# PCR-Primer-Tm-Rechner (Wallace / Nearest-Neighbor)

Berechnet die Schmelztemperatur (Tm) eines PCR-Primers mit zwei Methoden, beide werden ausgegeben: die Wallace-Regel Tm = 2°C×(A+T) + 4°C×(G+C) (Schnellschätzung für kurze Oligos <14 nt, ohne Kontext, Konzentration und Salz) und die vereinheitlichte Nearest-Neighbor-Thermodynamik nach SantaLucia 1998: Tm = 1000ΔH/(ΔS + R·ln(Ct/4) + 0.368(N−1)·ln[Na+]) − 273.15 — mit 16 Stacking-Parametern, terminalen Initiierungstermen und Symmetriekorrektur für selbstkomplementäre Sequenzen; Primer- und Natriumkonzentration einstellbar (Methodenfamilie von Primer3). Zusätzlich GC-Gehalt, Basenzusammensetzung und empfohlene Ta = Tm − 5°C. Quellen: Wallace 1979, SantaLucia 1998, Breslauer 1986, Primer3 2012. Nur für Erstscreening.

> Kanonische Seite: https://elysiatools.com/de/tools/pcr-primer-tm

- **Kategorie:** Education

- **Schlagwörter:** primer-tm-rechner, schmelztemperatur, wallace-regel, nearest-neighbor-tm, santalucia-thermodynamik, primer-design, gc-gehalt, annealing-temperatur, pcr-primer, oligonukleotid-tm, primer3, pcr

## Überblick

Der PCR-Primer-Tm-Rechner bestimmt die Schmelztemperatur einer DNA-Primersequenz mit der Wallace-Regel und der Nearest-Neighbor-Methode nach SantaLucia 1998. Zusätzlich zeigt er Länge, GC-Gehalt, Basenzusammensetzung und eine empfohlene Starttemperatur für die Annealing-Phase an.

## Eingaben

- **Primersequenz (5'→3')** (text): DNA primer sequence, A/C/G/T only (case-insensitive); 5–60 nt.
- **Tm-Methode** (select): Wallace for a quick short-oligo estimate; nearest-neighbor is the standard for primer design.
- **Primerkonzentration (nM)** (number): Primer strand concentration (nearest-neighbor method only).
- **Natriumkonzentration (mM)** (number): \[Na+\] of the reaction buffer (nearest-neighbor method only).
- **Dezimalstellen** (number)

## Wann verwenden

- Zur schnellen Erstbewertung eines PCR-Primers anhand von Tm und GC-Gehalt.
- Zum Vergleich der einfachen Wallace-Schätzung mit der thermodynamischen Nearest-Neighbor-Berechnung.
- Zur Abschätzung einer Starttemperatur für die Annealing-Phase unter festgelegten Primer- und Natriumkonzentrationen.

## Funktionsweise

- Gib eine DNA-Sequenz in 5'→3'-Richtung mit 5 bis 60 Nukleotiden und ausschließlich A, C, G oder T ein.
- Wähle die Wallace-Regel oder die Nearest-Neighbor-Methode nach SantaLucia 1998.
- Bei der Nearest-Neighbor-Berechnung legst du Primerkonzentration und Natriumkonzentration fest.
- Das Ergebnis enthält beide Tm-Werte, den GC-Anteil, die Basenzusammensetzung und Ta als Tm − 5 °C.

## Anwendungsfälle

- PCR-Primer vor der Bestellung anhand von Tm, GC-Gehalt und Sequenzlänge vergleichen.
- Abweichungen zwischen Wallace-Regel und Nearest-Neighbor-Modell bei kurzen oder selbstkomplementären Sequenzen prüfen.
- Eine erste Annealing-Temperatur für einen PCR-Versuch aus der berechneten Tm ableiten.

## Häufig gestellte Fragen

### Welche Sequenzen akzeptiert der Rechner?

Akzeptiert werden DNA-Sequenzen mit A, C, G und T, unabhängig von der Groß- und Kleinschreibung, mit 5 bis 60 Nukleotiden.

### Welche Tm-Methoden stehen zur Verfügung?

Du kannst die Wallace-Regel oder die Nearest-Neighbor-Thermodynamik nach SantaLucia 1998 auswählen. Beide Werte werden ausgegeben.

### Wann ist die Wallace-Regel geeignet?

Sie dient als schnelle Schätzung für kurze Oligos unter 14 Nukleotiden und berücksichtigt weder Konzentration noch Salz oder Sequenzkontext.

### Welche Konzentrationen benötigt die Nearest-Neighbor-Methode?

Für diese Methode werden die Primerkonzentration in nM und die Natriumkonzentration des Reaktionspuffers in mM eingegeben.

### Ist die empfohlene Annealing-Temperatur verbindlich?

Nein. Ta = Tm − 5 °C ist nur ein Startwert für das Erstscreening und sollte experimentell sowie mit passenden Fachrechnern überprüft werden.

## Ähnliche Tools

- [Absorbanz↔Transmission-Konverter (A = −log₁₀T)](https://elysiatools.com/de/tools/absorbance-transmittance-converter): Rechnet in beide Richtungen zwischen Absorbanz und Transmission um: A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T und A = 2 − log₁₀(%T). Akzeptiert Absorbanz A, Prozent-Transmission %T oder Bruchteil-Transmission T und liefert alle drei Darstellungen gleichzeitig. Richtwerte: A=0 → %T=100; A=1 → %T=10; A=0,301 → %T=50. Negative Absorbanz hieße %T > 100 %, in der Standard-Spektrophotometrie unmöglich, und wird abgelehnt.
- [PCR-Annealing-Temperatur-Rechner (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/de/tools/annealing-temperature-calculator): Berechnet die PCR-Annealing-Temperatur (Ta) nach zwei Regeln: die einfache Laborregel Ta = Tm − 5°C (mit dem KLEINEREN Tm des Primerpaares) und die empirische Formel von Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(Primer) + 0.7×Tm(Produkt) − 14.9 (Produkt-Tm typisch 75–90°C; die Formel liegt bei typischen Paaren 1–8°C über der einfachen Regel). Liefert die empfohlene Ta, einen ±3°C-Gradientenbereich und die Richtung der Justage: zu niedrige Ta gibt unspezifische Banden und Primerdimere, zu hohe kein Produkt; halten Sie die Primer-Tm-Werte innerhalb von 2–3°C und annealen Sie nach dem kleineren. Quellen: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Nur für die Versuchsplanung.
- [Autosomal-dominanter Stammbaum-Analysator](https://elysiatools.com/de/tools/autosomal-dominant-pedigree): Berechnet das Nachkommenrisiko bei autosomal-dominanter (AD) Vererbung und bewertet, wie gut beobachtete Anzahlen zum erwarteten Verhältnis passen. Eltern-Genotypen → erwarteter Anteil: AA × beliebig = alle betroffen; Aa × Aa = 3:1 (75%); Aa × aa = 1:1 (50%); aa × aa = keiner. Beobachtete Anzahlen erlauben einen Chi-Quadrat-Test (df = 1, kritisch 3.841). AD-Stammbaum-Merkmale: vertikale Übertragung, beide Geschlechter gleichermaßen betroffen, Mann-zu-Mann-Übertragung vorhanden (schließt X-gebunden dominant aus), Nicht-Betroffene übertragen nicht (außer de-novo-Mutation). Beispiele: Huntington, Achondroplasie, Marfan. Quellen: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Nur für Bildungszwecke.
- [Autosomal-rezessives Risiko-Rechner](https://elysiatools.com/de/tools/autosomal-recessive-risk): Berechnet die Wahrscheinlichkeit, dass ein Kind (oder mindestens eines von n Kindern) an einer autosomal-rezessiven Krankheit erkrankt. Ein betroffenes Kind (aa) muss von BEIDEN Elternteilen ein rezessives Allel erhalten: P(betroffenes Kind) = P(Elter 1 überträgt a) × P(Elter 2 überträgt a). Status: Überträger (Aa), betroffen (aa), kein Überträger (AA), unbekannt (P(Aa)=c, P(aa)=c² aus Populationsfrequenz). Zwei Überträger → 25% pro Kind, 50% Überträger, P(Überträger | nicht betroffen) = 2/3; mindestens eines von n = 1 − (1−r)^n. Standard 0.04 (Mukoviszidose 1/25). Quellen: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Nur für Bildungszwecke, kein Ersatz für genetische Beratung.
- [Zellzähl-Rechner für die Neubauer-Kammer](https://elysiatools.com/de/tools/cell-counting-hemocytometer): Rechnet Rohzählungen der verbesserten Neubauer-Kammer in die Konzentration um: Zellen/mL = (Gesamtzahl ÷ Quadrate) × Verdünnung × 10⁴ (jedes 1-mm²-Quadrat bei 0,1 mm Tiefe fasst exakt 0,1 µL). Geben Sie die Gesamtzahl, die Quadratzahl (meist 4 Eck- oder 5 mit Mittelfeld) und die Verdünnung ein; optional das Volumen für die Gesamtzellzahl. Empfehlungen zur Idealdichte von 20–100 Zellen pro Quadrat. Quellen: Freshney-Handbuch, Neubauer-Geometrie. Nur für Ausbildung.
- [Zelldichte-Konverter (Zellen/mL↔Zellen/µL↔10⁶/mL↔10¹²/L)](https://elysiatools.com/de/tools/cell-density-unit-converter): Vollständige Umrechnung zwischen Zelldichte-Einheiten: Zellen/L, Zellen/mL, Zellen/µL, 10³ Zellen/µL, 10⁶ Zellen/mL, 10⁹ Zellen/L und 10¹² Zellen/L. Deckt sowohl die Zellkultur (z. B. E. coli 5×10⁸ Zellen/mL = 500 ×10⁶ Zellen/mL) als auch hämatologische Befunde (Erythrozyten 4,9×10¹²/L = 4,9×10⁶ Zellen/µL; Leukozyten 6,5×10⁹/L = 6 500 Zellen/µL) ab und liefert die vollständige Einheitentabelle. Begleitwerkzeug: OD600-Rechner.
- [Zellverdopplungszeit-Rechner](https://elysiatools.com/de/tools/cell-doubling-time): Berechnet die exponentielle Wachstumskinetik aus zwei Zählungen: Verdopplungszeit t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀), Zahl der Verdopplungen n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 und spezifische Rate μ = ln(Nₜ/N₀)/t (h⁻¹). N₀ und Nₜ sind Zellzahlen oder Dichten in beliebiger konsistenter Einheit; Zeit in Stunden/Tagen/Minuten. Setzt Log-Phase an beiden Punkten voraus (subkonfluente Aussaat, Ernte vor Kontaktinhibition), sonst fällt t_d zu hoch aus; mit Referenzwerten für HEK293/HeLa/CHO. Quelle: Freshney-Handbuch. Nur für Ausbildung.
- [Trypanblau-Zellviabilitäts-Rechner](https://elysiatools.com/de/tools/cell-viability-trypan-blue): Berechnet die Viabilität aus den Lebend-/Totzählungen des Trypanblau-Ausschlusstests: Viabilität % = lebende ÷ (lebende + tote) × 100; Lebendkonzentration = Zählung × Verdünnung × 10⁴ ÷ Quadrate. Der Farbstoff passiert intakte Membranen nicht: Lebende Zellen bleiben hell, geschädigte färben sich tiefblau. Enthält eine Kultureinschätzung (≥90% gesund, 70–90% akzeptabel, <70% gestresst) und Protokollhinweise (innerhalb von 3–5 Min zählen; lange Exposition tötet vitale Zellen). Quellen: Freshney, Strober-Protokoll. Nur für Ausbildung.

## Beispiele

- [Web Python Bildverarbeitung Beispiele](https://elysiatools.com/de/samples/web-image-processing-python): Web Python Bildverarbeitungsbeispiele mit PIL/Pillow einschließlich Lesen, Speichern, Skalieren und Formatkonvertierung
- [Android Java Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/android-image-processing-java): Android Java Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung
- [Android Kotlin Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/android-image-processing-kotlin): Android Kotlin Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung
- [Web Rust Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/web-image-processing-rust): Web Rust Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung
