidas por un espectrofotómetro a absorbancia (A) para aplicar la ley de Beer-Lambert. - Al verificar la atenuación de la luz o calibrar filtros de densidad neutra a partir del porcentaje de luz transmitida. - Al evaluar cultivos celulares o suspensiones microbiológicas medidas por densidad óptica (OD600) para conocer la fracción real de luz que llega al detector. ## Cómo funciona - Introduce el valor numérico en el campo de entrada y selecciona la magnitud correspondiente: Absorbancia (A), Transmitancia (%T) o Transmitancia fraccionaria (T, 0–1). - Define opcionalmente el número de cifras decimales requeridas para el resultado (entre 0 y 8 decimales). - La herramienta aplica las fórmulas matemáticas correspondientes (A = 2 − log₁₀(%T) o T = 10⁻ᴬ) y genera al instante los valores equivalentes de A, %T y T. ## Casos de uso - Análisis cuantitativo de concentración mediante espectrofotometría UV-Vis en química analítica. - Determinación del crecimiento celular y turbidez por densidad óptica (OD600) en microbiología. - Calibración y verificación de linealidad en detectores ópticos y fotómetros de laboratorio. ## Preguntas frecuentes ### ¿Cuál es la fórmula para calcular la absorbancia a partir de la transmitancia porcentual? Se calcula mediante la expresión A = 2 − log₁₀(%T), derivada de la relación fundamental A = −log₁₀(T). ### ¿Por qué se rechazan los valores de absorbancia negativos? Una absorbancia menor que cero implicaría una transmitancia superior al 100 %, condición que no es físicamente válida en espectrofotometría estándar. ### ¿Qué transmitancia equivale a una absorbancia de 1,0? Una absorbancia A = 1,0 equivale exactamente a un 10 % de transmitancia (%T = 10) y una fracción T = 0,1. ### ¿Cuál es la diferencia entre transmitancia porcentual (%T) y transmitancia fraccionaria (T)? La transmitancia fraccionaria expresa la fracción de luz transmitida en una escala de 0 a 1, mientras que la porcentual multiplica dicha fracción por 100. ### ¿Se pueden ajustar los decimales mostrados en el resultado? Sí, el selector de decimales permite configurar la precisión del cálculo desde 0 hasta 8 decimales según la necesidad analítica. ## Herramientas relacionadas - [Calculadora de viabilidad celular con azul de tripán](https://elysiatools.com/es/tools/cell-viability-trypan-blue): Calcula la viabilidad a partir de los recuentos de células vivas/muertas en el ensayo de exclusión del azul de tripán: viabilidad % = vivas ÷ (vivas + muertas) × 100; concentración de vivas = recuento × dilución × 10⁴ ÷ cuadrículos. El colorante no atraviesa membranas intactas: las vivas quedan brillantes y las dañadas se tiñen azul intenso. Incluye interpretación del estado del cultivo (≥90% sano, 70–90% aceptable, <70% estresado) y consejos de protocolo (contar en 3–5 min; la exposición prolongada mata células viables). Fuentes: Freshney, ensayo de Strober. Solo para educación. - [Calculadora de número de copias de ADN (concentración → copias)](https://elysiatools.com/es/tools/dna-copy-number-calculator): Convierte la concentración másica de ADN en copias moleculares por microlitro: copias/µL = c(g/µL) × N_A ÷ (longitud pb × 660 g/mol). Admite ng/µL (salida típica de NanoDrop, idéntico a µg/mL), pg/µL (rango Qubit) y µg/µL; incluye la conversión a pmol/µL y el total de copias en un volumen opcional. Referencia: un plásmido de 5.000 pb a 50 ng/µL → 9.12×10⁹ copias/µL (0.0152 pmol/µL). Recordatorios: 660 Da/pb es un promedio suficiente para plásmidos/genoma/amplicones (para oligos exactos sume masa por base); el A260 sobreestima muestras con ARN/nucleótidos libres — para exactitud use ensayo con fluoróforo. Fuentes: constante de Avogadro SI 2019, convención Thermo Fisher, Sambrook & Russell. Solo planificación. - [Conversor de unidades de actividad enzimática (U ↔ katal)](https://elysiatools.com/es/tools/enzyme-unit-converter): Convierte con exactitud entre unidades de actividad enzimática: 1 U = 1 µmol/min (IUB 1978), 1 kat = 1 mol/s (BIPM 1999), luego 1 U = 16,667 nkat, 1 µkat = 60 U y 1 kat = 6×10⁷ U. Introduzca un valor en U/mU/µU o kat/mkat/µkat/nkat/pkat y obtenga la misma actividad en todas las demás unidades a la vez. Conversión pura de escala, sin supuestos de ensayo, útil para manuscritos y fichas técnicas. Fuentes: comité de nomenclatura IUB, BIPM 21.ª CGPM, libro verde IUPAC. Solo para educación. - [Calculadora de proporción molar de ligadura (inserto:vector)](https://elysiatools.com/es/tools/ligation-molar-ratio): Configura ligaduras según NEB: pmol = ng × 10³ ÷ (650 × bp). El modo de cálculo de masa usa la fórmula clásica inserto_ng = proporción × vector_ng × (bp_inserto ÷ bp_vector) (el factor 650 se cancela); el modo de verificación entra ambas masas y devuelve la proporción molar real. Intervalos recomendados según el tamaño del inserto: <200 bp 5–10:1, 200–999 bp 3–5:1, ≥1000 bp 1–5:1, avisando de que proporciones >10:1 favorecen concámeros del inserto. Con el volumen de reacción se obtienen las concentraciones nM (la ligasa es sensible a la concentración de extremos, >1 nM es más eficiente). Fuentes: NEB NEBioCalculator y guía de ligadura, Promega BioMath, Sambrook & Russell. Solo para educación. - [Coeficiente de Extinción Molar y Ley de Beer-Lambert (A = ε·c·l)](https://elysiatools.com/es/tools/molar-extinction-coefficient): Resuelve cualquiera de las cuatro magnitudes de la ley de Beer-Lambert A = ε·c·l a partir de las otras tres: absorbancia A, coeficiente de extinción molar ε (M⁻¹cm⁻¹), concentración (M/mM/µM/nM) o camino óptico (cm/mm). Incluye el ancla clásico NADH ε340 = 6220 M⁻¹cm⁻¹ (100 µM en cubeta de 1 cm → A = 0,622), base de los ensayos de actividad enzimática. - [Calculadora de densidad celular OD600 (E. coli)](https://elysiatools.com/es/tools/od600-cell-density): Convierte lecturas de turbidez OD600 en concentración celular y peso seco (CDW): OD normalizada = lectura × factor de dilución ÷ camino óptico; células/mL = OD × células por OD (1×10⁹ por defecto, valor habitual de E. coli); CDW g/L = OD × g/L por OD (0.36 por defecto, BioNumbers 109837; rango 0.3–0.5). Ambos factores son editables — cepa, medio e instrumento los modifican; los valores por defecto son autoconsistentes: 0.36 g/L ÷ 10⁹ células/mL = 0.36 pg/célula. Marca lecturas OD > 1 fuera del rango lineal (Sigma-Aldrich). Fuentes: BioNumbers 109835/109837, Agilent/VectorBuilder. Calibre con su propia curva OD-CFU. Solo para educación. - [Calculadora de afinidad proteína-ADN (estimación de Kd)](https://elysiatools.com/es/tools/protein-dna-binding-affinity): Estima el Kd a partir de un punto según el equilibrio 1:1: con proteína en exceso, f = \[P\]÷(\[P\]+Kd), luego Kd = \[P\]×(1−f)÷f; con f = 0.5 el Kd iguala la concentración de proteína. Dos entradas: fracción unida directa (0–1) o anisotropía de fluorescencia f = (r−rlibre)÷(rligado−rlibre). Añade ΔG° = RT·ln(Kd) (25 °C por defecto). Bandas: <1 nM muy fuerte, 1–100 nM fuerte (dianas típicas de factores transcripcionales), 100 nM–1 µM moderado, >1 µM débil (revisar sal y competidor poly(dI-dC)). Supuestos: equilibrio, 1:1, proteína en gran exceso; para curvas completas ajuste la titulación entera. Fuentes: Cantor & Schimmel, Heyduk & Lee 1990, Lakowicz. Solo para educación. - [Calculadora del punto isoeléctrico de proteínas (pI)](https://elysiatools.com/es/tools/protein-isoelectric-point): Calcula el punto isoeléctrico teórico a partir de la composición de aminoácidos: carga neta por Henderson–Hasselbalch en cada grupo ionizable (conjunto pKa simplificado de ExPASy/Bjellqvist: N-term 7.5, K 10.0, R 12.0, H 5.98; C-term 3.55, D 4.05, E 4.45, C 9.0, Y 10.0) y bisección hasta la carga cero. También devuelve la carga neta a pH fisiológico 7.4, el peso molecular medio (tabla de masas de ProtParam + agua) y la lectura ácida/básica. Limitaciones: pKa de cadena desplegada, sin modificaciones postraduccionales; el conjunto de pKa y el algoritmo de bisección son idénticos a Biopython IsoelectricPoint (resultados numéricamente iguales), mientras que el conjunto completo de Bjellqvist de ExPASy distingue residuos terminales y puede diferir ligeramente. Fuentes: Bjellqvist 1993, Gasteiger 2003 (ExPASy), Biopython IsoelectricPoint. Solo para educación. ## Ejemplos - [Muestras de Análisis de Logs ELK Stack](https://elysiatools.com/es/samples/elk-stack-samples): Muestras completas de ELK Stack para agregación, procesamiento y visualización de logs en sistemas distribuidos - [Ejemplos de Análisis de Registros Nginx](https://elysiatools.com/es/samples/nginx-log-samples): Muestras completas de registros Nginx para probar la herramienta log-parser, incluyendo varios formatos y escenarios de registros de acceso y error - [Ejemplos de Procesamiento de Imágenes Web Python](https://elysiatools.com/es/samples/web-image-processing-python): Ejemplos de procesamiento de imágenes Web Python usando PIL/Pillow incluyendo lectura, guardado, redimensionamiento y conversión de formato - [Archivos de Registro con Datos Sensibles](https://elysiatools.com/es/samples/log-with-sensitive-data): Archivos de registro de muestra que contienen varios tipos de PII (Información de Identificación Personal) para probar herramientas de detección de PII y redacción de registros ## Contenido relacionado - [Herramientas de codificacion y conversion de audio](https://elysiatools.com/es/hubs/audio-convert): Compara conversion de formatos de audio, cambios de bitrate, conversion de frecuencia de muestreo, cambio de codec y exportacion en un solo hub. - [Herramientas de conversion de formatos de imagen y exportacion animada](https://elysiatools.com/es/hubs/image-convert): Compara convertidores de imagen para JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 y salidas pensadas para animacion en un solo hub. - [Herramientas de intercambio JSON y traduccion de formatos](https://elysiatools.com/es/hubs/json-convert): Compara herramientas de conversion JSON para CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN y otros formatos estructurados en un solo hub. - [Herramientas de conversion de espacios de color para web e impresion](https://elysiatools.com/es/hubs/design-convert): Herramientas reunidas para conversion de espacios de color entre web e impresion en un solo hub.