# Molarer Extinktionskoeffizient und Beer-Lambert-Gesetz (A = ε·c·l) Löst eine der vier Größen des Beer-Lambert-Gesetzes A = ε·c·l aus den anderen drei: Absorbanz A, molarer Extinktionskoeffizient ε (M⁻¹cm⁻¹), Konzentration (M/mM/µM/nM) oder Schichtdicke (cm/mm). Enthält den klassischen Ankerwert NADH ε340 = 6220 M⁻¹cm⁻¹ (100 µM in 1-cm-Küvette → A = 0,622), Grundlage enzymatischer Aktivitätstests. > Kanonische Seite: https://elysiatools.com/de/tools/molar-extinction-coefficient - **Kategorie:** Education - **Schlagwörter:** molarer extinktionskoeffizient, beer-lambert-gesetz, absorbanz, spektrophotometrie, epsilon berechnen, nadh 340nm, küvette, konzentration aus absorbanz ## Überblick Dieser Rechner löst das Lambert-Beer-Gesetz (A = ε·c·l) flexibel nach einer der vier physikalischen Größen auf: Absorbanz, molarer Extinktionskoeffizient, Konzentration oder optische Schichtdicke. Mit automatischer Einheitenumrechnung für Konzentrationen von M bis nM sowie Küvettenschichtdicken in cm und mm liefert das Tool präzise Ergebnisse für spektrophotometrische Analysen im Laboralltag. ## Eingaben - **Berechnen** (select): Which quantity to compute; the other three must be provided. - **Absorbanz (A)** (number): Measured absorbance (required unless solving for A). - **Extinktionskoeffizient ε (M⁻¹cm⁻¹)** (number): Molar extinction coefficient in M⁻¹cm⁻¹ (required unless solving for ε). - **Konzentration** (number): Concentration in the selected unit (required unless solving for c). - **Konzentration** (select): Unit of the entered (or solved) concentration. - **Schichtdicke** (number): Optical path length in the selected unit (required unless solving for l). - **Schichtdicke** (select): Unit of the entered (or solved) path length. - **Dezimalstellen** (number) ## Wann verwenden - Wenn aus einer gemessenen Absorbanz am Photometer direkt die Probenkonzentration ermittelt werden soll. - Wenn der molare Extinktionskoeffizient ε einer neu synthetisierten Substanz oder eines Farbstoffs experimentell bestimmt werden muss. - Wenn vor einem photometrischen Enzymtest (z. B. NADH-Umsatz bei 340 nm) die zu erwartende Absorbanz berechnet werden soll. ## Funktionsweise - Wählen Sie im Feld 'Berechnen' die gesuchte Zielgröße aus (Absorbanz, Extinktionskoeffizient, Konzentration oder Schichtdicke). - Geben Sie die Werte der drei bekannten Parameter ein und wählen Sie die passenden Einheiten für Konzentration (M, mM, µM, nM) und Schichtdicke (cm, mm). - Legen Sie optional die gewünschte Anzahl der Dezimalstellen für die Ausgabe fest. - Der Rechner wandelt alle Werte intern in die Basiseinheiten (mol/L und cm) um, wendet die Formel A = ε·c·l an und gibt das berechnete Ergebnis aus. ## Anwendungsfälle - Quantitative Konzentrationsbestimmung von Nukleinsäuren, Proteinen oder niedermolekularen Substanzen. - Berechnung von Reaktionsgeschwindigkeiten und Substratumsätzen in NADH/NADPH-gekoppelten Enzymassays. - Charakterisierung neuer Farbstoffe und fluorophorer Gruppen durch Ermittlung des spezifischen Extinktionskoeffizienten. ## Häufig gestellte Fragen ### Welche Grundformel verwendet der Rechner? Er verwendet das Lambert-Beer-Gesetz: Absorbanz (A) = molarer Extinktionskoeffizient (ε) × Konzentration (c) × Schichtdicke (l). ### Welche Einheiten werden für den Extinktionskoeffizienten ε verwendet? Der molare Extinktionskoeffizient wird standardmäßig in M⁻¹cm⁻¹ (L·mol⁻¹·cm⁻¹) berechnet und angegeben. ### Kann ich Schichtdicken von Mikrotiterplatten oder Nanodrop-Messungen eingeben? Ja, Sie können die Schichtdicke wahlweise in Zentimetern (cm) oder Millimetern (mm) angeben. ### Welcher Referenzwert gilt für NADH bei 340 nm? Für NADH bei 340 nm wird üblicherweise der Literaturwert ε = 6220 M⁻¹cm⁻¹ verwendet. ### Ist die Absorbanz ein dimensionsloser Wert? Ja, die optische Dichte bzw. Absorbanz (A) besitzt keine physikalische Einheit. ## Ähnliche Tools - [Absorbanz↔Transmission-Konverter (A = −log₁₀T)](https://elysiatools.com/de/tools/absorbance-transmittance-converter): Rechnet in beide Richtungen zwischen Absorbanz und Transmission um: A = −log₁₀(T), T = 10⁻ᴬ, %T = 100·T und A = 2 − log₁₀(%T). Akzeptiert Absorbanz A, Prozent-Transmission %T oder Bruchteil-Transmission T und liefert alle drei Darstellungen gleichzeitig. Richtwerte: A=0 → %T=100; A=1 → %T=10; A=0,301 → %T=50. Negative Absorbanz hieße %T > 100 %, in der Standard-Spektrophotometrie unmöglich, und wird abgelehnt. - [Enzymaktivitäts-Umrechner (U ↔ Katal)](https://elysiatools.com/de/tools/enzyme-unit-converter): Rechnet exakt zwischen Enzymaktivitäts-Einheiten um: 1 U = 1 µmol/min (IUB 1978), 1 kat = 1 mol/s (BIPM 1999), also 1 U = 16,667 nkat, 1 µkat = 60 U und 1 kat = 6×10⁷ U. Geben Sie einen Wert in U/mU/µU oder kat/mkat/µkat/nkat/pkat ein und erhalten Sie dieselbe Aktivität in allen anderen Einheiten. Reine Skalenumrechnung ohne Testannahmen, nützlich für Manuskripte und Datenblätter. Quellen: IUB-Komitee, BIPM 21. CGPM, IUPAC-Green Book. Nur für Ausbildung. - [OD600-Zelldichte-Rechner (E. coli)](https://elysiatools.com/de/tools/od600-cell-density): Rechnet OD600-Trübungsmessungen in Zellkonzentration und Zelltrockengewicht (CDW) um: normierte OD = Messwert × Verdünnungsfaktor ÷ Schichtdicke; Zellen/mL = OD × Zellen pro OD-Einheit (standardmäßig 1×10⁹, üblich für E. coli); CDW g/L = OD × g/L pro OD-Einheit (Standard 0.36, BioNumbers 109837; Bereich 0.3–0.5). Beide Faktoren sind editierbar — Stamm, Medium und Gerät beeinflussen sie; die Defaults sind selbstkonsistent: 0.36 g/L ÷ 10⁹ Zellen/mL = 0.36 pg/Zelle. Messungen über OD 1 werden als außerhalb des linearen Bereichs markiert (Sigma-Aldrich). Quellen: BioNumbers 109835/109837, Agilent/VectorBuilder. Mit eigener OD-KBE-Kurve kalibrieren. Nur für Ausbildung. - [Protein-DNA-Bindungsaffinitätsrechner (Kd-Schätzung)](https://elysiatools.com/de/tools/protein-dna-binding-affinity): Schätzt das Kd aus einem Messpunkt gemäß 1:1-Gleichgewicht: bei Proteinüberschuss gilt f = \[P\]÷(\[P\]+Kd), also Kd = \[P\]×(1−f)÷f; bei f = 0,5 entspricht das Kd der Proteinkonzentration. Zwei Eingaben: gebundener Anteil direkt (0–1) oder Fluoreszenzanisotropie f = (r−rfrei)÷(rgeb.−rfrei). Ergänzt ΔG° = RT·ln(Kd) (standardmäßig 25 °C). Bereiche: <1 nM sehr fest, 1–100 nM fest (typische Ziele von Transkriptionsfaktoren), 100 nM–1 µM mäßig, >1 µM schwach (Salz und poly(dI-dC)-Wettbewerber prüfen). Annahmen: Gleichgewicht, 1:1, Protein im großen Überschuss; für vollständige Kurven die gesamte Titration fitten. Quellen: Cantor & Schimmel, Heyduk & Lee 1990, Lakowicz. Nur für Ausbildung. - [Isoelektrischer-Punkt-Rechner für Proteine (pI)](https://elysiatools.com/de/tools/protein-isoelectric-point): Berechnet den theoretischen isoelektrischen Punkt aus der Aminosäurezusammensetzung: Nettoladung per Henderson–Hasselbalch über jede ionisierbare Gruppe (vereinfachter ExPASy/Bjellqvist-pKa-Satz: N-Terminus 7,5, K 10.0, R 12.0, H 5.98; C-Terminus 3.55, D 4.05, E 4.45, C 9.0, Y 10.0) und Bisektion bis zur Ladung null. Liefert zudem die Nettoladung bei physiologischem pH 7.4, die durchschnittliche Molekülmasse (ProtParam-Tabelle + Wasser) sowie die saure/basische Einordnung. Grenzen: pKa der entfalteten Kette, ohne posttranslationale Modifikationen; der pKa-Satz und der Bisektionsalgorithmus sind identisch mit Biopython IsoelectricPoint (numerisch gleiche Ergebnisse), während der vollständige Bjellqvist-Satz von ExPASy terminale Reste unterscheidet und leicht abweichen kann. Quellen: Bjellqvist 1993, Gasteiger 2003 (ExPASy), Biopython IsoelectricPoint. Nur für Ausbildung. - [Zitiergenerator](https://elysiatools.com/de/tools/citation-generator): Erzeugt APA 7, MLA 9, Chicago, IEEE, BibTeX- und RIS-Zitate aus DOI, ISBN, URL oder manuellen Metadaten. - [PCR-Annealing-Temperatur-Rechner (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/de/tools/annealing-temperature-calculator): Berechnet die PCR-Annealing-Temperatur (Ta) nach zwei Regeln: die einfache Laborregel Ta = Tm − 5°C (mit dem KLEINEREN Tm des Primerpaares) und die empirische Formel von Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(Primer) + 0.7×Tm(Produkt) − 14.9 (Produkt-Tm typisch 75–90°C; die Formel liegt bei typischen Paaren 1–8°C über der einfachen Regel). Liefert die empfohlene Ta, einen ±3°C-Gradientenbereich und die Richtung der Justage: zu niedrige Ta gibt unspezifische Banden und Primerdimere, zu hohe kein Produkt; halten Sie die Primer-Tm-Werte innerhalb von 2–3°C und annealen Sie nach dem kleineren. Quellen: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Nur für die Versuchsplanung. - [Autosomal-dominanter Stammbaum-Analysator](https://elysiatools.com/de/tools/autosomal-dominant-pedigree): Berechnet das Nachkommenrisiko bei autosomal-dominanter (AD) Vererbung und bewertet, wie gut beobachtete Anzahlen zum erwarteten Verhältnis passen. Eltern-Genotypen → erwarteter Anteil: AA × beliebig = alle betroffen; Aa × Aa = 3:1 (75%); Aa × aa = 1:1 (50%); aa × aa = keiner. Beobachtete Anzahlen erlauben einen Chi-Quadrat-Test (df = 1, kritisch 3.841). AD-Stammbaum-Merkmale: vertikale Übertragung, beide Geschlechter gleichermaßen betroffen, Mann-zu-Mann-Übertragung vorhanden (schließt X-gebunden dominant aus), Nicht-Betroffene übertragen nicht (außer de-novo-Mutation). Beispiele: Huntington, Achondroplasie, Marfan. Quellen: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Nur für Bildungszwecke. ## Beispiele - [Web Python Bildverarbeitung Beispiele](https://elysiatools.com/de/samples/web-image-processing-python): Web Python Bildverarbeitungsbeispiele mit PIL/Pillow einschließlich Lesen, Speichern, Skalieren und Formatkonvertierung - [FLAC Audio-Beispiele ohne Urheberrechte](https://elysiatools.com/de/samples/flac-samples): Sammlung verlustfreier FLAC-Audios für Tests und Entwicklung, einschließlich Naturklänge und Meditationsmusik - [WAV Audio-Beispiele ohne Urheberrechte](https://elysiatools.com/de/samples/wav-samples): Sammlung unkomprimierter WAV-Audios für Tests und Entwicklung, einschließlich Naturklänge und Meditationsmusik - [Android Java Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/android-image-processing-java): Android Java Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung ## Verwandte Inhalte - [Extinktions-Quantifizierung und Säure-Base-Berechnungen](https://elysiatools.com/de/hubs/absorbance-quantification-and-acid-base-calculations): Verwandeln Sie Instrumentenablesungen in verteidigungsfähige Konzentrationen — wechseln Sie zwischen Absorbanz und Transmission, lösen Sie das Beer-Lambert-Gesetz nach der fehlenden Variablen, gehen Sie die Nukleinsäure-Kette von A260 zu Mikrogramm zu Nanomolar zu Kopien pro Mikroliter, sagen Sie den pH aus starken Säuren und Basen voraus, entwerfen Sie Puffer mit Henderson-Hasselbalch und prüfen Sie die Dissoziation über die molare Leitfähigkeit.