# Isoelektrischer-Punkt-Rechner für Proteine (pI)

Berechnet den theoretischen isoelektrischen Punkt aus der Aminosäurezusammensetzung: Nettoladung per Henderson–Hasselbalch über jede ionisierbare Gruppe (vereinfachter ExPASy/Bjellqvist-pKa-Satz: N-Terminus 7,5, K 10.0, R 12.0, H 5.98; C-Terminus 3.55, D 4.05, E 4.45, C 9.0, Y 10.0) und Bisektion bis zur Ladung null. Liefert zudem die Nettoladung bei physiologischem pH 7.4, die durchschnittliche Molekülmasse (ProtParam-Tabelle + Wasser) sowie die saure/basische Einordnung. Grenzen: pKa der entfalteten Kette, ohne posttranslationale Modifikationen; der pKa-Satz und der Bisektionsalgorithmus sind identisch mit Biopython IsoelectricPoint (numerisch gleiche Ergebnisse), während der vollständige Bjellqvist-Satz von ExPASy terminale Reste unterscheidet und leicht abweichen kann. Quellen: Bjellqvist 1993, Gasteiger 2003 (ExPASy), Biopython IsoelectricPoint. Nur für Ausbildung.

> Kanonische Seite: https://elysiatools.com/de/tools/protein-isoelectric-point

- **Kategorie:** Education

- **Schlagwörter:** isoelektrischer-punkt-rechner, pi-rechner protein, theoretisches pi expasy, bjellqvist-pka-werte, nettoladung bei ph, molekülmasse protein sequenz, saurer basischer protein klassifikation, ionenaustausch-chromatographie ph, isoelektrische fokussierung, molekularbiologie, labor-rechner

## Überblick

Der Isoelektrischer-Punkt-Rechner für Proteine bestimmt den theoretischen pI aus einer Aminosäuresequenz. Zusätzlich berechnet er die Nettoladung bei pH 7,4, die durchschnittliche Molekülmasse sowie die Einordnung als saures oder basisches Protein. Die Berechnung dient ausschließlich Ausbildungszwecken.

## Eingaben

- **Proteinsequenz (Einbuchstaben-Codes)** (textarea): One-letter amino-acid codes, 20 standard residues only (FASTA headers, whitespace, and '*' are stripped).
- **Dezimalstellen** (number)

## Wann verwenden

- Wenn du den theoretischen isoelektrischen Punkt einer Protein- oder Peptidsequenz abschätzen möchtest.
- Wenn du die Nettoladung einer Sequenz bei physiologischem pH 7,4 vergleichen willst.
- Wenn du für Unterricht, Molekularbiologie oder eine Versuchsplanung pI, Ladung und Molekülmasse benötigst.

## Funktionsweise

- Gib eine Proteinsequenz mit Einbuchstaben-Codes der 20 Standardaminosäuren ein.
- FASTA-Kopfzeilen, Leerzeichen und das Zeichen „*“ werden aus der Eingabe entfernt.
- Für jede ionisierbare Gruppe wird die Nettoladung nach Henderson–Hasselbalch mit dem vereinfachten ExPASy/Bjellqvist-pKa-Satz berechnet.
- Eine Bisektion sucht den pH-Wert, bei dem die Nettoladung null ist; ausgegeben werden pI, Ladung bei pH 7,4, Molekülmasse und die saure oder basische Einordnung.

## Anwendungsfälle

- Vergleich saurer und basischer Protein- oder Peptidsequenzen anhand ihres theoretischen pI.
- Abschätzung der Nettoladung bei pH 7,4 für molekularbiologische Ausbildungsaufgaben.
- Erste Planung von Anwendungen wie Ionenaustauschchromatographie oder isoelektrischer Fokussierung.

## Häufig gestellte Fragen

### Welche Eingabe akzeptiert der Rechner?

Akzeptiert werden Einbuchstaben-Codes der 20 Standardaminosäuren. FASTA-Kopfzeilen, Leerzeichen und „*“ werden entfernt.

### Welche Ergebnisse liefert der Rechner?

Er liefert den theoretischen pI, die Nettoladung bei pH 7,4, die durchschnittliche Molekülmasse in Dalton sowie eine saure oder basische Einordnung.

### Wie wird der pI berechnet?

Die ionisierbaren Gruppen werden nach Henderson–Hasselbalch bewertet. Anschließend wird per Bisektion der pH-Wert mit Nettoladung null gesucht.

### Kann das Ergebnis vom vollständigen ExPASy-Wert abweichen?

Ja. Der Rechner verwendet einen vereinfachten pKa-Satz; der vollständige Bjellqvist-Satz von ExPASy unterscheidet terminale Reste und kann leicht abweichen.

### Berücksichtigt die Berechnung posttranslationale Modifikationen?

Nein. Sie basiert auf einer entfalteten Kette und berücksichtigt keine posttranslationalen Modifikationen.

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