# DNA-Molkonzentrationsrechner (µg/mL → nM) Rechnet die Massenkonzentration von DNA in die molare Konzentration um: nM = µg/mL × 10⁶ ÷ (Masse pro Basenpaar × bp). Durchschnittsmassen nach NEB: doppelsträngige DNA 650 Da/bp, einzelsträngige 330 Da/nt (Promega nutzt 660). Klassische Falle: Mit 10⁻³ im Nenner ergibt sich µM, nicht nM (Faktor 1000). 1 µg/mL = 1 ng/µL; mit Volumen folgen Gesamt-pmol und Moleküle pro µL. Quellen: NEB NEBioCalculator, Promega BioMath, N_A = 6.022×10²³. Nur für Ausbildung und Versuchsplanung. > Kanonische Seite: https://elysiatools.com/de/tools/molar-dna-concentration - **Kategorie:** Education - **Schlagwörter:** dna-molkonzentration, µg/ml zu nm, nm-rechner dna, pmol-dna-rechner, 650 dalton pro basenpaar, 330 da pro nukleotid, molekülmasse doppelstrang-dna, dna-moleküle pro mikroliter, avogadro kopien dna, molarinsert-konzentration, molekularbiologie, labor-rechner ## Überblick Der DNA-Molkonzentrationsrechner wandelt eine Massenkonzentration in µg/mL beziehungsweise ng/µL in nM um. Je nach DNA-Typ verwendet er 650 Da/bp für doppelsträngige DNA oder 330 Da/nt für einzelsträngige DNA und berechnet zusätzlich µM, pmol/µL sowie bei Angabe eines Volumens die Gesamtmenge in pmol. ## Eingaben - **DNA-Konzentration (µg/mL = ng/µL)** (number): Mass concentration of the DNA sample. 1 µg/mL is numerically identical to 1 ng/µL. - **DNA-Typ** (select): dsDNA averages 650 Da/bp; ssDNA averages 330 Da/nt (NEB convention). - **DNA-Länge (bp)** (number): Full length of the DNA molecule in base pairs (nt for ssDNA). - **Probenvolumen (µL, optional)** (number): Volume of the sample in µL; enter 0 to skip the total-pmol calculation. - **Dezimalstellen** (number) ## Wann verwenden - Wenn du eine DNA-Massenkonzentration für ein Experiment in nM umrechnen möchtest. - Wenn du doppelsträngige oder einzelsträngige DNA anhand ihrer Länge vergleichen musst. - Wenn du aus Konzentration und Probenvolumen die gesamte DNA-Menge in pmol bestimmen willst. ## Funktionsweise - Gib die DNA-Konzentration in µg/mL ein; dieser Wert entspricht numerisch ng/µL. - Wähle zwischen doppelsträngiger DNA mit 650 Da/bp und einzelsträngiger DNA mit 330 Da/nt. - Trage die DNA-Länge in bp beziehungsweise nt ein. - Optional kannst du das Probenvolumen angeben, um die Gesamtmenge in pmol zu erhalten. ## Anwendungsfälle - Molare Konzentration eines PCR-Produkts für Ligationen oder Assemblies bestimmen. - Einzelsträngige DNA wie Oligonukleotide anhand von Länge und Massenkonzentration umrechnen. - Gesamtmenge einer DNA-Probe in pmol für die Versuchsplanung abschätzen. ## Häufig gestellte Fragen ### Welche Formel verwendet der Rechner? Die Formel lautet: nM = µg/mL × 10⁶ ÷ (Masse pro Basenpaar beziehungsweise Nukleotid × DNA-Länge). ### Welche Massen gelten für dsDNA und ssDNA? Für dsDNA werden 650 Da/bp und für ssDNA 330 Da/nt verwendet. ### Sind µg/mL und ng/µL gleich? Ja. 1 µg/mL entspricht numerisch 1 ng/µL. ### Was passiert bei der Eingabe eines Probenvolumens? Der Rechner berechnet zusätzlich die gesamte DNA-Menge in pmol. ### Warum darf nM nicht mit µM verwechselt werden? Eine falsche Umrechnung kann zu einem Faktor-1000-Fehler führen: 0,077 µM entsprechen 76,923 nM. ## Ähnliche Tools - [PCR-Annealing-Temperatur-Rechner (Ta = Tm − 5°C)](https://elysiatools.com/de/tools/annealing-temperature-calculator): Berechnet die PCR-Annealing-Temperatur (Ta) nach zwei Regeln: die einfache Laborregel Ta = Tm − 5°C (mit dem KLEINEREN Tm des Primerpaares) und die empirische Formel von Rychlik 1990: Ta = 0.3×Tm(Primer) + 0.7×Tm(Produkt) − 14.9 (Produkt-Tm typisch 75–90°C; die Formel liegt bei typischen Paaren 1–8°C über der einfachen Regel). Liefert die empfohlene Ta, einen ±3°C-Gradientenbereich und die Richtung der Justage: zu niedrige Ta gibt unspezifische Banden und Primerdimere, zu hohe kein Produkt; halten Sie die Primer-Tm-Werte innerhalb von 2–3°C und annealen Sie nach dem kleineren. Quellen: Rychlik 1990, Innis & Gelfand 1990, Lorenz 2012. Nur für die Versuchsplanung. - [Autosomal-dominanter Stammbaum-Analysator](https://elysiatools.com/de/tools/autosomal-dominant-pedigree): Berechnet das Nachkommenrisiko bei autosomal-dominanter (AD) Vererbung und bewertet, wie gut beobachtete Anzahlen zum erwarteten Verhältnis passen. Eltern-Genotypen → erwarteter Anteil: AA × beliebig = alle betroffen; Aa × Aa = 3:1 (75%); Aa × aa = 1:1 (50%); aa × aa = keiner. Beobachtete Anzahlen erlauben einen Chi-Quadrat-Test (df = 1, kritisch 3.841). AD-Stammbaum-Merkmale: vertikale Übertragung, beide Geschlechter gleichermaßen betroffen, Mann-zu-Mann-Übertragung vorhanden (schließt X-gebunden dominant aus), Nicht-Betroffene übertragen nicht (außer de-novo-Mutation). Beispiele: Huntington, Achondroplasie, Marfan. Quellen: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls, OMIM. Nur für Bildungszwecke. - [Autosomal-rezessives Risiko-Rechner](https://elysiatools.com/de/tools/autosomal-recessive-risk): Berechnet die Wahrscheinlichkeit, dass ein Kind (oder mindestens eines von n Kindern) an einer autosomal-rezessiven Krankheit erkrankt. Ein betroffenes Kind (aa) muss von BEIDEN Elternteilen ein rezessives Allel erhalten: P(betroffenes Kind) = P(Elter 1 überträgt a) × P(Elter 2 überträgt a). Status: Überträger (Aa), betroffen (aa), kein Überträger (AA), unbekannt (P(Aa)=c, P(aa)=c² aus Populationsfrequenz). Zwei Überträger → 25% pro Kind, 50% Überträger, P(Überträger | nicht betroffen) = 2/3; mindestens eines von n = 1 − (1−r)^n. Standard 0.04 (Mukoviszidose 1/25). Quellen: Griffiths, Hartl & Clark 2007, StatPearls. Nur für Bildungszwecke, kein Ersatz für genetische Beratung. - [Zellzähl-Rechner für die Neubauer-Kammer](https://elysiatools.com/de/tools/cell-counting-hemocytometer): Rechnet Rohzählungen der verbesserten Neubauer-Kammer in die Konzentration um: Zellen/mL = (Gesamtzahl ÷ Quadrate) × Verdünnung × 10⁴ (jedes 1-mm²-Quadrat bei 0,1 mm Tiefe fasst exakt 0,1 µL). Geben Sie die Gesamtzahl, die Quadratzahl (meist 4 Eck- oder 5 mit Mittelfeld) und die Verdünnung ein; optional das Volumen für die Gesamtzellzahl. Empfehlungen zur Idealdichte von 20–100 Zellen pro Quadrat. Quellen: Freshney-Handbuch, Neubauer-Geometrie. Nur für Ausbildung. - [Zellverdopplungszeit-Rechner](https://elysiatools.com/de/tools/cell-doubling-time): Berechnet die exponentielle Wachstumskinetik aus zwei Zählungen: Verdopplungszeit t_d = ln2 × t ÷ ln(Nₜ/N₀), Zahl der Verdopplungen n = ln(Nₜ/N₀) ÷ ln2 und spezifische Rate μ = ln(Nₜ/N₀)/t (h⁻¹). N₀ und Nₜ sind Zellzahlen oder Dichten in beliebiger konsistenter Einheit; Zeit in Stunden/Tagen/Minuten. Setzt Log-Phase an beiden Punkten voraus (subkonfluente Aussaat, Ernte vor Kontaktinhibition), sonst fällt t_d zu hoch aus; mit Referenzwerten für HEK293/HeLa/CHO. Quelle: Freshney-Handbuch. Nur für Ausbildung. - [Trypanblau-Zellviabilitäts-Rechner](https://elysiatools.com/de/tools/cell-viability-trypan-blue): Berechnet die Viabilität aus den Lebend-/Totzählungen des Trypanblau-Ausschlusstests: Viabilität % = lebende ÷ (lebende + tote) × 100; Lebendkonzentration = Zählung × Verdünnung × 10⁴ ÷ Quadrate. Der Farbstoff passiert intakte Membranen nicht: Lebende Zellen bleiben hell, geschädigte färben sich tiefblau. Enthält eine Kultureinschätzung (≥90% gesund, 70–90% akzeptabel, <70% gestresst) und Protokollhinweise (innerhalb von 3–5 Min zählen; lange Exposition tötet vitale Zellen). Quellen: Freshney, Strober-Protokoll. Nur für Ausbildung. - [KBE/mL-Rechner (koloniebildende Einheiten)](https://elysiatools.com/de/tools/cfu-calculator): Rechnet die Koloniezählung in die Konzentration der Ausgangskultur um: KBE/mL = Kolonien × 10ⁿ ÷ ausplattiertes Volumen (mL), wobei die Platte aus dem 10⁻ⁿ-Röhrchen beimpft wurde. Enthält die zählbare Bereichsregel 30–300 Kolonien pro Platte: >300 meldet TNTC (zu zahlreich, höhere Verdünnung), <30 meldet TFTC (zu wenig, geringere Verdünnung) und 0 Kolonien ergibt die Nachweisgrenze; optionale Umrechnung in Gesamt-KBE. Quellen: Standard Methods, FDA BAM. Nur für Ausbildung. - [DNA-Kopienzahl-Rechner (Konzentration → Kopien)](https://elysiatools.com/de/tools/dna-copy-number-calculator): Rechnet eine DNA-Massenkonzentration in Molekülkopien pro Mikroliter um: Kopien/µL = c(g/µL) × N_A ÷ (Länge bp × 660 g/mol). Unterstützt ng/µL (übliche NanoDrop-Ausgabe, identisch mit µg/mL), pg/µL (Qubit-Bereich) und µg/µL; inklusive pmol/µL-Umrechnung und Gesamt Kopien in einem optionalen Volumen. Richtwert: ein 5.000-bp-Plasmid bei 50 ng/µL → 9.12×10⁹ Kopien/µL (0.0152 pmol/µL). Hinweise: 660 Da/bp ist ein Durchschnitt, der für Plasmide/Genom/Amplicons genügt (bei exakten Oligos Basenmassen summieren); A260 überschätzt bei RNA/freien Nukleotiden — für Genauigkeit Fluoreszenz-Assay nutzen. Quellen: N_A SI 2019, Thermo-Fisher-Konvention, Sambrook & Russell. Nur für die Planung. ## Beispiele - [Web Python Bildverarbeitung Beispiele](https://elysiatools.com/de/samples/web-image-processing-python): Web Python Bildverarbeitungsbeispiele mit PIL/Pillow einschließlich Lesen, Speichern, Skalieren und Formatkonvertierung - [Android Java Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/android-image-processing-java): Android Java Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung - [Android Kotlin Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/android-image-processing-kotlin): Android Kotlin Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung - [Web Rust Bildverarbeitungsbeispiele](https://elysiatools.com/de/samples/web-image-processing-rust): Web Rust Bildverarbeitungsbeispiele einschließlich Lesen/Schreiben, Skalierung und Formatkonvertierung ## Verwandte Inhalte - [Tools fur Audio-Encoding und Formatkonvertierung](https://elysiatools.com/de/hubs/audio-convert): Vergleiche Audioformat-Konvertierung, Bitratenanderungen, Abtastraten-Konvertierung, Codec-Wechsel und Export-Tools in einem Hub. - [Tools fur Bildformat-Konvertierung und animierten Export](https://elysiatools.com/de/hubs/image-convert): Vergleiche Bildkonverter fur JPG, PNG, GIF, AVIF, WebP, TIFF, ICO, base64 und animationsgeeignete Exporte in einem Hub. - [Tools fur JSON-Austausch und Format-Ubersetzung](https://elysiatools.com/de/hubs/json-convert): Vergleiche JSON-Konvertierungswerkzeuge fur CSV, YAML, TOML, GraphQL, XML, Markdown, Excel, BSON, EDN und ahnliche strukturierte Formate in einem Hub. - [Farbraum-Konvertierung fur Web und Druck](https://elysiatools.com/de/hubs/design-convert): Gebundelte Werkzeuge fur Farbraum-Konvertierung zwischen Web und Druck in einem Hub.