# Verdünnungsrechner für Nukleinsäuren (C1V1 = C2V2)

Stellt DNA/RNA-Arbeitslösungen in zwei Modi her: über die Zielkonzentration nach C1V1 = C2V2 mit Stockvolumen V1 = C2×V2/C1 und Puffervolumen; oder über den Verdünnungsfaktor 1:X mit Endkonzentration C1/X und Volumen V2/X. Stock und Ziel müssen nur dieselbe Einheit teilen (ng/µL, µg/mL, nM) — die Algebra ist einheitenfrei. Integrierte Pipettierhinweise: V1 < 0.5 µL empfiehlt eine zweistufige Serialverdünnung, V1 < 2 µL einen Low-Retention-Tip; ein Ziel über dem Stock wird abgelehnt. Quellen: Sambrook & Russell 3. Aufl., Thermo-Fisher-Pipettierleitfaden. Nur für Ausbildung und Planung.

> Kanonische Seite: https://elysiatools.com/de/tools/nucleic-acid-dilution

- **Kategorie:** Education

- **Schlagwörter:** nukleinsäure-verdünnung, c1v1 = c2v2 rechner, dna-verdünnungsrechner, rna-verdünnung, verdünnungsfaktor 1:x, arbeitslösung dna, stammlösungs-rechner, verdünnung ng/µl, serialverdünnung, molekularbiologie, labor-rechner

## Überblick

Der Verdünnungsrechner für Nukleinsäuren berechnet DNA- und RNA-Arbeitslösungen nach C1V1 = C2V2 oder anhand eines Verdünnungsfaktors von 1:X. Er gibt Stock- und Puffervolumen, Endkonzentration und Verdünnungsfaktor aus und eignet sich ausschließlich für Ausbildung und Versuchsplanung.

## Eingaben

- **Berechnungsmodus** (select): Solve for the stock volume from a target concentration, or dilute by a fixed 1:X factor.
- **Stammlösung-Konzentration (ng/µL)** (number): Quantified concentration of the stock (any unit — keep it identical to the target unit).
- **Zielkonzentration (ng/µL)** (number): Desired working concentration (C1V1 = C2V2 mode; must not exceed the stock).
- **Verdünnungsfaktor X** (number): Total-to-stock ratio of a 1:X dilution (dilution-factor mode; must be greater than 1).
- **Endvolumen (µL)** (number): Total volume of the finished working solution.
- **Dezimalstellen** (number)

## Wann verwenden

- Wenn eine Stammlösung auf eine bestimmte Zielkonzentration verdünnt werden soll.
- Wenn eine feste Verdünnung wie 1:10 oder 1:100 geplant ist.
- Wenn Stock- und Puffervolumen vor dem Pipettieren schnell geprüft werden sollen.

## Funktionsweise

- Wählen Sie den Modus für die Zielkonzentration oder den Verdünnungsfaktor 1:X.
- Geben Sie Stammlösungskonzentration und Endvolumen ein; im Zielkonzentrationsmodus zusätzlich die Zielkonzentration.
- Der Rechner bestimmt das benötigte Stockvolumen und ergänzt das Puffervolumen bis zum Endvolumen.
- Das Ergebnis zeigt außerdem Endkonzentration, Verdünnungsfaktor und bei kleinen Volumina passende Pipettierhinweise.

## Anwendungsfälle

- DNA- oder RNA-Arbeitslösungen für molekularbiologische Versuche planen.
- Miniprep- oder gBlocks-Stocks auf eine definierte Konzentration für Folgeansätze verdünnen.
- Kleine Pipettiervolumina erkennen und bei Bedarf eine Serialverdünnung einplanen.

## Häufig gestellte Fragen

### Welche Einheiten kann ich verwenden?

Stock und Ziel müssen dieselbe Einheit verwenden, zum Beispiel ng/µL, µg/mL oder nM.

### Welche Formel verwendet der Rechner?

Im Zielkonzentrationsmodus gilt C1V1 = C2V2, also V1 = C2 × V2 / C1.

### Was bedeutet eine Verdünnung von 1:X?

X bezeichnet das Verhältnis von Endvolumen zu Stockvolumen. Die Endkonzentration entspricht C1/X.

### Was passiert bei einem Stockvolumen unter 0,5 µL?

Der Rechner empfiehlt eine zweistufige Serialverdünnung, weil ein so kleines Volumen schwer zuverlässig zu pipettieren ist.

### Kann die Zielkonzentration über der Stockkonzentration liegen?

Nein. Ein Ziel über der Stockkonzentration wird abgelehnt, da eine Verdünnung nicht aufkonzentriert.

## Ähnliche Tools

- [BCA-Proteinbestimmungs-Rechner (Standardkurve)](https://elysiatools.com/de/tools/bca-assay-calculator): Quantifiziert Protein nach der BCA-Methode (Bicinchoninsäure, 562 nm) mit Standardkurve: fügen Sie die Zeilen «Konzentration(µg/mL), A562» und die Probenabsorptionen ein; das Werkzeug fittet nach kleinsten Quadraten (Steigung, Achsenabschnitt, R²), invertiert c = (A−b)/m und wendet den Verdünnungsfaktor an (µg/mL und mg/mL). Werte außerhalb der Palette werden als Extrapolation markiert; unterhalb der Leerprobe abgelehnt. BCA-Besonderheiten: verträgt ~5 % Detergens (besser als Bradford für Lysate); aber DTT/TCEP/β-Mercaptoethanol (>1 mM) und hohes EDTA reduzieren/chelatisieren Cu²⁺ und erhöhen die Werte — vorher entfernen; Arbeitsbereich ~20–2000 µg/mL (Micro BCA 0,5–20). Quelle: Smith 1985 Anal Biochem. Nur für Ausbildung.
- [Bradford-Proteinbestimmungs-Rechner (BSA-Standardkurve)](https://elysiatools.com/de/tools/bradford-assay-calculator): Quantifiziert Protein nach der Bradford-Methode (Coomassie G-250, 595 nm) mit BSA-Standardkurve: fügen Sie die Zeilen «Konzentration(µg/mL), A595» der Standards und die Absorptionen der Proben ein; das Werkzeug fittet nach kleinsten Quadraten (Steigung, Achsenabschnitt, R²), invertiert c = (A−b)/m und multipliziert mit dem Verdünnungsfaktor (µg/mL und mg/mL). Werte außerhalb des Standardbereichs werden als Extrapolation markiert; Werte unterhalb der Leerprobe werden als nicht quantifizierbar abgelehnt. Wichtig: die Farbstoffantwort variiert stark je nach Protein (BSA ≈ doppelt so hoch wie IgG), hohe Detergenzien stören; Standards und Proben im selben Puffer. Quelle: Bradford 1976 Anal Biochem. Nur für Ausbildung.
- [DNA-Konzentrationsrechner (A260-Absorption)](https://elysiatools.com/de/tools/dna-concentration-a260): Bestimmt die DNA-Konzentration über die UV-Absorption bei 260 nm: Konzentration (µg/mL) = A260 × Verdünnungsfaktor × Konstante ÷ Schichtdicke (cm). Konstanten: doppelsträngige DNA 1 OD = 50 µg/mL, einzelsträngige DNA 1 OD = 33 µg/mL (RNA 40 — siehe RNA-Tool). 1 µg/mL = 1 ng/µL; mit Elutionsvolumen ergibt sich die Gesamtausbeute in µg. Enthält das lineare Fenster 0.1–1.5: unter 0.1 dominiert Rauschen, über 1.5 kann der Detektor sättigen. Reinheit über OD260/280 beurteilen. Quellen: Marmur & Doty 1961/1962, Sambrook & Russell, Thermo Fisher NanoDrop. Nur für Ausbildung und Versuchsplanung.
- [Katalytische-Effizienz-Rechner (kcat/Km)](https://elysiatools.com/de/tools/enzyme-catalytic-efficiency): Berechnet die katalytische Effizienz kcat/Km (M⁻¹s⁻¹) — die scheinbare Geschwindigkeitskonstante zweiter Ordnung bei niedrigem Substrat und der faire Vergleichsmaßstab für die Substratpräferenz eines Enzyms. Zwei Eingaben: direktes kcat (s⁻¹ oder min⁻¹) und Km (nM/µM/mM); oder kcat aus Vmax(µM/min) ÷ \[E\](µM), dann durch Km teilen. Bereiche (M⁻¹s⁻¹): <10³ ineffizient (falsches Substrat oder Artefakt vermuten), 10³–10⁵ mäßig, 10⁵–10⁷ effizient (gut evolvierte Enzyme), 10⁷–10⁸ sehr effizient, ≥10⁸ nahe der Diffusionsgrenze (10⁸–10⁹), „katalytisch perfekt“ (Triosephosphat-Isomerase, Carboanhydrase, Acetylcholinesterase). Nur gültig im Steady State mit Km ≫ \[E\]. Quellen: Fersht, Knowles & Albery 1977, Radzicka & Wolfenden 1995. Nur für Ausbildung.
- [OD260/230-Reinheitsrechner (Salz-/Lösungsmittelkontamination)](https://elysiatools.com/de/tools/od260-230-ratio): Bewertet Salz- und organische Lösungsmittelkontamination über das OD260/230-Verhältnis — die Kontrolle, die sieht, was 260/280 verpasst: reine Nukleinsäure liefert 2.0–2.2, Werte darunter signalisieren Guanidinium-Verschleppung (TRIzol/Säulen-Kits), Phenol, Kohlenhydrate, EDTA, hohe Salze oder β-Mercaptoethanol; 2.2–2.3 ist meist ein akzeptabler Puffereffekt; über 2.3 deutet auf ein Wasser-/Pufferartefakt hin — nachmessen. Optionales A280 für den OD260/280-Kreuzcheck (DNA ~1.8, RNA ~2.0): eine Messreihe deckt beide Reinheitsdimensionen ab. Unter ~0.05 Messwert ist das Verhältnis unzuverlässig. Quellen: Thermo Fisher T042, Sambrook & Russell, Manchester 1995. Nur für Ausbildung.
- [Nukleinsäure-Reinheitsrechner (OD260/280)](https://elysiatools.com/de/tools/od260-280-ratio): Bewertet die Reinheit von Nukleinsäure-Präparaten über das OD260/280-Verhältnis: Basen absorbieren maximal bei 260 nm, aromatische Aminosäuren von Protein (und Phenol) nahe 280 nm — A260/A280 diagnostiziert also Protein-/Phenolverschleppung. Erwartungswerte: reine DNA ≈ 1.8 (Fenster 1.7–2.0), reine RNA ≈ 2.0 (Fenster 1.8–2.2); DNA < 1.7 oder RNA < 1.8 bedeutet Protein-/Phenol-/Guanidin-Kontamination, DNA > 2.0 deutet auf RNA-Kontamination, RNA > 2.2 auf einen Messartefakt (niedrige Ionenstärke). Optionales A230 für das Sekundärverhältnis A260/A230 (rein 2.0–2.2; darunter Guanidin/Phenol/Kohlenhydrate/Salze). Unter ~0.05 Messwert ist das Verhältnis unzuverlässig. Quellen: Manchester 1995, Sambrook & Russell, Thermo Fisher T042. Nur für Ausbildung.
- [RNA-Konzentrationsrechner (A260, 1 OD = 40 µg/mL)](https://elysiatools.com/de/tools/rna-concentration-a260): Bestimmt die RNA-Konzentration über die UV-Absorption bei 260 nm: Konzentration (µg/mL) = A260 × Verdünnungsfaktor × 40 ÷ Schichtdicke (cm). Die RNA-Konstante ist 1 OD = 40 µg/mL — zwischen doppelsträngiger DNA (50) und einzelsträngiger DNA (33); ein häufiger Fehler ist die dsDNA-Konstante 50 beizubehalten, was die RNA-Ausbeute um 25% überhöht. 1 µg/mL = 1 ng/µL; mit Elutionsvolumen ergibt sich die Gesamtausbeute. Enthält das lineare Fenster 0.1–1.5; reine RNA liefert OD260/280 ≈ 2.0 (DNA ~1.8) — Reinheit mit dem Ratio-Tool prüfen. RNase-frei und auf Eis arbeiten. Quellen: Marmur & Doty, Sambrook & Russell, Manchester 1995, Thermo Fisher. Nur für Ausbildung und Versuchsplanung.
- [Basenüberschuss-Rechner (BE, Stoffwechselkomponente)](https://elysiatools.com/de/tools/base-excess-calculator): Berechnet den Basenüberschuss (BE) zur Quantifizierung der metabolischen Komponente von Säure-Basen-Störungen. Siggaard-Andersen-Formel: BE = 0.9287×(HCO₃⁻ − 24.4 + 14.83×(pH − 7.4)). BE < −3 metabolische Azidose (Basendefizit), −3 bis +3 normal, > +3 metabolische Alkalose. Schweregrad: leicht −3~−6 / +3~+6; moderat −6~−10 / +6~+10; schwer < −10 / > +10. BE isoliert die metabolische Komponente; verwendet bei Trauma (Defizit ≤ −6 korreliert mit Letalität), Schock, Herzstillstand. HCO₃⁻ bei Bedarf per Henderson-Hasselbalch berechnet. Quellen: Siggaard-Andersen 1974, Cornell PICU, Medscape, Langer 2022. Keine medizinische Beratung.

## Beispiele

- [Web Python Bildverarbeitung Beispiele](https://elysiatools.com/de/samples/web-image-processing-python): Web Python Bildverarbeitungsbeispiele mit PIL/Pillow einschließlich Lesen, Speichern, Skalieren und Formatkonvertierung
- [Android Java Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/android-image-processing-java): Android Java Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung
- [Android Kotlin Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/android-image-processing-kotlin): Android Kotlin Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung
- [Web Rust Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/web-image-processing-rust): Web Rust Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung

## Verwandte Inhalte

- [Tools fur Audio-Encoding und Formatkonvertierung](https://elysiatools.com/de/hubs/audio-convert): Vergleiche Audioformat-Konvertierung, Bitratenanderungen, Abtastraten-Konvertierung, Codec-Wechsel und Export-Tools in einem Hub.
- [Tools fur Bildformat-Konvertierung und animierten Export](https://elysiatools.com/de/hubs/image-convert): Vergleiche Bildkonverter fur JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 und animationsgeeignete Exporte in einem Hub.
- [Tools fur JSON-Austausch und Format-Ubersetzung](https://elysiatools.com/de/hubs/json-convert): Vergleiche JSON-Konvertierungswerkzeuge fur CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN und ahnliche strukturierte Formate in einem Hub.
- [Farbraum-Konvertierung fur Web und Druck](https://elysiatools.com/de/hubs/design-convert): Gebundelte Werkzeuge fur Farbraum-Konvertierung zwischen Web und Druck in einem Hub.
