# Bradford-Proteinbestimmungs-Rechner (BSA-Standardkurve)

Quantifiziert Protein nach der Bradford-Methode (Coomassie G-250, 595 nm) mit BSA-Standardkurve: fügen Sie die Zeilen «Konzentration(µg/mL), A595» der Standards und die Absorptionen der Proben ein; das Werkzeug fittet nach kleinsten Quadraten (Steigung, Achsenabschnitt, R²), invertiert c = (A−b)/m und multipliziert mit dem Verdünnungsfaktor (µg/mL und mg/mL). Werte außerhalb des Standardbereichs werden als Extrapolation markiert; Werte unterhalb der Leerprobe werden als nicht quantifizierbar abgelehnt. Wichtig: die Farbstoffantwort variiert stark je nach Protein (BSA ≈ doppelt so hoch wie IgG), hohe Detergenzien stören; Standards und Proben im selben Puffer. Quelle: Bradford 1976 Anal Biochem. Nur für Ausbildung.

> Kanonische Seite: https://elysiatools.com/de/tools/bradford-assay-calculator

- **Kategorie:** Education

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## Überblick

Der Bradford-Proteinbestimmungs-Rechner quantifiziert unbekannte Proteinproben anhand einer BSA-Standardkurve und A595-Messwerten. Er berechnet per Kleinste-Quadrate-Regression Steigung, Achsenabschnitt und R², bestimmt die Konzentration mit c = (A−b)/m und berücksichtigt den eingegebenen Verdünnungsfaktor.

## Eingaben

- **Protein-Standards (µg/mL, A595)** (textarea): One standard per line: concentration in µg/mL, then A595 (comma, semicolon, tab, or space separated).
- **Unbekannte Absorptionen (A595)** (textarea): One sample A595 reading per line (blank-subtracted readings are fine as long as the curve includes the blank).
- **Verdünnungsfaktor der Probe** (number): Dilution applied to the sample before the assay (1 = undiluted).
- **Dezimalstellen** (number)

## Wann verwenden

- Wenn Sie Proteinproben aus A595-Messwerten einer Bradford-Assay-Standardkurve berechnen möchten.
- Wenn Sie mehrere unbekannte Absorptionen einheitlich mit derselben BSA-Kurve auswerten möchten.
- Wenn Sie die Konzentration einer verdünnten Probe in µg/mL und mg/mL zurückrechnen möchten.

## Funktionsweise

- Geben Sie pro Zeile die Konzentration des Standards in µg/mL und den zugehörigen A595-Wert ein. Komma, Semikolon, Tabulator oder Leerzeichen sind als Trennzeichen möglich.
- Tragen Sie die A595-Messwerte der unbekannten Proben jeweils in einer eigenen Zeile ein.
- Das Werkzeug passt eine lineare BSA-Standardkurve per Kleinste-Quadrate-Methode an und berechnet Steigung, Achsenabschnitt und R².
- Die unbekannten Konzentrationen werden aus der Kurve berechnet, mit dem Verdünnungsfaktor multipliziert und als µg/mL sowie mg/mL ausgegeben. Werte außerhalb des Standardbereichs werden als Extrapolation markiert.

## Anwendungsfälle

- Auswertung von Bradford-Proteinassays in Mikrotiterplatten mit mehreren unbekannten Proben.
- Berechnung der Proteinkonzentration in Lysaten nach einer bekannten Verdünnung.
- Lehr- und Ausbildungsversuche zur linearen Regression und Proteinquantifizierung.

## Häufig gestellte Fragen

### Welche Eingaben benötigt der Rechner?

Sie benötigen die Standardwerte als Konzentration in µg/mL und A595 sowie die A595-Werte der unbekannten Proben. Zusätzlich geben Sie den Verdünnungsfaktor ein.

### Wie wird die Standardkurve berechnet?

Der Rechner verwendet eine lineare Kleinste-Quadrate-Regression und gibt Steigung, Achsenabschnitt und R² aus.

### Wie wird eine Verdünnung berücksichtigt?

Die aus der Assay-Kurve bestimmte Konzentration wird mit dem eingegebenen Verdünnungsfaktor multipliziert.

### Was passiert bei einem Messwert unterhalb der Leerprobe?

Ein solcher Wert wird als nicht quantifizierbar abgelehnt.

### Ist der Rechner für alle Proteine gleich genau?

Nein. Die Farbstoffantwort hängt vom Protein ab; BSA reagiert ungefähr doppelt so stark wie IgG. Standards und Proben sollten im selben Puffer vorliegen, und hohe Detergenskonzentrationen können stören.

## Ähnliche Tools

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